鄒 琴,楊 光,羅 紅*,宮曉紅,孫文平
(1.大連醫(yī)科大學臨床免疫與微生物教研室,遼寧 大連 116044;2.大連市中醫(yī)醫(yī)院,遼寧 大連 116013)
肺炎鏈球菌(Streptococcus pneumoniae,S.pn)是社區(qū)獲得性肺炎的主要病原體,可以發(fā)生自然轉化[1],根據其莢膜多糖抗原性的不同分為90多種血清型,其中約20種血清型對人體有致病性,可引起腦膜炎、中耳炎、鼻竇炎等多種疾?。?-3]。近年來肺炎鏈球菌耐藥的普遍性和多重耐藥趨勢逐漸升高,開發(fā)新的藥物和蛋白疫苗進行感染的治療和預防成為研究熱點[4-6]。肺炎鏈球菌自溶素(N-乙酰胞壁酰-L-丙氨酸酰胺酶,LytA)是肺炎鏈球菌細胞壁降解酶之一[7],其編碼基因在不同血清型之間具有高度保守性[8-9],編碼蛋白可以覆蓋幾乎所有血清型,而且具有免疫活性及溶菌效應,有可能成為新的疫苗靶點及抗菌藥物[10-12]。根據GenBank中收錄的肺炎鏈球菌M66菌株的lytA序列設計引物,擴增ATCC49619菌株相應基因片段,以常用的BamHⅠ、HindⅢ酶切后出現新的小片段,通過原核表達技術獲得該段基因表達的蛋白,初步研究其免疫活性,為進一步應用于疫苗及相關研究奠定基礎。
1.1.1 菌株 肺炎鏈球菌標準菌株(ATCC49619)由衛(wèi)生部臨床檢驗中心提供。
1.1.2 主要試劑 細菌基因組DNA提取試劑盒(上海華舜生物工程有限公司),限制性內切酶BamHⅠ、HindⅢ、T4 DNA 連接酶、DNA Marker、蛋白Marker、DNA凝膠回收試劑盒(TaKaRa公司),大腸埃希菌DH5α、表達菌株BL21(DE3)感受態(tài)、HRP-羊抗鼠IgG(Novagen公司),克隆載體PGM-T、質粒提取純化試劑盒(天根生化科技有限公司),表達載體PET-32α(本實驗室保存),化學發(fā)光底物Super-Signal ECL(Pierce公司),純化蛋白LytA'免疫血清為本實驗室自制(抗體效價1∶32)。
1.2.1 肺炎鏈球菌自溶素基因擴增、克隆 根據GenBank中肺炎鏈球菌M66菌株lytA基因全序列(FN549899.1),設計上下游引物:P1為 5'-GGGGGATCCATGGAAATTAATGTGAGT-3',P2 為5'-GGGAAGCTTTTTTACTGTAATCAAGCCATC-3',斜體部分為引入的BamHⅠ和HindⅢ酶切位點,引物由 TaKaRa公司合成。提取肺炎鏈球菌(ATCC49619)基因組DNA,PCR反應擴增目的片段(95℃ 4 min;95℃ 30 s、56℃ 30 s、72℃ 1 min、30個循環(huán);72℃ 7 min),反應產物經1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定。切膠回收,構建克隆質粒PGM-T/lytA',測序由TaKaRa公司完成。
1.2.2 重組表達質粒的構建與鑒定 測序正確的克隆質粒用BamHⅠ、HindⅢI雙酶切,將出現的約500 bp小片段切膠回收,與pET-32α(+)載體酶切后的片段16℃過夜連接,轉化至感受態(tài)細胞E.coli DH5α,于LB/Amp平板上挑取單個克隆培養(yǎng)后,抽提質粒進行雙酶切鑒定并再次測序,構建重組表達質粒pET-32α(+)/lytA'。
1.2.3 重組表達質粒的誘導表達與純化 將鑒定正確的重組表達質粒轉化至感受態(tài)細胞E.coli BL21(DE3),涂布于LB/Amp平板,篩選陽性克隆接種于LB/Amp液體培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)至對數生長期(A600值為0.6 ~0.8),加入終濃度為1 mmol/L 的IPTG,25℃誘導4 h;4℃離心收集菌體,加入裂解液超聲破碎,4℃離心收集上清和沉淀,分別進行SDS-PAGE電泳。用透析袋等電點洗脫法回收純化蛋白LytA'并定量分析,保存于-80℃冰箱。
1.2.4 免疫血清制備 取6只BALB/c小鼠,雌雄各半,18~20 g,5~6周齡(大連醫(yī)科大學實驗動物中心提供)。LytA'免疫血清制備程序:首次免疫每只小鼠腹股溝皮下注射LytA'0.2 mg;分別于第14及第21天加強免疫,每只皮下注射0.2 mg。末次免疫后第5天摘取小鼠眼球進行采血,分離血清,與純化蛋白進行雙向免疫擴散試驗,測定抗體效價后于-20℃冰箱凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.5 表達產物 Western blot分析 將純化的LytA'蛋白按常規(guī)方法進行SDS-PAGE電泳后轉到NC膜上,以上述免疫血清作為一抗,HRP-羊抗鼠IgG為二抗,ECL顯影。
lytA全序列擴增產物約950 bp處可見特異性條帶(圖1),與預期結果(956 bp)相符。重組克隆質粒PGM-T/lytA測序結果與GenBank中M66菌株的基因序列符合率為98%,不同之處主要位于444~466 bp,肺炎鏈球菌ATCC49619菌株新增了一個BamHⅠ酶切位點(GGATCC),PGM-T/lytA經BamHⅠ、HindⅢ雙酶切后出現3條帶(圖2)。
圖1 肺炎鏈球菌lytA的PCR擴增電泳圖Fig.1 PCR amplification of lytA of S.pn
圖2 重組質粒PGM-T/lytA酶切圖Fig.2 Restriction enzyme analysis of recombinant plasmid PGM-T/lytA
構建的小片段自溶素的重組表達質粒pET-32α(+)/lytA'經 BamHⅠ、HindⅢ雙酶切后顯示約500 bp目的片段。序列測定結果顯示該片段基因與肺炎鏈球菌ATCC49619菌株的克隆質粒PGMT/lytA相應部分符合率為100%,未出現變異。
小片段自溶素的重組表達質粒 pET-32α(+)/lytA'經IPTG誘導后,在相對分子質量(Mr)約20 ku處有明顯的蛋白表達條帶(圖3),該蛋白主要以可溶性上清形式存在,用等電點洗脫法純化后電泳顯示為單一蛋白條帶(圖4)。
LytA'免疫小鼠血清抗體效價為1∶32,所獲得的目的蛋白具有較好的免疫原性。
LytA'與相應抗體發(fā)生特異性結合,相對分子質量約20 ku處出現明顯印跡反應帶(圖5),該目的蛋白具有較好的抗體結合活性。
圖3 重組表達質粒pET-32α(+)/lytA'的IPTG誘導結果Fig.3 Analysis of the products expressed by pET-32α(+)/lytA'with IPTG induction
圖4 純化蛋白LytA'的SDS-PAGE電泳圖Fig.4 SDS-PAGE profile of purified protein LytA'
肺炎鏈球菌自溶素是肺炎鏈球菌的主要毒力因子之一,在不同血清型的肺炎鏈球菌中具有高度保守性,這一特性作為疫苗靶點可以預防不同血清型引起的感染,而且作為蛋白質,可以誘導T細胞依賴性免疫應答,產生免疫記憶,克服了多糖疫苗的局限性[13]。通過基因工程技術獲取重組蛋白,不但可以大量獲得而且便于分子結構的修飾改良,本研究證明了肺炎鏈球菌自溶素LytA其中的一個小片段可以通過原核表達技術獲得,初步證明具有免疫原性和抗體結合活性,為進一步應用于血清學診斷和疫苗靶點研究奠定基礎。
GenBank中尚未收錄ATCC49619菌株的自溶素序列,本研究參照已公布的肺炎鏈球菌M66菌株自溶素序列(FN549899.1)設計引物,成功擴增克隆了肺炎鏈球菌ATCC49619菌株的956 bp自溶素全片段,所構建的克隆質粒測序結果和M66菌株基因序列同源性為98%,證明了lytA基因序列的保守性。堿基變異的區(qū)域主要集中在444~466 bp之間,而且在此區(qū)域內堿基的變異恰巧形成了一個BamHⅠ酶切位點,這就提示如果利用ATCC49619菌株表達整段的自溶素蛋白,就需要避免用BamHⅠ酶進行克隆質粒的酶切。本研究中利用BamHⅠ酶切位點來構建小片段自溶素重組表達質粒,成功表達出分子量約20 ku的自溶素蛋白片段,相比于全段rLytA(分子量約56 ku),小分子量蛋白片段用于藥物及疫苗靶點可能更具有優(yōu)勢,而且和抗體結合時有利于減少空間位阻,通過免疫小鼠及Western blot實驗證明該蛋白具有免疫原性和抗體結合活性,具有應用于疫苗及血清學診斷的可能性。通常以pET32α(+)載體構建的表達質粒,表達出來的是一種融合蛋白,在目的蛋白的N末端融合有分子量約20 ku的硫氧還原蛋白,本實驗中的目的蛋白雖然分子量約為20 ku,但所構建的表達質粒經過測序,證實為自溶素的片段,并非是硫氧還原蛋白,具有不必切除硫氧還原蛋白,直接應用于相關研究的優(yōu)勢。
[1]孟江萍,尹一兵,涂植光,等.肺炎鏈球菌轉化模型的建立與優(yōu)化[J].微生物學雜志,2006,26(1):10-13.
[2]Zhao GM,Black S,Shinefield H,et al.Serotype distribution and antimicrobial resistance patterns in Streptococcus pneumoniae isolates from hospitalized pediatric patients with respiratory infections in Shanghai,China[J].Pediatr Infect Dis,2003,22(8):739-742.
[3]Barzilay EJ,O’Brien KL,Kwork YS,et al.Could a single dose of pneumococcal conjugate vaccine in children be effective?Modeling the optimal age of vaccination[J].Vaccine,2006,24(7):904-913.
[4]Susana Campuzano,María Pedrero,José L.García,et al.Development ofamperometricmagnetogenosensorscoupled to asymmetric PCR for the specific detection of Streptococcus pneumoniae[J].Anal Bioanal Chem,2011,399(7):2413-2420.
[5]R.Bhatia,K.Harris,J.Hartley,et al.Serial PCR genetic load determination in the surgical management of pneumococcal intracranial sepsis[J].Childs Nerv Syst,2012,28(4):515-520.
[6]Maria del Mar Garcia-Suarez,Maria Dolores Cima-Cabal,Roberto V,et al.Performance of a pneumolysin enzyme-linked immunosorbent assay for diagnosis of pneumococcal infections[J].J Clin Microbiol,2007,45:3549-3554.
[7]Regine H,Abderrahim M,Dalia D,et al.Versatility of choline metabolism and choline-binding proteins in streptococcus pneumonia and commensal streptococci[J].FEMS Microbiol Rev,2009,33(3):572-586.
[8]Adrian M.Whatmore and Christopher G.Dowson.The Autolysin-Encoding Gene(lytA)of Streptococcus pneumoniae Displays Restricted Allelic Variation despite Localized Recombination Events with Genes of Pneumococcal Bacteriophage Encoding Cell Wall Lytic Enzymes[J].Infection and Immunity,1999,67(9):4551-4556.
[9]Bogaert D,Hermans PWM,Adrian PV,et al.Pneumoccal vaccines:an update on current strategies[J].Vaccine,2004,22(17):2209-2220.
[10]Peter Mellroth,Robert Daniels,Alice Eberhardt,et al.LytA,major autolysin of Streptococcus pneumoniae,requires access to nascent peptidoglycan[J].The Journal of Biological Chemistry,2012,287(14):11018-11029.
[11]Violeta Rodriguez-Cerrato,Pedro Garcia,Lorena Huelves,et al.Pneumococcal LytA Autolysin,a Potent Therapeutic Agent in Experimental Peritonitis-Sepsis Caused by Highlyβ-Lactam-Resistant Streptococcus pneumoniae[J].Antimicrob Agents Chemother,2007,51(9):3371-3373.
[12]María Morales,Pedro García,Adela G.de la Campa,et al.Evidence of localized prophage-host recombination in the lytA gene,encoding the major pneumococcal autolysin[J].J.Bacteriol,2010,192(10):2624.
[13]Yuan ZQ,Lv ZY,Gan HQ,et al.Intranasal immunization with autolysin(LytA)in mice model induced protection against five prevalent Streptococcus Pneumoniae serotypes in China[J].Immunologic Research,2011,51(1):108-115.