1.云南省臨滄市食品藥品檢驗所,云南 臨滄 677000;2.云南省曲靖市食品藥品檢驗所,云南 曲靖 655000;3.大理學院,云南 大理 671000
HPLC法測定補腎強身片中原兒茶酸的含量
穆天慧1方慧祥2黎海存3
1.云南省臨滄市食品藥品檢驗所,云南 臨滄 677000;2.云南省曲靖市食品藥品檢驗所,云南 曲靖 655000;3.大理學院,云南 大理 671000
目的建立高效液相色譜法測定補腎強身片中原兒茶酸的含量方法。方法采用色譜柱為Agilent HC-C18(4.6mm×250mm,5μm);流動相:乙腈-1%冰醋酸(3.5∶96.5); 柱溫為30℃;流速:1.0ml.min-1;檢測波長:260nm;進樣量:10μl。結果原兒茶酸回歸方程Y=3081.5151X-0.9753,r=0.9998(n=5),濃度在0.05888~0.35328μg.ml-1范圍內線性關系良好,平均回收率97.7﹪,RSD為0.96﹪。結論HPLC法準確、快速,簡便可靠,可用于補腎強身片中原兒茶酸的含量測定。
HPLC法;補腎強身片;原兒茶酸;含量測定
補腎強身片由淫羊藿、菟絲子、金櫻子、女貞子、狗脊(燙)五味中藥組成,具有補腎強身的功效,用于腰酸足軟,頭暈耳鳴,眼花心悸,陽萎遺精 ?,F(xiàn)行質量標準為《中華人民共和國衛(wèi)生部藥品標準》中藥成方制劑第十五冊(WS3-B-2907-98),其標準簡單,無含量測定的項目[1]。為更好地控制補腎強身片的質量,確保臨床療效,參照中國藥典[2]及文獻[3,4],建立HPLC法測定補腎強身片中原兒茶酸的含量的方法,本實驗選擇原兒茶酸為指標,用HPLC法對補腎強身片進行含量測定。
Agilent Technologies 1200 Series高效液相色譜儀(G1311A四元泵,G1329A自動控溫進樣器,G1316A柱溫箱,G1315D二極管陣列檢測);超聲波淸洗儀(中船七院七二六所);塞多利斯CP324S電子天平。原兒茶酸對照品(批號:809-9201,中國藥品生物制品檢定所)。乙腈為色譜純,水為重蒸餾水,冰醋酸為分析純。補腎強身片(批號:201206003、201206004、201206006,葵花藥業(yè)集團)和陰性樣品。
2.1 色譜條件 色譜柱為Agilent HC-C18(4.6mm×250mm,5μm),流動相:乙腈-1%冰醋酸(3.5∶96.5);流速:1.0ml.min-1;柱溫:30℃;檢測波長:260nm;進樣量:10μl。原兒茶酸的保留時間約為15.32min 。
2.2 溶液的制備
2.2.1 對照品溶液的制備 精密稱取原兒茶酸對照品0.0184g,置50ml容量瓶中,加甲醇-1%冰醋酸(70∶30)使溶解,并稀釋至刻度,搖勻,再精密量取2ml,置50ml容量瓶中,加甲醇-1%冰醋酸(70∶30)稀釋至刻度,搖勻,即得0.01472mg.ml-1原兒茶酸對照品溶液。
2.2.2 供試品溶液的制備 取補腎強身片30片,去糖衣,精密稱定,研細,精密稱取細粉約2.5g(相當于10片的量)置150ml具塞錐形瓶中,加入0.1mol/L的鹽酸3ml潤濕10min,加乙酸乙酯20ml超聲30min,方冷,濾過,殘渣用乙酸乙酯10ml洗滌,合并濾液與洗滌液,水浴上蒸干,殘渣加甲醇-1%冰醋酸(70∶30)溶解,定溶至25ml容量瓶中,搖勻,用0.45μm微孔濾膜過濾,即得。
2.2.3 陰性樣品溶液的制備 按處方比例及制法,取除狗脊(燙)的其他藥材,制得陰性樣品。再按供試品溶液的制備方法制成陰性對照樣品溶液。
2.3 線性實驗 吸取2.2.1項下對照品溶液,用0.45μm的微孔濾膜濾過。分別精密吸取濾液4、10、16、20、24μl進樣,濃度分別為0.05888、0.14720、0.23552、0.29440、0.35328μg.ml-1。以濃度X為橫坐標,峰面積Y為縱坐標,進行線性回歸。結果表明,原兒茶酸的濃度在0.05888~0.35328μg.ml-1范圍內線性關系良好,Y=3081.5151X-0.9753,r=0.9998(n=5)。
2.4 精密度實驗 精密吸取“2.2.1項”下對照品溶液10μl,連續(xù)進樣6次,測原兒茶酸的峰面積,RSD為0.11%。表明所選色譜條件系統(tǒng)穩(wěn)定。
2.5 空白實驗 分別精密吸取對照品溶液,供試品溶液,陰性對照溶液各10μl進樣,結果,在對照品和供試品色譜相應的保留時間,陰性樣品無色譜峰,表明陰性樣品不干擾測定。
2.6 穩(wěn)定性實驗 取同一樣品,按照“2.2.2項”下制備,分別在0、4、10、16、24h測定峰面積,RSD為0.21%,說明原兒茶酸甲醇-1%冰醋酸(70∶30)溶液在24h內穩(wěn)定性較好。
2.7 重復性實驗 取同一批樣品(批號:201206004)4份,按“2.2.2項”下制備,測定原兒茶酸的含量,其含量的RSD為0.31%。
2.8 加樣回收率實驗 取已知含量的補腎強身片細粉(批號:201206004) 4份,精密稱定,加入原兒茶酸對照品適量,按“2.2.2項”下操作。測得原兒茶酸的回收率見表1。
表1 加樣回收率實驗測定結果(n=4)
2.9 樣品測定結果 分別取3種不同批號的補腎強身片,按“2.2.2項”下的方法操作,以外標法計算原兒茶酸的含量。結果見表2。
表2 樣品含量測定結果(n=3)
3.1 檢測波長的選擇 根據文獻報道[3-4]及中國藥典[2],檢測波長采用260nm。
3.2 流動相的考察 參考中國藥典[2]及文獻報道[3][4],流動相為乙腈-1%冰醋酸(5∶95)和乙腈-0.2%磷酸溶液(4∶96)下都能出峰,但分離效果及峰形不理想,因此在反復驗證及本實驗環(huán)境下,流動相為乙腈-1%冰醋酸(3.5∶96.5)時,出峰的保留時間合適,分離效果及峰形較好,所以本實驗的流動相比例為乙腈-1%冰醋酸(3.5∶96.5)。
3.3 提取方法的考察 第一種提取法參照中國藥典[2],精密稱定樣品后,再精密加入甲醇-1%冰醋酸(70∶30)混合溶液25 mL,稱定重量,超聲提取(功率300 W,頻率45 kHz)30 min,放冷,再稱定重量,用甲醇-1%冰醋酸(70∶30)混合溶液補足減失的重量,搖勻,過濾,取續(xù)濾液進樣分析;第二種提取法參考文獻[3]即“2.2.2項”下的提取方法。第三種提取法按“2.2.2項”下的提取方法,將0. 1mol/L的鹽酸3ml換為0.01 mol/L的鹽酸10ml。按樣品測定方法測定,含量分別為0.5020mg/片,0.5145mg/片,0.3792mg/片,且第一種方法提取的樣品,雜峰多。根據上述結果,最終確定第二種提取方法為本試驗的提取方法。
3.4 結論 該方法準確、快速,簡便可靠,可用于補腎強身片中原兒茶酸的含量測定。
[1] WS3-B-2907-98.補腎強身片[S].1998.
[2] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典(一部)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:209.
[3] 南勁松,孫海濤,吳艷麗,等.高效液相色譜法測定補血調經片中原兒茶酸的含量[J].時珍國醫(yī)國藥,2009,20(2):437-438.
[4] 林春華,朱品業(yè),胡家熾,等.高效液相色譜法測定壯腰健腎丸原兒茶酸含量[J].中國中藥雜志,1996,21(5):288.
DeterminationofProtocatechuicacidinBushenqiangshentabletsbyHPLC
Mu Tian-hui1Fang Hui-xiang2Li Hai-cun3
1.Lincang Institute for Food and Drug control 677000;2.Qujing Institute for Food and Drug control 655000;3.Da Li Universerty 671000 ,Yunnan
Objective:To establish an HPLC method for determination of Protocatechuic acid in Bushenqiangshen tablets. Methods:The Agilent HC-C18 column(4.6mm×250mm,5μm)was used at a column temperature of 30℃. The mobile phase consisted of acetonitrile - 1% glacial acetic acid in water (3.5∶96.5) and detected with UV 260nm.The flow rate was 1.0mL·min-1and the injected volume was 10μL. Results: A good linear concentration range for Protocatechuic acid was 0.05888~0.35328 μg.mL-1(r=0.9998 ,n=5).The average recoveries was 97.7% with RSD of 0.96% . Conclusion:The method is rapid, simpie and accurate , which can be used for the quality control of Protocatechuic acid of Bushenqiangshen tablets.
HPLC;Bushenqiangshen tablets;Protocatechuic acid;determination
R285.6
A
1007-8517(2014)09-0013-02
2014.03.10)