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        葡聚糖硫酸鈉誘導(dǎo)小鼠實驗性結(jié)腸炎的臨床和組織病理學(xué)特征研究

        2014-03-09 06:26:34王長征周中銀羅和生
        關(guān)鍵詞:制模評分標(biāo)準(zhǔn)動物模型

        王長征,周中銀,羅和生

        武漢大學(xué)人民醫(yī)院消化內(nèi)科,湖北武漢430060

        潰瘍性結(jié)腸炎(ulcerative colitis,UC)是一種慢性非特異性炎癥性腸病,其臨床特點是反復(fù)發(fā)作與緩解。在世界范圍內(nèi),每年約有3~20/10萬新發(fā)病例[1]。UC對人類健康影響較大,且為結(jié)腸癌的高危因素。為進一步認識炎癥性腸病的發(fā)病機制,合適的動物模型是必不可少的。葡聚糖硫酸鈉(dextran sulphate sodium,DSS)誘導(dǎo)結(jié)腸炎的動物模型與人類UC有許多相關(guān)的表型特征[2]。目前尚無準(zhǔn)確分析DSS誘導(dǎo)小鼠實驗性結(jié)腸炎模型的臨床及組織病理學(xué)特點的文獻報道?;诖?,我們研究了DSS誘導(dǎo)小鼠實驗性結(jié)腸炎模型在不同時間段的臨床特點和組織病理學(xué)改變。以便于指導(dǎo)我們選擇理想的UC小鼠模型。

        1 材料與方法

        1.1 動物 雄性野生型C57BL/6成年小鼠,體質(zhì)量(25.0±5.0)g,由湖北實驗動物中心提供。實驗開始前適應(yīng)性喂養(yǎng)1周,給予自然光照、(20±3)℃條件。標(biāo)準(zhǔn)實驗室配方食物,自由進食和飲水。

        1.2 動物模型構(gòu)建及分組 急性結(jié)腸炎誘導(dǎo)給予口服3%DSS(分子量:54 000,由Sigma公司提供)溶液,DSS水每日更換。取50只小鼠隨機分為5組,飲用純凈水為D0組;飲用3%DSS溶液共3 d為D3組;飲用3%DSS溶液共5 d為D5組;飲用3%DSS溶液共7 d為D7組;飲用3%DSS溶液共10 d為D10組,每組10只小鼠。

        1.3 觀察指標(biāo) 記錄小鼠糞便潛血、血便、體質(zhì)量和小鼠死亡情況。DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎疾病活動指數(shù)(disease activity index,DAI)的評定見表1。疾病活動指數(shù)評分標(biāo)準(zhǔn)參照文獻[3]。結(jié)腸組織學(xué)損傷的評估:每組小鼠飼養(yǎng)到設(shè)定時間后,乙醚麻醉小鼠,頸椎脫臼法處死,剖腹,取肛門至回盲部的結(jié)腸,沿腸系膜邊緣縱行剖開腸腔,生理鹽水沖洗糞便,在解剖鏡下觀察結(jié)腸大體形態(tài)。每只小鼠取距肛門相同距離處同一部位組織標(biāo)本(2 mm×10 mm),甲醛固定,常規(guī)石蠟包埋、切片(4 μm),蘇木精-伊紅染色,兩位病理學(xué)專家盲法閱片計分。組織學(xué)損傷程度用炎癥、病變深度、隱窩破壞評分與病變范圍評分的乘積表示。小鼠結(jié)腸組織學(xué)損傷評分標(biāo)準(zhǔn)見表2。組織學(xué)損傷評分標(biāo)準(zhǔn)參見文獻[4]。

        表1 DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎DAI評分標(biāo)準(zhǔn)Tab 1 Scoring of DAI in DSS-induced acute colitis in m ice

        1.4 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行分析,各組數(shù)據(jù)之間的比較采用t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 一般情況 DSS誘導(dǎo)急性結(jié)腸炎小鼠第3天開始出現(xiàn)稀便、大便潛血陽性及明顯體質(zhì)量下降;第5天開始出現(xiàn)了血便;第10天開始出現(xiàn)死亡小鼠,小鼠死亡率為30%。DSS誘導(dǎo)小鼠急性結(jié)腸炎造模過程臨床特點見表3。各組小鼠DAI評分比較見圖1。

        2.2 大體形態(tài) DSS誘導(dǎo)急性結(jié)腸炎小鼠黏膜病變從肛門側(cè)自下向上連續(xù)性發(fā)展,逐漸減輕,直腸最為嚴(yán)重,近端結(jié)腸幾乎正常,病變部黏膜呈中、重度充血水腫,散在糜爛、淺潰瘍。

        表2 小鼠結(jié)腸組織學(xué)損傷評分標(biāo)準(zhǔn)Tab 2 Histological injury score standard in DSS-induced acute colitis in m ice

        表3 DSS誘導(dǎo)小鼠急性結(jié)腸炎造模過程臨床特點Tab 3 Clinical findings of DSS adm inistration in the acute colitis

        圖1 DSS誘導(dǎo)小鼠急性結(jié)腸炎模型疾病活動指數(shù)-時間變化過程Fig 1 DAI in the course of DSS-induced acute colitis in m ice

        2.3 光鏡下病理形態(tài) 造模前野生型小鼠結(jié)腸結(jié)構(gòu)和黏膜都沒有損害,野生型小鼠結(jié)腸炎造模第3天黏膜上皮細胞開始逐漸喪失,第7~10天最為嚴(yán)重;與此同時,隱窩結(jié)構(gòu)的紊亂從第3天開始發(fā)生,第7天出現(xiàn)固有層塌陷;炎性細胞浸潤從第3天開始數(shù)量逐漸增加,第10天最為嚴(yán)重。各組小鼠結(jié)腸組織病理計分比較見圖2。DSS誘導(dǎo)小鼠急性結(jié)腸炎模型結(jié)腸組織病理光鏡下改變見圖3。

        3 討論

        UC的許多研究成果來源于動物體內(nèi)的研究,因而了解UC動物模型的臨床特點和結(jié)腸組織病理特征對UC的研究非常重要[5]。DSS是一種人工合成硫酸多糖體,具有和肝素一樣的抗凝血作用。DSS近年來常用于誘導(dǎo)UC動物模型[6]。本實驗應(yīng)用3%DSS溶液,給小鼠自由飲用,連續(xù)10 d,出現(xiàn)遠端結(jié)腸急性炎癥表現(xiàn)。病理及臨床表現(xiàn)與UC相似,說明DSS誘導(dǎo)的動物模型適合UC的研究。

        圖2 DSS誘導(dǎo)小鼠急性結(jié)腸炎模型結(jié)腸組織病理評分-時間變化過程Fig 2 Histologic score in the course of DSS-induced acute colitis in m ice

        圖3 DSS誘導(dǎo)小鼠急性結(jié)腸炎模型結(jié)腸組織病理改變(HE,100×)Fig 3 Histological analysis of DSS adm inistration in the acute colitis(HE,100×)

        DSS溶液5 d后主要表現(xiàn)為腹瀉、血便、體質(zhì)量下降、懶動等。光鏡下組織病理學(xué)改變主要為全結(jié)腸多灶性淺潰瘍、隱窩破壞和繼發(fā)黏膜、黏膜下層炎癥,少數(shù)病灶炎癥可侵及漿膜層,浸潤的炎癥細胞以中性粒細胞為主,伴少量淋巴細胞和單核細胞。這些急性結(jié)腸炎癥改變與文獻報道的病變相似[7]。

        從病理變化過程發(fā)現(xiàn),DSS制模后第3天就表現(xiàn)出明顯的腸道損傷,病理改變在第5天后明顯加重,并且在制模后第7天病理改變到達高峰,這與有關(guān)文獻報道是一致的[8]。因此,DSS制模第7天可用于急性炎癥性損傷的研究。從研究中我們注意到,在制模第10天小鼠有一定的死亡率(30%),而在制模第7天腸道急性損傷的特點已經(jīng)很明顯,沒有動物死亡發(fā)生。分析小鼠制模后一般表現(xiàn)情況,與腸道病理變化過程是相符的。因此,選擇在制模第7天進行急性腸道損傷的研究比較理想。

        從已有的文獻報道[9]和我們的實驗結(jié)果可以看出,3%DSS誘導(dǎo)野生型C57BL/6成年小鼠作為實驗性結(jié)腸炎的動物模型實驗周期短,方法簡單,制作簡便、經(jīng)濟,易于復(fù)制,動物耐受性好,制模成功率高,是研究UC發(fā)病機制和藥物治療較理想的工具。

        [1]Loftus EV Jr.Clinical epidemiology of inflammatory bowel disease:incidence,prevalence,and environmental influences[J].Gastroenterology,2004,126(6):1504-1517.

        [2]Clapper ML,Cooper HS,Chang WC.Dextran sulfate sodium-induced colitis-associated neoplasia:a promising model for the development of chemopreventive interventions[J].Acta Pharmacol Sin,2007,28 (9):1450-1459.

        [3]Cooper HS,Murthy SN,Shah RS,et al.Clinicopathologic study of dextran sulfate sodium experimental murine colitis[J].Lab Invest,1993,69(2):238-249.

        [4]Kullmann F,Arndt H,Gross V,et al.Beneficial effect of ursodeoxycholic acid on mucosal damage in trinitrobenzene sulphonic acid-induced colitis[J].Eur J Gastroenterol Hepatol,1997,9(12): 1205-1211.

        [5]Karlsson A,J?gervall A,Pettersson M,et al.Dextran sulphate sodium induces acute colitis and alters hepatic function in hamsters[J].Int Immunopharmacol,2008,8(1):20-27.

        [6]Sainathan SK,Bishnupuri KS,Aden K,et al.Toll-like receptor-7 ligand Imiquimod induces type I interferon and antimicrobial peptides to ameliorate dextran sodium sulfate-induced acute colitis[J].Inflamm Bowel Dis,2012,18(5):955-967.

        [7]Fischbeck A,Leucht K,F(xiàn)rey-Wagner I,et al.Sphingomyelin induces cathepsin D-mediated apoptosis in intestinal epithelial cells and increases inflammation in DSS colitis[J].Gut,2011,60(1):55-65.

        [8]Melgar S,Karlsson A,Micha?lsson E.Acute colitis induced by dextran sulfate sodium progresses to chronicity in C57BL/6 but not in BALB/c mice:correlation between symptoms and inflammation[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2005,288(6):G1328-G1338.

        [9]Wende E,Laudeley R,Bleich A,et al.The complement anaphylatoxin C3a receptor(C3aR)contributes to the inflammatory response in dextran sulfate sodium(DSS)-induced colitis in mice[J].PLoS One,2013,8(4):e62257.

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