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        凡納濱對蝦蝦頭自溶產(chǎn)物中肽組分的分離及其呈味性能初步研究

        2014-02-22 11:41:50章超樺吉宏武曹文紅朱國萍
        食品工業(yè)科技 2014年10期
        關(guān)鍵詞:自溶鮮味大孔

        伍 彬,章超樺,吉宏武,曹文紅,劉 亞,朱國萍

        (廣東省水產(chǎn)品加工與安全重點實驗室,水產(chǎn)品深加工廣東普通高等學(xué)校重點實驗室,廣東海洋大學(xué)食品科技學(xué)院,廣東湛江524088)

        凡納濱對蝦(Penaeus vannamei Boone),又名南美白對蝦。原產(chǎn)于美洲太平洋沿岸水域,我國以廣東、福建、浙江及海南為其主要產(chǎn)地,殼薄體肥,含肉率高,肉質(zhì)鮮美,營養(yǎng)豐富。其產(chǎn)品以去頭凍蝦為主,導(dǎo)致在加工過程中產(chǎn)生占蝦體重30%左右的蝦頭等下腳料,大部分工廠因未加利用而廢棄。蝦頭中含有豐富的蛋白質(zhì)、不飽和脂肪酸、蝦紅素等營養(yǎng)物質(zhì),同時含有各種氨基酸及人體必需的微量元素等[1-2]。蛋白質(zhì)在降解過程中除了產(chǎn)生游離氨基酸以外,還會產(chǎn)生不同分子量大小的肽段,短肽常具有不同的味感,包括甜味肽,苦味肽,咸味肽,還有鮮味肽等[3-5]。關(guān)于肽分離純化的方法,一般有鹽析法、超濾法[6]、離子交換層析、凝膠過濾層析和反相高效液相色譜等[7]。超濾法很難確定主要的呈味組分,而離子交換,凝膠過濾等其他方法又存在上樣量小,流速慢,耗時等問題。大孔吸附樹脂是一類不含離子交換基團的高分子吸附劑,具有與活性炭相似的吸附性能,且理化性質(zhì)穩(wěn)定,因此被廣泛應(yīng)用于食品領(lǐng)域,如分離制備高F值寡肽、血壓肽等[8-10]。本文采用超濾與大孔吸附樹脂洗脫相結(jié)合的方法,對凡納濱對蝦蝦頭自溶產(chǎn)物中的短肽進行分離純化,并結(jié)合感官評價,初步確定了自溶產(chǎn)物中短肽的呈味特性。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        凡納濱對蝦蝦頭 廣東湛江國聯(lián)水產(chǎn)有限公司提供;馬尿酰組氨酰亮氨基酸(MW 423U)日本Peptide Institute;標準多肽混合物(含有Triosephosphateisomerase(MW 26625U),Myoglobin(MW 16950U),Aprotinin(MW 6512U),Insulin-B(MW 3496U),Bacitracin(MW 1423U) 美國Biorad公司;AB-8大孔吸附樹脂、NKA-Ⅱ大孔吸附樹脂 天津興南允能高分子技術(shù)有限公司;XAD-1600、XAD16、MD130、X-5大孔吸附樹脂 上海速摩化工原料有限公司;Z型玻璃層析柱(1.6mmx60mm) 上海精科實業(yè)有限公司。

        UV-2501PC紫外-可見光分光光度計 上海尤尼科儀器廠;Waters 600E高效液相色譜儀 美國waters公司;N-2000液相色譜工作站、QT-智能紫外檢測器、TH-1000A梯度混合器、DBS-100-LCD電腦全自動部分收集器 上海琪特分析儀器有限公司;超濾機Millipore公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 蝦頭自溶產(chǎn)物的制備 將蝦頭在高速組織勻漿器中勻漿,勻漿后置于燒杯中,按料液比1∶3加水攪拌混勻,調(diào)節(jié)pH至7.85,置于50℃水浴鍋中保溫自溶反應(yīng)3h,后于100℃水浴滅酶10m in,冷卻,5000r/m in離心15min,取上清液,即為樣品溶液[11]。

        1.2.2 自溶產(chǎn)物的超濾 將自溶產(chǎn)物分別用截留量為8000、5000、1000u超濾膜超濾(Am icon model 8200,M illipore Corporation),分離的條件:壓力0.25MPa,溫度4℃。

        1.2.3 超濾組分肽基態(tài)氮含量的測定 分別采用凱氏定氮法[12]和甲醛滴定法[12]測定,肽基態(tài)氮含量=總氮量-總氨基態(tài)氮量。

        1.2.4 超濾組分的感官評價 方法參考文獻[13],感官評價小組成員由受過感官培訓(xùn)(經(jīng)三點檢驗試驗合格者確定為品評員)的5名女生,5名男生組成(年齡在20~30歲之間)。選用谷氨酸鈉、蔗糖、食鹽、硫酸奎寧和檸檬酸分別作為鮮味、甜味、咸味、苦味和酸味五種風(fēng)味的標準物質(zhì)。五種基本呈味標準物質(zhì)配制成不同的濃度,品嘗鑒定。在室溫條件進行評定,將樣品配成固形物為2%的溶液,取20m L盛放在杯中,評品員依次從低濃度開始品嘗標準味感物質(zhì)后,用小勺將溶液含在口中停留15s(勿咽下)活動口腔,使樣品溶液接觸整個舌頭,仔細辨別味道,然后吐出樣液,每次品嘗完后用清水漱口,需等待1m in,再品嘗。最后品嘗樣液,然后根據(jù)五種標準味感物質(zhì)給出相應(yīng)的分數(shù)(五分制)。評分標準:5—非常強,4—強,3—標準,2—弱,1—很弱,0—不可鑒別。

        1.2.5 超濾組分的HPSEC分析 采用高效體積排阻色譜(HPSEC)法測定超濾組分的分子量分布,流動相為50mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.2)。將分子量標準品配制成水溶液,上樣10μL至Waters-PROTEINPAK60柱進行高效液相色譜洗脫,流動相流速0.7m L/m in,監(jiān)測214nm處的吸光值,建立分子量M的對數(shù)與洗脫保留時間t之間的回歸方程。將自溶產(chǎn)物經(jīng)過針式過濾頭(0.45μm)過濾后在相同的條件下進行高效液相色譜洗脫,利用分子量回歸方程考察酶解產(chǎn)物的分子量分布。

        1.2.6 超濾組分的大孔吸附樹脂的分離純化

        1.2.6.1 大孔吸附樹脂型號的選擇 大孔吸附樹脂的預(yù)處理:用95%醇浸泡24h,過濾后用大量蒸餾水洗至澄清、無醇味,然后用2~3倍體積1%鹽酸浸泡3~5h,浸泡過程不斷攪拌。用蒸餾水充分洗樹脂至中性后再用2倍體積1%NaOH浸泡處理,最后用蒸餾水洗至中性并去除懸浮物,備用。

        大孔吸附樹脂的靜態(tài)吸附與解吸實驗:靜態(tài)吸附實驗:于250m L具塞錐形瓶中加入5.0g處理好的干樹脂,用無水乙醇充分溶脹,再用去離子水洗凈乙醇,吸干水分。加入50m L經(jīng)感官實驗得出最好的的超濾組分(蛋白濃度為12.86mg/m L),塞好塞子,將該錐形瓶放入25℃水浴恒溫振蕩器中振蕩24h(振蕩速度為160r/min),使樹脂與料液充分接觸;振蕩結(jié)束后,濾紙過濾,將樹脂與溶液分離;測定溶液中的蛋白質(zhì)含量。按以下公式計算[14]:

        其中:解吸液濃度,mg/m L;解吸液體積,m L;吸附液濃度,mg/m L;吸附液體積,m L。

        1.2.6.2 大孔吸附樹脂對呈味肽的分離 用已選好型號且經(jīng)預(yù)處理好的大孔吸附樹脂裝填1.6×60cm的層析柱,在室溫條件下將經(jīng)感官評價確定的最優(yōu)的超濾液上柱,用紫外檢測器檢測流出液的A220nm,以A220nm=0.05為透過點。用10%、30%、50%、70%和90%乙醇分別洗脫樹脂,流速為1.0m L/m in。收集洗脫峰,減壓濃縮除去乙醇,再將溶液冷凍干燥用于分析。

        1.2.7 氨基酸組成分析 樣品經(jīng)處理后,采用氨基酸自動分析儀測定,參照GB/T14965-1994,將樣品液堿解后上氨基酸自動分析儀。測定條件:No.2619離子交換柱(26×150mm),柱溫53℃,泵流速0.225m L/m in,泵壓8.8MPa,分析時間72m in,進樣量50μL。

        1.2.8 數(shù)據(jù)分析 實驗數(shù)據(jù)均實驗三次取平均值。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 自溶產(chǎn)物的超濾

        蝦頭自溶產(chǎn)物經(jīng)將截留量為8000、5000、1000u超濾膜超濾,分離出四種超濾組分:8000u以上;8000~5000u;5000~1000u;1000u以下。各個組分中5000~1000u組分肽態(tài)氮的含量最高,達12.86mg/m L,其次是1000u組分,為10.01mg/m L,其含量最少的是8000u以上組分。這說明,蝦頭中的蛋白質(zhì)在自身酶系的作用下,降解為一系列分子量大小不同的肽段,而且這些肽短的分子量主要集中在5000u以下。

        2.2 超濾組分的感官評價

        由圖1知,分子截留量在5000u以上,以苦味為主,5000u以下,以鮮味和甜味為主。再分析各超濾組分的呈味特點:8000u以上組分,最突出的味感是苦味,其次再是鮮味和甜味;8000~5000u組分,最突出的味感也是苦味,其次再是鮮味和甜味;5000~1000u組分中,最突出的味感是鮮味和甜味,苦味很弱;1000u以下組分,突出的味感是鮮味和甜味,還有是咸味。由2.1可知,5000~1000u組分肽基態(tài)氮含量最高,因此5000~1000u組分選取作為進一步分離純化的目標。

        圖1 超濾組分的風(fēng)味輪廓圖Fig.1 Flavor outline drawing of ultrafiltration components

        2.3 超濾組分的HPSEC分析

        圖2為6種分子量標準多肽(Triosephosphateisomerase、Myoglobin、Aprotinin、Insulin-B、Bacitracin和HHL)的HPSEC圖,將分子量標準物質(zhì)的保留時間t和分子量的對數(shù)LgM在平面坐標系中描點,得到分子量回歸方程為LgM=-0.2177t+6.2791,相關(guān)系數(shù)R= 0.9868,說明兩者線性相關(guān)性及回歸性良好。

        圖2 分子量標準的HPSEC圖譜Fig.2 HPSECmapping ofmolecular weight standard

        采用HPSEC研究了5000~1000u超濾組分的分子量分布情況,結(jié)果見圖3。計算出5000~1000u超濾組分分子量分布情況(表1)。在5000~1000u超濾組分中,分子量5000u以下的組分比重達到82.07%,而且主要是集中在3000~1000u,占了50.80%;1000u以下達26.23%,跟超濾分離是粗分離有較大關(guān)系,小肽有可能通過氫鍵結(jié)合為較大的分子,被截留在了5000~1000u之間。結(jié)合2.2感官實驗,推斷出呈鮮味和甜味的肽分子量主要集中在3000~1000u,與宋美等[15]研究大豆蛋白呈鮮組分所得到的結(jié)果類似。

        圖3 5000~1000u超濾液Fig.3 Ultrafiltrate between 5000~1000u

        表1 5000~1000u超濾組分分子量分布(%)Table1 Molecularweight distribution of the 5000~1000u(%)

        2.4 超濾組分的大孔吸附樹脂分離純化

        2.4.1 大孔吸附樹脂型號的選擇 六種大孔吸附樹脂對5000~1000U組分的吸附量和解吸率見圖4,可以得出XAD-16這種型號的大孔吸附樹脂效果最好,吸附量84.95mg/g,解吸率為56.99%。

        圖4 六種樹脂的吸附量與解吸率Fig.4 Absorption capacity and desorption rate of 6 resins

        另外,大孔吸附樹脂是一種表面吸附劑,其吸附力強弱與樹脂的比表面積、表面電性及能否與被吸附物質(zhì)形成氫鍵和疏水相互作用等有關(guān)。通常認為比表面積決定吸附劑的飽和吸附量,而平均孔徑和極性決定吸附劑的吸附速率[16]。由圖4知,XAD-16樹脂的比表面積最大,且在分離生物活性物質(zhì)時,具有可逆性,解吸率也高,因此,本研究選擇該樹脂進行吸附動力學(xué)實驗。

        2.4.2 大孔吸附樹脂分離條件的確定

        2.4.2.1 洗脫劑的選擇 一般可以用溶劑的溶解度參數(shù)來預(yù)測,溶解度參數(shù)越小的溶劑解吸效率越高。常見溶劑水、甲醇、乙醇和丙酮的溶解度參數(shù)分別為23.2、14.5、12.7和10.0[17]。還考慮到在大孔吸附樹脂分離后,還要品評其分離出的組分,因此本實驗中采用乙醇-水溶液作為解吸劑。

        2.4.2.2 上樣濃度的確定 將5000~1000u收集液真空冷凍成干粉,然后取一定的干粉分別配制成0.5、1.0、2.0mg/m L水溶液上樣,用乙醇-水作為洗脫液,以確定其最佳上樣濃度。從圖5可以看出,不同上樣濃度,其泄漏體積是不一樣的,當樣品濃度為0.5mg/m L時,肽的泄漏體積為50m L,而且收集的洗脫液中肽含量也是最高的。這是因為濃度低時,樣品能夠和樹脂充分接觸,在疏水相互作用下,充分吸附到樹脂上,從而和高濃度條件下相比,損失率較低,結(jié)果確定以0.5mg/m L為最佳樣品濃度。

        圖5 不同樣品濃度的洗脫曲線Fig.5 Eluting curve of difference sample concentration

        2.4.2.3 流速的確定 根據(jù)2.4.2.2確定的上樣濃度上樣,然后分別將恒流泵的流速設(shè)定為0.5、1.0、2.0mg/min、以確定最佳流速。由圖6可知,隨著流速的增加,小肽回收率降低。這是因為流速增加,減少了洗脫劑與樹脂接觸的時間,疏水性肽不能被完全置換下來。但是0.5mg/m in和1.0mg/m in相比,小肽回收率相差不大,但進一步提高流速到達2.0mg/m in,小肽回收率下降比較顯著??紤]到生產(chǎn)中希望盡量縮短周期并保證較高回收率,選擇1.0mg/m in為最佳流速。

        圖6 不同上樣流速的洗脫曲線Fig.6 Eluting curve of difference sample speeds

        2.4.2.4 分級洗脫 裝好層析柱,將5000~1000u組分,按前兩節(jié)所確定的上樣濃度(0.5mg/m L),和流速(1.0mg/m in)上樣。為了分離出呈味的組分,本實驗采用改變洗脫液的極性,來達到分離的目的,因此,依次采用10%、30%、50%、70%和90%的乙醇作為洗脫劑,對呈味肽進行分級洗脫。分別收集各個組分,并測其肽態(tài)氮含量(見圖7)。從圖7還可以看出,大部分小肽在乙醇濃度10%和30%下被洗脫,而且隨著乙醇濃度增大,被洗脫出來的組分的肽態(tài)氮含量逐步下降。洗脫后,收集到五種洗脫組分,分別是X 10%(表示用10%乙醇洗脫出來的組分,下同)、X30%、X50%、X70%和X90%,再通過減壓蒸餾除去各個組分中的乙醇,冷凍干燥,進行感官品評,并對其感官評分最好的分析其結(jié)構(gòu)氨基酸。

        圖7 洗脫組分的肽態(tài)氮含量Fig.7 Contentof peptide nitrogen in elution fractions

        2.4.2.5 各洗脫組分的感官評價 經(jīng)感官品價,各洗脫組分的呈味特點的結(jié)果如圖8所示,五種洗脫組分主要的呈味特點都是鮮味和甜味突出,其中味道最佳的是X30%洗脫組分,其次是X90%組分。進一步分析X30%洗脫組分中的結(jié)構(gòu)氨基酸。

        圖8 各洗脫組分的感官評價Fig.8 Sensory evaluation of elution fractions

        2.4.2.6 X30%洗脫組分的氨基酸構(gòu)成 凡納濱對蝦蝦頭酶解液中的氨基酸組成如表2所示,洗脫組分中Asp、Glu、Gly、Ala、Pro等呈鮮味和呈甘味的氨基酸總含量達35.71g/100g,占總游離氨基酸的36.11%,尤其是谷氨酸、脯氨酸含量較高,分別達15.29、11.89g/100g,這也正好印證了2.4.2.5中30%乙醇洗脫組分的感官得分最高。

        3 結(jié)論

        蝦頭自溶產(chǎn)物經(jīng)三種超濾膜超濾,發(fā)現(xiàn)5000~1000u組分肽態(tài)氮的含量最高,達12.86mg/m L。且該組分味道最為鮮美,且經(jīng)HPSEC分析,發(fā)現(xiàn)其分子量主要分布3000~1000u之間。選取XAD-16大孔吸附樹脂作為分離用樹脂,確定了最佳的分離條件為:洗脫液,乙醇-水混合溶液;最佳上樣濃度:0.5mg/m L;最佳上樣流速:1.0mg/min。采用大孔吸附樹脂在最優(yōu)條件下分離呈味肽,用30%乙醇洗脫出來的組分感官評價最好,其呈鮮味和呈甘味的氨基酸總含量達35.71g/100g,占氨基酸總量的36.11%。

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        表2 X30%洗脫組分中結(jié)構(gòu)氨基酸含量Table2 Contents of amino acids in autolysates of

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