吳旭麗,童群義
(江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫,214122)
杭白菊(Chrysanthemum morifolium Ramat)又稱茶菊,是一種藥食同源的植物,主要產(chǎn)自浙江省桐鄉(xiāng)、海寧、吳興、嘉興等地[1]?,F(xiàn)代醫(yī)學(xué)已證明杭白菊具有抑菌、抗炎、抗氧化、降血脂、抗心血管疾病的功效[2]。采用現(xiàn)代工藝提取的菊花汁可直接飲用,或經(jīng)進(jìn)一步深加工成濃縮粉、濃縮汁等食品配料,從而提升產(chǎn)品附加值。
制備食用型菊花汁(區(qū)別于藥用),應(yīng)盡量避免或減少使用有機(jī)試劑,減少試劑殘留的危險的同時也可減少溶劑成本。黃酮類物質(zhì)、綠原酸、揮發(fā)油是杭白菊發(fā)揮以上功效的主要活性物質(zhì)[2]。菊花中的黃酮類物質(zhì)大都以苷類形式存在,苷類物質(zhì)易溶于水、乙醇等極性溶劑;綠原酸是由咖啡酸和奎尼酸組成的縮酚酸,在熱水中溶解度較大;菊花中的揮發(fā)油包含飽和烷烴、醇、烯、醛、酮、酯等物質(zhì),研究證明,水提菊花汁中至少含有36種揮發(fā)油,占體系總揮發(fā)油種類的99%[3]。因此,以水為溶劑提高食用菊花提取率更有研究意義。
超聲和微波技術(shù)應(yīng)用廣泛,超聲波可破壞細(xì)胞壁,增加溶劑穿透性,從而增加物質(zhì)提取率并縮短提取時間[4];微波萃取是通過微波迅速、均勻加熱以提高提取效率,不同物質(zhì)對微波能的吸收不同,可以實(shí)現(xiàn)選擇性萃取[5]。微波處理可增加黃酮等植物次生代謝產(chǎn)物及芳香物質(zhì)的回收率[6]?;谝陨咸攸c(diǎn),超聲、微波協(xié)同輔助提取在實(shí)現(xiàn)較高得率的同時減少溶劑用量,從而減少溶劑成本及后續(xù)深加工(如濃縮、干燥等)的能耗和時間。目前傳統(tǒng)的水提法[7],如常溫浸提、加熱回流以及新型超聲或微波單獨(dú)輔助提取的研究成果較多,但少有超聲、微波協(xié)同水提食用菊花汁及與傳統(tǒng)提取方法的系統(tǒng)比較研究。
杭白菊朵菊 購自浙江嘉興市;蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥99.9%,UV分析純),綠原酸標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥99.9%,HPLC分析純) 均購自上海源葉生物科技有限公司;雙圈牌9cm慢速定量濾紙 購自杭州沃華濾紙有限公司;0.22μm水相微孔濾膜 購自上海新亞凈化材料廠;亞硝酸鈉,硝酸鋁,氫氧化鈉,95%乙醇,磷酸,磷酸二氫鈉,三氯甲烷,乙酸乙酯 均為分析純;超純水,甲醇 均為色譜純。
FW-80-1高速萬能粉碎機(jī) 天津泰斯特儀器有限公司;CW-2000型超聲-微波協(xié)同萃取儀 超聲波固定頻率40kHz,功率50W,上海新拓微波溶樣測試技術(shù)有限公司;UV-2100型紫外分光光度儀 上海龍尼柯儀器有限公司;自動進(jìn)樣高效液相色譜儀日立;Ultimate AQ-C18色譜柱 美國Welch Material, InC.;鼓風(fēng)干燥箱 上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠;AB104-N電子天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;FA1004電子天平 上海天平儀器廠;SHZ-D(Ш)循環(huán)水式真空泵 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司。
1.2.1 原料處理與萃取 干燥杭白菊花序用萬能粉碎機(jī)粉碎,過60目篩,粉末備用。用分析天平準(zhǔn)確稱取2.50g菊花粉末于微波-超聲專用500m L萃取燒瓶中,按1.2.5.1所對應(yīng)料液比加入蒸餾水,浸潤后,分別按1.2.5.2和1.2.5.3所述萃取時間、微波功率條件在超聲微波萃取儀中萃取。萃取完畢,靜置10min,用雙層定量濾紙抽濾2次。濾液用蒸餾水定容至250m L,用于檢測。
1.2.2 總黃酮含量測定
1.2.2.1 繪制蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線 準(zhǔn)確稱取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品17.16mg,用95%乙醇溶解,超聲10min使其完全溶解,并用95%乙醇定容至50m L,配制成0.3432mg/m L的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液1、2、3、4、5、6m L于25m L容量瓶中,并用蒸餾水加至總體積為10mL;加入1mL1.0%NaNO2,搖勻,靜置6min;加入1m L10%Al(NO3)3,搖勻,靜置6min;加入10m L4.0%NaOH,用60%乙醇定容至刻度,搖勻,靜置10min;于510nm下檢測吸光值[8]。以總黃酮濃度為x橫坐標(biāo),吸光值為y縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.2.2 樣品總黃酮含量的測定 取各供試液1m L于25m L容量瓶,根據(jù)1.2.2.1中測定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法,測定510nm下樣品UV吸光值。吸光值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線方程中,并換算出總黃酮提取率(mg/g)。
總黃酮提取率(mg/g)= X1/W ×250
式中,X1為由總黃酮標(biāo)準(zhǔn)曲線得到的總黃酮含量,mg;W為菊花粉末質(zhì)量,g;250為測定液與樣液總量的換算指數(shù)。
1.2.3 綠原酸含量測定
1.2.3.1 綠原酸含量測定色譜條件。
色譜柱為AQ-C18(5μm,4.6mm×250mm);流動相A為1.0%磷酸二氫鈉水溶液(以2m L/L比例添加磷酸調(diào)節(jié)pH至2.7);流動相B為甲醇(色譜純);70%流動相A與30%流動相B等度洗脫30min;流速為1.0m L/min;柱溫30℃;檢測器為DAD紫外檢測器;檢測波長為328nm[9]
1.2.3.2 綠原酸標(biāo)準(zhǔn)曲線 準(zhǔn)確稱取19.70mg綠原酸標(biāo)品,用超純水配制成0.1970mg/m L的綠原酸標(biāo)準(zhǔn)液。進(jìn)樣量為1、2、3、4、5μL,在1.2.3.1色譜條件下測定不同進(jìn)樣量對應(yīng)的綠原酸峰面積。以綠原酸含量為x橫坐標(biāo),以峰面積(103)為y縱坐標(biāo),繪制綠原酸標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.3.3 樣品綠原酸含量測定 準(zhǔn)確移取1.2.1中供試液10m L于潔凈已稱重的6cm直徑玻璃皿中,于40℃烘箱放置12h至烘干;加5m L氯仿,浸泡5min,棄氯仿液;加5m L乙酸乙酯,浸泡5min,棄乙酸乙酯,入40℃烘箱1h揮干有機(jī)溶劑,稱重(記為M);加5mL超純水,待樣品完全溶解后,經(jīng)0.22μm的水相微孔濾膜過濾[10]。按 1.2.3.1的色譜條件測樣品在綠原酸保留時間對應(yīng)的峰面積,進(jìn)樣量為10μL。根據(jù)綠原酸標(biāo)準(zhǔn)曲線,換算出綠原酸的提取量(mg/g)。
式中,X2為由標(biāo)準(zhǔn)曲線得到綠原酸含量(mg);W為菊花粉末質(zhì)量,g;12.5為測定液與樣液總量的換算指數(shù)。
1.2.4 固形物提取率測定 固形物提取率反映杭白菊的原料利用率,關(guān)系到成本問題。通過稱量法[11],可測定固形物提取率。
式中,M0——1.2.3.3中玻璃皿質(zhì)量,g;M為1.2.3.3中揮干有機(jī)溶劑后皿和樣品總質(zhì)量,g;W為菊花粉末質(zhì)量,g;25為測定液與樣液總量的換算指數(shù)。
1.2.5 單因素實(shí)驗 以菊花提取液中總黃酮提取率(mg/g)、綠原酸提取率(mg/g)以及固形物提取率(%)為指標(biāo),做料液比(g∶m L)、時間(min)、微波功率(w)的單因素實(shí)驗,研究各個因素對菊花提取液質(zhì)量和產(chǎn)量的影響規(guī)律。
1.2.5.1 料液比對提取效果的影響 準(zhǔn)確稱取菊花粉末 2.50g,設(shè)定微波功率300W,提取時間300s,分別加蒸餾水至料液比為1:20、1:30、1:40、1:50、1:60、1:70(g:m L),測定綠原酸、總黃酮、固形物的提取率。
1.2.5.2 微波功率對提取效果的影響 準(zhǔn)確稱取菊花粉末2.50g,加蒸餾水至料液比為1:40,設(shè)定提取時間300s,微波功率分別為0、100、200、300W,測定綠原酸、總黃酮、固形物的提取率。
1.2.5.3 提取時間對提取效果的影響 準(zhǔn)確稱取菊花粉末2.50g,加蒸餾水至料液比為1:40,設(shè)定微波功率300W,分別設(shè)定提取時間為120、210、300、390、480s,測定綠原酸、總黃酮、固形物的提取率。
1.2.6 正交優(yōu)化實(shí)驗 在單因素研究結(jié)果的基礎(chǔ)上,以菊花提取液中總黃酮提取率(mg/g)、綠原酸提取率(mg/g)以及固形物提取率(%)為指標(biāo),料液比(g:m L)、時間(s)、微波功率(W)為主要因素,選取L9(34),按表1進(jìn)行3水平3因素正交實(shí)驗。每個試驗重復(fù)三次。實(shí)驗數(shù)據(jù)用SPSS軟件分析。
表1 正交因素水平設(shè)計表Table1 Design of orthogonal experiment
2.1.1 總黃酮標(biāo)準(zhǔn)曲線 總黃酮標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程如下: y=0.3566x+0.0514, R2=0.9955。
式中,x為總黃酮濃度,mg/m L;y為樣品吸光值。R2>0.99,方程擬合得到的總黃酮含量結(jié)果可靠。
2.1.2 綠原酸標(biāo)準(zhǔn)曲線 綠原酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程如下:y=12659.8x+81.619,R2= 0.9995。
式中,x為綠原酸含量,μg;y為峰面積,103。R2>0.99,方程擬合得到的綠原酸含量結(jié)果可靠。
2.2.1 料液比對提取率的影響 如圖1和圖2,在1:20~1:50的料液比范圍內(nèi),總黃酮、綠原酸和固形物的提取率均隨料液比的增加而增大,并在1:50時達(dá)到最大值60.36mg/g、3.81mg/g、47.96%。料液比1:50時各物質(zhì)的提取率已趨于飽和,溶劑量進(jìn)一步增大則影響物質(zhì)的提取。這是因為微波加熱作用下原料的毛細(xì)孔特性增強(qiáng),使提取溶劑的滲透作用更有效[12],并且同超聲波一起作用于細(xì)胞,加速其瓦解,從而加快傳質(zhì)速率[13];物質(zhì)傳遞是物質(zhì)從物料粉末內(nèi)部(固相)向溶劑(液相)擴(kuò)散的過程[14]。當(dāng)溶劑量大,則兩相間的物質(zhì)濃度差大,擴(kuò)散推動力也大,從而更有利于物質(zhì)的溶出;而在1:50以后,溶劑量增大使能量分散,而超聲微波發(fā)生器位于提取瓶下方,液面越高微波超聲功率越弱[13],整體提取效率比能量集中時弱,因而隨著溶劑量增大提取率略有下降。
總體觀察料液比對總黃酮、綠原酸和固形物的提取率影響不明顯。考慮到后續(xù)濃縮加工、運(yùn)輸?shù)某杀?,盡量選取提取率較高而低料液比的條件。因此,可對1:30~1:50范圍內(nèi)的提取效果做進(jìn)一步研究。
圖1 料液比對總黃酮提取率和綠原酸提取率的影響Fig.1 Influence of solid-liquid ratio on extraction yield of total flavonoids and chlorogenic acid
圖2 料液比對固形物提取率的影響Fig.2 Influence of solid-liquid ratio on extraction yield of solid content
2.2.2 超聲-微波時間對提取率影響 如圖3,隨提取時間增加,總黃酮和綠原酸的提取率明顯增加,并在210s處分別達(dá)到高峰60.33mg/g和3.85mg/g,而后又顯著下降,并保持在略高于120s時的水平。如圖4,固形物提取率也呈現(xiàn)相似的趨勢,但在210s與300s達(dá)到幾乎相同的水平。其原理是,在微波作用下溶劑溫度會迅速升高,溫度升高可加快分子的運(yùn)動,從而增加物質(zhì)的溶出[10],但超聲作用會使溶劑中的氣泡破裂,造成局部高溫和高壓,進(jìn)而誘發(fā)酚類物質(zhì)結(jié)構(gòu)的瓦解[13],因此長時間的微波超聲作用會使黃酮、綠原酸等敏感性物質(zhì)變性的可能性增加,導(dǎo)致紫外下的特征吸收減弱。
300s時固形物提取率雖然較高,但菊花中的重要質(zhì)量指示性物質(zhì)綠原酸和總黃酮有一定的損失。綜合考慮耗能等因素,可對鄰近210s的提取時間做最優(yōu)化實(shí)驗。
圖3 提取時間對總黃酮提取率和綠原酸提取率的影響Fig.3 Influence of extracting time on extraction yield of total flavonoids and chlorogenic acid
圖4 提取時間對固形物提取率的影響Fig.4 Influence of extracting time on extraction yield of solid content
2.2.3 微波功率對提取率的影響 如圖5、6,微波功率0~200W范圍內(nèi),隨功率的增加,總黃酮、綠原酸、固形物提取率的增加十分顯著,200W時分別達(dá)到最大值60.07mg/g、3.97mg/g、48.05%;而隨后各指標(biāo)都下降,其中綠原酸含量下降明顯。微波和超聲波能破壞生物細(xì)胞,使細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)有效釋放到提取介質(zhì)中。細(xì)胞的瓦解又大大增加了接觸面積,從而增加了物質(zhì)從細(xì)胞內(nèi)到溶劑的傳質(zhì)速率[12];在一定范圍內(nèi),微波功率越大,細(xì)胞破碎得越徹底,傳質(zhì)速率的增加越明顯。然而,微波能量能穿透有機(jī)物質(zhì)的碳鏈結(jié)構(gòu)而到達(dá)官能團(tuán)[13],微波功率過大,可能引起敏感性物質(zhì)的變性。綠原酸、總黃酮、固形物含量的下降說明在此提取條件下,大于200W時微波和超聲的破壞作用可能比提取作用更明顯。
因此,對鄰近200W的微波功率可做進(jìn)一步實(shí)驗研究。
圖5 微波功率對總黃酮提取率和綠原酸提取率的影響Fig.5 Influence of microwave power on extraction yield of total flavonoids and chlorogenic acid
圖6 微波功率對固形物提取率的影響Fig.6 Influence of microwave power on extraction yield of solid content
以總黃酮、綠原酸、固形物提取率為菊花提取液的評價指標(biāo),3因素3水平正交實(shí)驗結(jié)果及分析見表2。極差分析結(jié)果表明,各因素對三個指標(biāo)影響大小順序相同,均為 A>B>C,即微波功率是影響各物質(zhì)提取率最重要的因素,提取時間次之,料液比影響最小。這與單因素所得趨勢吻合。
方差分析結(jié)果(表3)表明,對于綠原酸和總黃酮的提取率,僅微波功率(A)的不同水平會產(chǎn)生顯著差異;對于固形物含量,微波功率(A)和提取時間(B)的不同水平均會產(chǎn)生顯著差異。使總黃酮、綠原酸、固形物提取率最大化的提取條件分別為A3B2C2、A3B3C2、A3B3C1。
總黃酮和綠原酸是菊花提取液中最重要的功能性物質(zhì),也是工業(yè)上評價菊花產(chǎn)品質(zhì)量的主要理化指標(biāo);在總黃酮和綠原酸提取率對應(yīng)的最佳水平下,固形物提取率較可觀;由于料液比的影響不顯著,又從節(jié)水、節(jié)省空間、方便運(yùn)輸和后續(xù)加工的角度考慮,同等提取效果下選擇低料液比條件為佳。因此,經(jīng)綜合評價,將最佳組合確定為A3B3C1,即250W、240s、1:30。
對正交實(shí)驗確定的最佳條件進(jìn)行驗證,試驗重復(fù)三次。結(jié)果表明,250W、240s、1:30的條件下,總黃酮提取率為62.20±0.30mg/g,綠原酸提取率為4.05± 0.06mg/g,固形物提取率50.75±0.3%。結(jié)果較理想,證明正交實(shí)驗結(jié)果可靠。
表2 正交實(shí)驗結(jié)果與分析Table2 Result and analysis of orthogonal experiment
表3 正交實(shí)驗方差分析Table3 Variance analysis of orthogonal experiment
注:*表示差異顯著,p<0.05.
為了證明超聲-微波協(xié)同提取法的優(yōu)越性。在相同實(shí)驗室環(huán)境下,用幾種常規(guī)提取方法制備杭白菊水提液,并與本論文所研究的方法進(jìn)行比較。所用料液比均為1:30(g:m L)。提取條件及結(jié)果如表4所示。
由表4可知,超聲微波協(xié)同輔助法的提取效率明顯高于傳統(tǒng)提取法和單獨(dú)的超聲/微波輔助法。其中,熱回流法的提取效率較高,略低于超聲微波法,但后者的提取時間是前者的1/30。短時間的單獨(dú)超聲輔助的提取效率略高于常溫浸提,但不如熱回流和含微波過程的提取方法。相比于效率較高、應(yīng)用較廣泛的傳統(tǒng)熱回流,超聲微波法的總黃酮提取率提高了5.98%,綠原酸提取率提高4.09%,總固形物含量提高13.74%,并大大縮短了提取時間。
通過單因素和正交實(shí)驗確定微波功率250W,提取時間240s、料液比1:30(g:m L)的條件下,杭白菊的提取效率最高:總黃酮提取率達(dá)(62.20±0.30)mg/g,綠原酸提取率達(dá)(4.05±0.06)mg/g,固形物提取率50.75%±0.3%。
與浸提法、熱回流法、微波輔助法比較,利用超聲-微波協(xié)同制備杭白菊水提液,可以在較低的料液比下獲得較高的提取率,同時縮短提取時間,減少有效物質(zhì)的損失。本實(shí)驗方法制得的菊花水提液總黃酮和綠原酸含量高,可作為菊花濃縮汁、菊花濃縮粉的原材料。雖然目前微波-超聲協(xié)同萃取實(shí)現(xiàn)工業(yè)化還存在一定的困難,但本實(shí)驗所得到的參數(shù)可為工業(yè)化研究提供一定的參考。
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