肖忠新 張進(jìn)祿*

目前，有許多蛋白與蛋白相互作用的研究方法，如親和層析、免疫共沉淀、凝膠阻滯法、熒光光譜法及酵母雙雜交等，而熒光共振能量轉(zhuǎn)移(fluorescence resonance energy transfer，F(xiàn)RET)方法可在多種細(xì)胞類型中定量研究蛋白-蛋白相互作用，具有其他方法不可比擬的優(yōu)點(diǎn)，在近年來廣受推崇[1]。20世紀(jì)30年代，法國物理學(xué)家Jean Perrin對(duì)FRET現(xiàn)象進(jìn)行了描述，后由德國科學(xué)家Theodor[2]和F?rster[3]闡明，從1992年綠色熒光蛋白克隆成功后，F(xiàn)RET逐漸成為研究活細(xì)胞中分子之間相互作用的強(qiáng)有力的技術(shù)方法[4]。

1 FRET基本原理

FRET是指兩個(gè)熒光基團(tuán)間能量通過偶極-偶極耦合作用以非輻射方式從供體傳遞給受體的現(xiàn)象，應(yīng)用能量轉(zhuǎn)移來測(cè)量分子內(nèi)和分子間的距離。FRET技術(shù)可在單個(gè)固定細(xì)胞或活細(xì)胞原位生理環(huán)境下檢測(cè)分子間的直接相互作用，如檢測(cè)配體-受體、蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)、蛋白質(zhì)折疊以及蛋白質(zhì)二聚化等。21世紀(jì)初，F(xiàn)RET現(xiàn)象已可利用3種方式進(jìn)行研究，即光學(xué)強(qiáng)度成像測(cè)量、光譜測(cè)量和壽命測(cè)量[5]。

FRET的效率(E)與供體-受體間距離(r)的6次方成反比，即其中R0是E=50%時(shí)的供體-受體距離，稱為F?rster距離或臨界轉(zhuǎn)移距離。FRET的發(fā)生需滿足4個(gè)條件：供體-受體間距離≤10 nm；供體的發(fā)射光譜與受體的激發(fā)光譜有一定重疊；供體-受體偶極矩具有合適的相對(duì)取向；供體量子產(chǎn)率和受體光吸收系數(shù)足夠高[6]。

2 FRET的測(cè)定方法

用激光共聚焦顯微鏡檢測(cè)FRET具有獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)，利用其激光光源激發(fā)供體、多通道同時(shí)檢測(cè)雙重(或多重)熒光信號(hào)，并利用時(shí)間掃描程序檢測(cè)熒光信號(hào)在二維及三維空間的變化，且還可利用其軟件可得出定量測(cè)定曲線和數(shù)據(jù)[7]。利用激光共聚焦顯微鏡研究FRET有兩類常用方法：即敏化發(fā)射和受體光漂白測(cè)量方法。

2.1 敏化發(fā)射方法

敏化發(fā)射測(cè)量方法其原理是在激發(fā)供體的情況下檢測(cè)受體發(fā)射熒光的強(qiáng)度，其為FRET成像中簡單直觀的一種方法，適用于活細(xì)胞及熒光蛋白轉(zhuǎn)染的細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)前需構(gòu)建熒光融合蛋白的重組載體，經(jīng)酶切與測(cè)序鑒定正確后再進(jìn)行共轉(zhuǎn)染細(xì)胞，在其轉(zhuǎn)染效率達(dá)到30%左右時(shí)進(jìn)行測(cè)定[8]。在敏化發(fā)射方法中應(yīng)注意兩種干擾因素：①Bleed through，激發(fā)供體的同時(shí)受體受到激發(fā)而發(fā)光，激發(fā)受體的同時(shí)供體受到激發(fā)；②Cross-talk，激發(fā)供體時(shí)在受體通路檢測(cè)到供體的發(fā)射光，激發(fā)受體時(shí)在供體通道檢測(cè)到受體的發(fā)射光?？赏ㄟ^計(jì)算各個(gè)通道內(nèi)的串?dāng)_因子系數(shù)，將總FRET信號(hào)按照系數(shù)減去一定比例的串?dāng)_因子，得到FRET效率。目前，有許多推薦的方法具體指導(dǎo)串?dāng)_因子的扣除[8]。

在實(shí)驗(yàn)中，除了測(cè)量待測(cè)FRET樣本實(shí)驗(yàn)外，還需增加3個(gè)參考樣本對(duì)系統(tǒng)進(jìn)行串?dāng)_校正，即供體熒光團(tuán)的供體對(duì)照樣本、受體熒光團(tuán)的受體對(duì)照樣本和已知FRET效率的校正樣本[9-10]。敏化發(fā)射方法也有其自身的限制，需要利用對(duì)照樣本對(duì)光學(xué)檢測(cè)系統(tǒng)以及熒光基團(tuán)的光學(xué)性質(zhì)進(jìn)行事先校正，增加了實(shí)驗(yàn)的工作量和難度[11]。敏化發(fā)射方法適于檢測(cè)固定細(xì)胞、活細(xì)胞和熒光蛋白轉(zhuǎn)染的細(xì)胞。在實(shí)驗(yàn)中需注意，應(yīng)去除光譜交叉和本底的影響，檢測(cè)過程較繁瑣，對(duì)樣品要求較高(需要有雙轉(zhuǎn)、單轉(zhuǎn)供體，單轉(zhuǎn)受體樣本)。

2.2 受體光漂白方法

受體漂白FRET(acceptor photobleaching FRET，apFRET)是一種檢測(cè)FRET的方法，其基本原理是，如果2個(gè)熒光分子存在能量轉(zhuǎn)移，對(duì)受體進(jìn)行光漂白后其供體的熒光就會(huì)升高。通過檢測(cè)供體熒光的增強(qiáng)來計(jì)算FRET效率，F(xiàn)RET效率以供體熒光增強(qiáng)的百分?jǐn)?shù)表示(公式1)：

式中I和I′分別為漂白前和漂白后的供體的熒光強(qiáng)度[12]。

在共聚焦顯微鏡上容易實(shí)現(xiàn)受體光漂白方法操作，測(cè)量FRET效率既不依賴于系統(tǒng)參數(shù)，也不依賴于供體與受體的量子產(chǎn)率和消光系數(shù)，只依賴于受體光漂白前后供體的熒光強(qiáng)度變化。然而，受體光漂白會(huì)對(duì)生物體造成的損傷，不利于在單細(xì)胞中進(jìn)行多次測(cè)量，也不能在細(xì)胞中進(jìn)行實(shí)時(shí)動(dòng)態(tài)檢測(cè)[11]。

受體光漂白方法適于固定及免疫熒光標(biāo)記的樣品，其優(yōu)點(diǎn)是可完全克服“bleed through”，“Crosstalk”(光譜滲透干擾)，因此不需要進(jìn)行復(fù)雜校正，測(cè)量比較簡便，容易獲得實(shí)驗(yàn)結(jié)果；其缺點(diǎn)是因測(cè)量時(shí)需對(duì)受體熒光分子進(jìn)行光漂白，如果樣品是活細(xì)胞，在光漂白的過程中，被檢測(cè)的分子會(huì)發(fā)生改變，所以只適合檢測(cè)固定樣品細(xì)胞內(nèi)分子間相互作用。

3 FRET技術(shù)在實(shí)驗(yàn)中的應(yīng)用

3.1 FRET熒光對(duì)的選擇

在FRET體系中常用的熒光能量供體、受體對(duì)主要有CFP/YFP、BFP/GFP、GFP/RFP和CY3/CY5等[13-15]。目前，F(xiàn)RET技術(shù)需解決的問題是如何減少和排除非特異信號(hào)，提高對(duì)極低水平信號(hào)的探測(cè)[16]。而構(gòu)建一個(gè)高效、特異的FRET探針并非易事，在研制熒光蛋白FRET探針過程中所面臨的主要問題則在于如何提高探針在活細(xì)胞中檢測(cè)的特異性和敏感性[17]。

選擇FRET熒光對(duì)應(yīng)遵循的原則：①供體的熒光量子產(chǎn)率(QD)要大；②供體和受體的光譜重疊積分J(λ)應(yīng)盡可能大，即供體發(fā)射光譜與受體激發(fā)光譜應(yīng)盡可能多的重疊(＞30%)；③供體和受體之間光譜干擾(cross-talk)要盡量??；④有較高的信噪比(S/B)；⑤能量供體受體對(duì)要有適度的光漂白性質(zhì)，從而有利于用不同的方法檢測(cè)FRET[18]。

由于在分子之間發(fā)生FRET的距離＜10 nm，F(xiàn)RET適合檢測(cè)較小的蛋白質(zhì)的相互作用[19-21]。

3.2 FRET技術(shù)的局限性

FRET技術(shù)受客觀因素影響較多，如待測(cè)分子濃度、光漂白及激發(fā)光強(qiáng)度等，因此其重復(fù)性不夠好。用FRET檢測(cè)蛋白有相互作用，要求有較高的轉(zhuǎn)染效率設(shè)置對(duì)照等要求。目前，分析蛋白質(zhì)間的相互作用需要結(jié)合兩種不同的方法相互取長補(bǔ)短才能得出一個(gè)科學(xué)的結(jié)論，通過結(jié)合FRET技術(shù)和免疫共沉淀技術(shù)能達(dá)到較理想的狀態(tài)[22]。

3.3 FRET技術(shù)的應(yīng)用范圍

FRET的技術(shù)可用于檢測(cè)酶活性變化、細(xì)胞凋亡的研究以及膜蛋白的研究[23]。激光共聚焦顯微鏡已成熟應(yīng)用于原位鑒定細(xì)胞或組織內(nèi)生物大分子，觀察細(xì)胞及亞細(xì)胞形態(tài)結(jié)構(gòu)等領(lǐng)域，許多有關(guān)蛋白分子的共定位、蛋白分子聚合體、轉(zhuǎn)錄機(jī)制和蛋白折疊等分子生物學(xué)問題均可通過FRET技術(shù)得到解決[24]。

4 FRET技術(shù)發(fā)展趨勢(shì)

在發(fā)光源、高級(jí)成像技術(shù)和理論分析模型等領(lǐng)域的創(chuàng)新推動(dòng)了FRET技術(shù)的發(fā)展，以稀土發(fā)光材料作為供體的共振能量傳遞(luminescence resonance energy transfer，LRET)以及基于能量供體和能量受體之間非放射性的能量轉(zhuǎn)移的生物發(fā)光能量轉(zhuǎn)移(bioluminescence resonance energy transfer，BRET)的研究方法也相繼出現(xiàn)。今后隨著各領(lǐng)域方法技術(shù)的日益交匯融合，以及新儀器的層出涌現(xiàn)，生命科學(xué)的分析測(cè)試能力將不斷增強(qiáng)，為生命科學(xué)研究提供日益精尖的工具[16]。如FRET技術(shù)和熒光相關(guān)譜(fluorescence correlation spectroscopy，F(xiàn)CS)技術(shù)是兩種可在活細(xì)胞中檢測(cè)單分子行為的互補(bǔ)技術(shù)，F(xiàn)RET技術(shù)反映分子自身構(gòu)像變化和分子間的空間距離變化，而FCS技術(shù)從分子熒光漲落中提取單分子的動(dòng)態(tài)行為如濃度和擴(kuò)散系數(shù)[25]。

綠色熒光蛋白(green fluorescent protein，GFP)及其變種的發(fā)現(xiàn)以及顯微熒光技術(shù)的發(fā)展使得FRET技術(shù)在活細(xì)胞中的應(yīng)用更加廣泛[11]。熒光蛋白、有機(jī)染料以及半導(dǎo)體量子點(diǎn)在單分子熒光技術(shù)上均有應(yīng)用。由于其光穩(wěn)定性遠(yuǎn)強(qiáng)于熒光蛋白及有機(jī)熒光染料，半導(dǎo)體量子點(diǎn)作為一種新型的熒光探針正越來越廣泛地被采用[26]。未來隨著分子生物學(xué)的發(fā)展，測(cè)量儀器和技術(shù)方法的不斷更新和改進(jìn)，探針的改進(jìn)及數(shù)據(jù)分析的改進(jìn)，F(xiàn)RET技術(shù)將有很大的發(fā)展空間，F(xiàn)RET技術(shù)必將對(duì)生命科學(xué)的發(fā)展起到重大的推動(dòng)作用。

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