脊椎動(dòng)物的骨骼形成是一個(gè)復(fù)雜的過程。從間充質(zhì)細(xì)胞的富集、體節(jié)的形成、軟骨內(nèi)成骨或膜內(nèi)成骨到骨骼的鈣化,軟骨細(xì)胞、成骨細(xì)胞和破骨細(xì)胞之間總是存在功能的平衡。軟骨內(nèi)成骨作為骨骼形成的一種主要方式,受多種因素的影響,Notch通路在該過程中起到了極其重要的作用。
1 軟骨內(nèi)成骨
脊椎動(dòng)物的骨骼發(fā)育主要有兩種形式:一種是以顱面部骨及鎖骨為代表的膜內(nèi)成骨,還有以中軸骨、四肢骨及顱底骨為代表的軟骨內(nèi)成骨[1]。軟骨內(nèi)成骨發(fā)生在胚胎早期,始于間充質(zhì)細(xì)胞的富集,繼而形成兩種不同的細(xì)胞亞群:一個(gè)群體形成骨骼生長板,即胚胎發(fā)育的一次骨化中心,主要決定了骨的形狀;另外一群體則形成骨骺端關(guān)節(jié)軟骨,又被稱為二次骨化中心,進(jìn)一步限定了骨的形狀和大小[2]。通常,骨的形狀不同,骨化的方式也有所不同,如:四肢的長骨為二次骨化形式,而椎骨則為一次骨化形成。顱底軟骨的形成及骨化類似于四肢骨,以生長板形式進(jìn)行。
在間充質(zhì)細(xì)胞富集區(qū),中心區(qū)域的細(xì)胞終止增殖,進(jìn)入分化,經(jīng)過前肥大細(xì)胞、肥大細(xì)胞、終末肥大細(xì)胞最終分化為肥大成熟的軟骨細(xì)胞,分泌礦化的細(xì)胞外基質(zhì)即形成軟骨,為下一步的骨化提供模板。軟骨由一層成纖維細(xì)胞樣細(xì)胞包裹,后者被稱為軟骨膜。當(dāng)間充質(zhì)細(xì)胞分化到肥大細(xì)胞階段,軟骨膜內(nèi)的細(xì)胞開始分化為成骨細(xì)胞,同時(shí)軟骨膜開始轉(zhuǎn)變?yōu)檠茇S富的骨膜,血管進(jìn)入軟骨基質(zhì)中,成骨和破骨細(xì)胞通過血管分布到軟骨基質(zhì),開始破壞軟骨基質(zhì)同時(shí)分泌骨基質(zhì),形成松質(zhì)骨,存留在骨膜中的成骨細(xì)胞則分泌高度鈣化的基質(zhì)形成皮質(zhì)骨[1]。
2 Notch信號(hào)通路
胚胎軟骨發(fā)育受復(fù)雜多變的信號(hào)通路綜合調(diào)節(jié),從現(xiàn)有知識(shí)體系來看,主要包括Ihh、BMP、FGF、Wnt、Notch等信號(hào)通路[1]。其中,Notch通路通過調(diào)節(jié)胚胎期干細(xì)胞的增殖、分化與凋亡過程,參與調(diào)控哺乳動(dòng)物胚胎體節(jié)發(fā)生[3]、胚胎神經(jīng)系統(tǒng)及消化系統(tǒng)的發(fā)育[4],并在腫瘤的發(fā)生過程中扮演了重要的角色,現(xiàn)在已成為腫瘤治療研究的新靶點(diǎn)[5]。近年來,研究者們開始關(guān)注該通路在骨發(fā)育過程中的作用。Notch基因最初在果蠅體內(nèi)發(fā)現(xiàn)[6],隨后眾多的研究證明其廣泛存在且高度保守。在哺乳動(dòng)物,Notch受體包括Notch1-4四種,配體主要有Delta-like1、3、4和Jagged1、2共五種。作為一種跨膜蛋白受體,Notch配體首先在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中轉(zhuǎn)錄翻譯形成初級(jí)蛋白并被運(yùn)輸?shù)礁郀柣w,其中的蛋白轉(zhuǎn)化酶(protein convertases)在Notch1初級(jí)蛋白S1位點(diǎn)進(jìn)行剪切,隨后糖基化轉(zhuǎn)移酶(glycosyltransferases)對(duì)其進(jìn)行不同的糖基化修飾,從而影響配體和受體結(jié)合后的不同反應(yīng)[6]。Notch與相鄰細(xì)胞上的配體結(jié)合后,膜旁負(fù)性調(diào)節(jié)區(qū)域(juxtamembrane negative control region,NRR)展開,α-secretase識(shí)別該區(qū)域并在S2位點(diǎn)剪切掉Notch的胞外段,隨后γ-secretase在胞內(nèi)段S3位點(diǎn)的剪切最終產(chǎn)生胞內(nèi)片段NICD。NICD直接進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi),與CSL(DNA結(jié)合蛋白,不同種屬中名稱不同)結(jié)合,然后募集Maml(NICD的共同激活因子)、結(jié)合組蛋白乙?;负秃巳旧|(zhì)改建復(fù)合物等形成復(fù)合體,解除CSL對(duì)目標(biāo)基因的轉(zhuǎn)錄抑制作用,并最終產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng)[7]。
3 Notch信號(hào)通路對(duì)軟骨內(nèi)成骨的影響
3.1體內(nèi)試驗(yàn):胚胎12.5天(E12.5)的小鼠前肢芽區(qū)開始出現(xiàn)成軟骨祖細(xì)胞的聚集,此時(shí)整個(gè)干細(xì)胞聚集區(qū)都呈現(xiàn)Notch1陽性信號(hào),而到16.5天(E16.5),軟骨分化成熟時(shí),Notch1陽性細(xì)胞只分布于軟骨的邊緣區(qū)域[8]。這提示其可能參與調(diào)控軟骨內(nèi)成骨全過程。進(jìn)一步的模型動(dòng)物研究表明:Notch過表達(dá)(Gain of function)的小鼠總體表現(xiàn)出圓頭短吻、胸廓小、軀干及尾部短的特點(diǎn),阿辛藍(lán)-茜素紅染色顯示整體軟骨發(fā)育不全,通過軟骨內(nèi)成骨方式形成的骨普遍體積較小且長度不足,肢端幾乎沒有骨化中心存在,且這種轉(zhuǎn)基因小鼠均為胚胎期致死[9-10]。也有研究者通過過表達(dá)配體激活內(nèi)源性Notch通路,進(jìn)一步觀察軟骨內(nèi)成骨過程的變化。研究發(fā)現(xiàn),在雞胚上肢區(qū)域用逆轉(zhuǎn)錄病毒過表達(dá)Del-1后,早期上肢的發(fā)育形態(tài)并無改變,而在胚胎7天以后,大小上的差異逐漸明顯起來,肢端出現(xiàn)畸形。值得注意的是,Notch通路的配體在脊椎動(dòng)物有五種,其中一種配體的升高并不能全面解釋經(jīng)典Notch通路在軟骨發(fā)育中的作用[11]。因?yàn)椴煌潴w的表達(dá)具有階段性,故以不同配體過表達(dá)方式進(jìn)行研究有利于揭示Notch通路在骨發(fā)育不同階段的影響。這一方面的研究值得進(jìn)一步深入。同時(shí),因?yàn)镹otch通路在胚胎的各個(gè)系統(tǒng)發(fā)育,尤其是神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育中有重要的作用,因此,全身敲除Notch導(dǎo)致胚胎早期致死,無法進(jìn)行后續(xù)研究,而條件性基因敲除策略或許可以避免這一缺點(diǎn),為后續(xù)的骨發(fā)育研究創(chuàng)造條件。
3.2體外實(shí)驗(yàn):間充質(zhì)干細(xì)胞、胚胎肢芽微聚體等原代細(xì)胞有向軟骨細(xì)胞分化的潛能,常被用于軟骨分化機(jī)制的研究。ATDC5細(xì)胞系(小鼠畸胎瘤成纖維細(xì)胞系)在胰島素的誘導(dǎo)下發(fā)生軟骨向分化[12]。ATDC5細(xì)胞在誘導(dǎo)早期即開始表達(dá)Notch1和相應(yīng)的配體Del1[8],這種表達(dá)的時(shí)間模式與原代細(xì)胞的培養(yǎng)結(jié)果相似,也類似于體內(nèi)試驗(yàn)中動(dòng)物早期干細(xì)胞富集區(qū)Notch1的表達(dá)模式[8]。運(yùn)用該體外模型,有利于探索Notch信號(hào)通路對(duì)軟骨向分化調(diào)控的機(jī)制。首先,Notch通路的激活有利于細(xì)胞的增殖:在配體Del的激活Notch信號(hào)通路的情況下,小鼠間神經(jīng)嵴細(xì)胞克隆的直徑明顯增大,細(xì)胞數(shù)目顯著增加[13]。其次,在促進(jìn)細(xì)胞增殖的同時(shí),Notch也可調(diào)控體外培養(yǎng)細(xì)胞的軟骨向分化能力。與高表達(dá)Del1的D10細(xì)胞共培養(yǎng)時(shí),ATDC5細(xì)胞軟骨結(jié)節(jié)及細(xì)胞外基質(zhì)形成明顯減少[8];相反,通過DAPT(γ蛋白酶阻斷劑)阻斷Notch通路后,肢芽微聚體及間充質(zhì)干細(xì)胞中NICD量明顯下降,軟骨向分化能力增強(qiáng),表現(xiàn)為軟骨結(jié)節(jié)的表達(dá)增多[14-15];實(shí)驗(yàn)從正反兩方面說明,Notch信號(hào)通路的激活能維持細(xì)胞系的增殖潛能,抑制軟骨向分化。值得注意的是ATDC5細(xì)胞系軟骨源性的細(xì)胞系,并非多能干細(xì)胞。
同樣,利用JAG1過表達(dá)的質(zhì)粒使hMSC的Notch通路持續(xù)激活,則細(xì)胞會(huì)維持在聚合體狀態(tài),不再繼續(xù)分化為成熟的圓形肥大細(xì)胞[2]。有趣的是,在小鼠神經(jīng)嵴細(xì)胞成軟骨誘導(dǎo)初始即刻添加Delta-Fc,軟骨結(jié)節(jié)更豐富,24h后再添加相同劑量Delta-Fc,成軟骨情況不會(huì)改善[13]。兩種相反的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明了Notch通路作用時(shí)間及細(xì)胞所處分化階段的重要性。最新的研究對(duì)Notch表達(dá)時(shí)期的重要性進(jìn)行了探索,Rachel等利用人間充質(zhì)干細(xì)胞3D聚體培養(yǎng)進(jìn)行成軟骨向誘導(dǎo),發(fā)現(xiàn)Notch通路配體Jag-1及目標(biāo)基因Hey-1的表達(dá)從誘導(dǎo)開始便急劇上升,并在第2天到達(dá)最高值,之后迅速下降,在表達(dá)下降后,才開始出現(xiàn)軟骨分化標(biāo)志物Col-II的上升。利用DAPT早期阻斷Notch通路可有效降低軟骨形成,同時(shí)若誘導(dǎo)后期Jag-1過表達(dá)持續(xù)激活Notch通路,則軟骨的形成受到抑制。Notch通路的早期激活開啟了干細(xì)胞的軟骨向分化,但在分化后期持續(xù)表達(dá)卻能抑制進(jìn)一步分化進(jìn)行,從而維持前體細(xì)胞狀態(tài)[16]。目前,對(duì)Notch通路調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡作用的研究主要集中在腫瘤發(fā)生發(fā)展領(lǐng)域,Notch通路能夠抑制腫瘤細(xì)胞的凋亡,現(xiàn)已成為腫瘤治療的新靶點(diǎn)[17]。而 Notch通路對(duì)ATDC5凋亡影響的初步研究表明其對(duì)凋亡沒有明顯影響[8]。
綜上所述,體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)研究表明,Notch能夠促進(jìn)細(xì)胞的增殖,啟動(dòng)早期分化,維持前體細(xì)胞的干性,抑制細(xì)胞的進(jìn)一步分化成熟,與軟骨內(nèi)成骨過程密切相關(guān)。
4 Notch通路與其他通路的相互作用
作為一條高度保守的重要通路,Notch通路調(diào)節(jié)各個(gè)系統(tǒng)的生長發(fā)育,只依靠自身有限的受體配體作用,不足以解釋其控制發(fā)育過程的復(fù)雜性,因此通路之間的相互調(diào)節(jié)共同作用也是十分重要的。在軟骨發(fā)育中,主要的調(diào)節(jié)通路包括Sox9、BMP、FGF等可能與Notch通路有交互作用。有研究表明,Jag1通過激活Notch通路抑制Sox9的表達(dá),另一方面,Notch也直接抑制Sox9的目的基因,兩條途徑共同作用抑制hMSC的軟骨向分化[16]。另外,研究發(fā)現(xiàn)FGF2能促進(jìn)小鼠MSC成軟骨向分化,阻斷Notch通路后,其促進(jìn)成軟骨向分化能力減弱,表現(xiàn)為Col-II表達(dá)減少,而利用SU5402阻斷FGF通路后,Del-Fc激活Notch通路可部分解除對(duì)Col-II的表達(dá)抑制,這說明FGF2的部分功能可以通過Notch通路行使[13]。再者,DAPT處理細(xì)胞抑制Notch通路后,BMP4表達(dá)未受影響,但相應(yīng)的下游蛋白Id1表達(dá)卻有了相當(dāng)?shù)纳?,這可能是由于BMP4位于Notch上游并通過其抑制成軟骨向分化過程[14]。很多證據(jù)表明Notch在影響軟骨分化的過程中與其他通路有著密切的聯(lián)系和相互作用,這是一個(gè)復(fù)雜而精細(xì)的調(diào)控網(wǎng)絡(luò),具體的機(jī)制還有待進(jìn)一步探討。
5 結(jié)論
軟骨內(nèi)成骨過程中,Notch通路作用的細(xì)胞及分子生物學(xué)機(jī)制是非常復(fù)雜的,不同時(shí)期配體的調(diào)控、與其他通路的相互作用等在Notch行使功能時(shí)扮演了重要角色。越來越多的研究表明,Notch通路在控制干細(xì)胞的增殖和軟骨向分化、維持細(xì)胞的干細(xì)胞活性、保持基質(zhì)的平衡方面起了重要的作用,而其中的具體機(jī)制仍有待探索。深入研究Notch通路對(duì)軟骨內(nèi)成骨的影響有利于人們進(jìn)一步理解生命發(fā)展過程,為各種先天性骨、軟骨發(fā)育不全等骨畸形的預(yù)防性診斷及治療開辟途徑。
[參考文獻(xiàn)]
[1]Wuelling M,Vortkamp A.Chondrocyte proliferation and differentiation[J].Endocr Dev,2011, 21:1-11.
[2]Oldershaw RA,Hardingham TE.Notch signaling during chondrogenesis of human bone marrow stem cells[J].Bone,2010,46(2):286-293.
[3]Shifley ET,Cole SE.The vertebrate segmentation clock and its role in skeletal birth defects[J].Birth Defects Res C Embryo Today,2007,81(2):121-33.
[4]Guruharsha KG,Kankel MW,Artavanis-Tsakonas S.The Notch signalling system: recent insights into the complexity of a conserved pathway[J].Nat Rev Genet,2012,13(9):654-666.
[5]Ranganathan P,Weaver KL,Capobianco AJ.Notch signalling in solid tumours: a little bit of everything but not all the time[J].Nat Rev Cancer,2011,11(5):338-351.
[6]Artavanis-Tsakonas S,Rand MD,Lake RJ.Notch signaling: cell fate control and signal integration in development[J].Science,1999,284(5415):770-776.
[7]Bray SJ.Notch signalling: a simple pathway becomes complex[J].Nat Rev Mol Cell Biol, 2006,7(9):678-689.
[8]Watanabe N.Suppression of differentiation and proliferation of early chondrogenic cells by Notch[J].J Bone Miner Metab,2003,21(6):344-352.
[9]Mead TJ,Yutzey KE.Notch pathway regulation of chondrocyte differentiation and proliferation during appendicular and axial skeleton development[J]. Proc Natl Acad Sci US A,2009,106(34):14420-14425.
[10]Mead TJ,Yutzey KE.Notch pathway regulation of chondrocyte differentiation and proliferation during appendicular and axial skeleton development[J].Proc Natl Acad Sci USA, 2009,106(34):14420-14425.
[11]Crowe RJ,Niswander L.Delta-1 negatively regulates the transition from prehypertrophic to hypertrophic chondrocytes during cartilage formation[J].Development,1999,126(5):987-998.
[12]Yao Y,Wang Y.ATDC5: an excellent in vitro model cell line for skeletal development[J].J Cell Biochem,2013,114(6):1223-1229.
[13]Nakanishi K,Chan YS,Ito K.Notch signaling is required for the chondrogenic specification of mouse mesencephalic neural crest cells[J].Mech Dev,2007,124(3):190-203.
[14]Fujimaki R.Involvement of Notch signaling in initiation of prechondrogenic condensation and nodule formation in limb bud micromass cultures[J].J Bone Miner Metab,2006,24(3): 191-198.
[15]Dong Y.RBPjkappa-dependent Notch signaling regulates mesenchymal progenitor cell proliferation and differentiation during skeletal development[J].Development,2010,137(9): 1461-1471.
[16]Oldershaw RA.Notch signaling through Jagged-1 is necessary to initiate chondrogenesis in human bone marrow stromal cells but must be switched off to complete chondrogenesis[J]. Stem Cells,2008,26(3):666-674.
[17]Dang TP.Notch, apoptosis and cancer[J].Adv Exp Med Biol,2012,727:199-209.
編輯/李陽利