孫長波,石磊嶺,涂建飛,韓丹丹,張清清,張 晶,*
(1.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)中藥材學(xué)院,吉林 長春 130118;2.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)發(fā)展學(xué)院,吉林 長春 130600;3.新疆中藥民族藥研究所,新疆 烏魯木齊 830002)
桑葉為桑科(Moraceae)植物桑(Morus alba L.)的干燥葉子,藥用歷史悠久,具有廣泛的藥理活性,是中醫(yī)清熱解毒之要藥,用于風(fēng)熱感冒、肺熱燥咳、頭暈頭疼、目赤暈花等癥[1]。桑葉中多糖、黃酮及生物堿均可不同程度的降低糖尿病小鼠的血糖,促進(jìn)其肝糖元的合成,增加肝糖元含量[2-6],增加糖尿病動物糖的貯藏能力,同時對其并發(fā)的血脂異常有一定的改善作用[7]。1-脫氧野尻霉素(DNJ)是桑葉中所特有的,且含量極高的生物堿類成分,黃酮類成分——蘆丁的含量在桑葉中也很高,它們均為天然的α-糖苷酶抑制劑[8-11],可作為治療糖尿病、病毒感染、腫瘤轉(zhuǎn)移及溶酶體儲存紊亂等眾多疾病的藥物。自桑葉中提取降糖有效成分是現(xiàn)在的一個研究熱點(diǎn)。
真空氣流植物細(xì)胞破壁(vacuum air current for plant cell wall breakdown,VAPB)技術(shù)現(xiàn)主要應(yīng)用于將果蔬干燥,并制成非油炸脆片。其原理是:將新鮮植物樣品在密閉加壓條件下進(jìn)行加熱,使細(xì)胞內(nèi)水份急速汽化而使胞內(nèi)壓力迅速升高,然后對其進(jìn)行瞬間減壓,細(xì)胞壁因壓力巨變而破碎,得到細(xì)胞破壁植物樣品。保持破壁溫度至樣品干燥完全。此技術(shù)對植物細(xì)胞破壁率高,可達(dá)90%以上,且不改變藥材的外觀,溫度可根據(jù)植物樣品所含成分的性質(zhì)進(jìn)行控制。由于細(xì)胞壁的破碎,使內(nèi)部的有效成分更易被溶劑溶出,可大大提高有效成分的提取量。但此項(xiàng)技術(shù)在中藥成分提取的前處理過程中的應(yīng)用報道較少[12-13]。本實(shí)驗(yàn)就此技術(shù)對桑葉中有效成分提取率的影響進(jìn)行研究,將桑葉中多糖、生物堿、黃酮3類成分最大量的提取,可提高桑葉的藥效,利于其應(yīng)用開發(fā)。
桑葉:真空氣流細(xì)胞破壁與未破壁桑葉樣品均由吉林省品品源生物科技有限公司提供,均為桑科植物桑(Morus alba L.)的干燥葉,采集于2011年5月山東。桑葉經(jīng)真空氣流細(xì)胞破壁處理,電鏡檢測破壁率大于90%,即為破壁桑葉。分別粉碎,過60目篩,待用。
LC-2010高效液相色譜儀(SPD-10Avp紫外檢測器;LC-Solution色譜工作站)、UV-1700分光光度計(jì) 日本島津公司;KQ-250DB型數(shù)控超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司。
蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(批號0080-9750,純度≥98%) 中國食品藥品檢定研究院;葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品(批號20110514,純度≥98%) 中國醫(yī)藥集團(tuán)上?;瘜W(xué)試劑公司;DNJ標(biāo)準(zhǔn)品(批號WKQ0117,純度≥98%) 四川維克奇生物科技有限公司;芴甲氧羰酰氯(Fmoc-Cl,純度≥98%) 上海共價化學(xué)有限公司;甘氨酸(純度≥99%) 上海邁瑞爾化學(xué)技術(shù)有限公司;甲醇、乙腈(均為色譜純) 美國Fisher公司;純凈水 杭州娃哈哈集團(tuán);其余試劑及藥品均為分析純。
1.3.1 HPLC法測定桑葉中DNJ含量
1.3.1.1 色譜條件
色譜柱:Hypersil ODS2(4.6mm×250mm,5μm);流動相為乙腈(A)-水(B),梯度洗脫:0~30min為30%~60%A;檢測波長:254nm;柱溫:25℃;流速:1.0mL/min;進(jìn)樣量:20μL。
1.3.1.2 DNJ對照品溶液制備精密取DNJ標(biāo)準(zhǔn)品2.0mg,以甲醇定容至20mL,得0.1mg/mL的DNJ標(biāo)準(zhǔn)原溶液,從中分別取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mL溶液,甲醇定容至1mL,得質(zhì)量濃度分別為0.02、0.04、0.06、0.08、0.1mg/mL的DNJ標(biāo)準(zhǔn)溶液,過膜,備用。
1.3.1.3 樣品溶液制備
取破壁和未破壁的桑葉各5.000g,分別用80%的乙醇溶液超聲提取3次,30min/次,合并提取液,濃縮至干,用甲醇分別定容到10mL,得破壁和未破壁的桑葉樣品原液。
1.3.1.4 柱前衍生化法測定DNJ的含量
分別取DNJ系列質(zhì)量濃度標(biāo)準(zhǔn)溶液、破壁及未破壁樣品原液各10μL于1mL容量瓶中,各加10μL硼酸鹽緩沖液(pH8.5)及10mmol/L Fmoc-Cl乙腈溶液20μL,混勻后于20℃水浴反應(yīng)20min,再加入10μL 0.2mol/L的甘氨酸,使過量衍生化試劑反應(yīng),以水定容至1mL,混勻后過0.45μm的微孔濾膜,得質(zhì)量濃度為0.2、0.4、0.6、0.8、1.0μg/mL的DNJ的標(biāo)準(zhǔn)溶液和待測樣品溶液。按1.3.1.1節(jié)進(jìn)行DNJ峰面積值的測定,由線性方程求出樣品液中DNJ的質(zhì)量濃度。
1.3.1.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍和方法學(xué)考察
精密吸取衍生化的對照品溶液各20μL,進(jìn)樣,測定峰面積,以DNJ質(zhì)量濃度(X)為橫坐標(biāo),DNJ的峰面積(Y)為縱坐標(biāo),線性回歸,得到回歸方程:Y=3447430000X+ 120459.6,R2=0.9992。線性范圍為0.2~1.0μg/mL。取0.2μg/mL的衍生化對照品溶液,稀釋成一系列的溶液,進(jìn)行分析,確定DNJ檢出限為0.02μg/mL(RSN= 3)。
精密度實(shí)驗(yàn):取1.0μg/mL的DNJ對照品衍生溶液20μL,連續(xù)進(jìn)樣6次,測定峰面積。
穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn):精密稱取未破壁桑葉粉,按1.3.1.3、1.3.1.4節(jié)制成衍生化供試品溶液,于制備后0、1、2、4、6、8h進(jìn)行測定。
重復(fù)性實(shí)驗(yàn):精密稱取2.500g未破壁桑葉粉6份,按1.3.1.3、1.3.1.4節(jié)分別制成供試品溶液,測定樣品中DNJ含量。
加樣回收率實(shí)驗(yàn):精密稱取6份已知DNJ含量的未破壁桑葉粉各1.000g,分別加入0.1mg/mL的DNJ溶液2mL,按1.3.1.3和1.3.1.4節(jié)分別制成供試品溶液,測定其中DNJ含量。
1.3.2 HPLC法測定桑葉中蘆丁含量
1.3.2.1 色譜條件
色譜柱為Hypersil ODS2(4.6mm×250mm,5μm);流動相為甲醇(A)-水(B),梯度洗脫:0~10min為40%~50%A,10~15min時50%~55%A;檢測波長:358nm;柱溫:25℃;流速:1.0mL/min;進(jìn)樣量:20μL。
1.3.2.2 蘆丁對照品溶液制備
精確稱取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品5.0mg,以甲醇定容至50mL,搖勻,配制成0.1mg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液。從中分別取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mL,以甲醇定容至1mL,配成質(zhì)量濃度分別為0.02、0.04、0.06、0.08、0.1mg/mL的蘆丁對照品溶液,過膜,備用。
1.3.2.3 樣品溶液的制備
取1.3.1.3節(jié)制備的破壁與未破壁樣品原液各2mL,以甲醇定容至10mL的容量瓶中,供測定蘆丁含量用。
1.3.2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線、線性范圍和方法學(xué)考察
精密吸取蘆丁的對照品溶液各20μL,進(jìn)樣,測定峰面積,以蘆丁質(zhì)量濃度(X)為橫坐標(biāo),峰面積(Y)為縱坐標(biāo),線性回歸,得到回歸方程:Y=27184495X+ 20465.1,R2=0.9999。線性范圍為0.0~0.1mg/mL。取0.02mg/mL的對照品溶液,稀釋成系列溶液,進(jìn)行分析,得蘆丁檢出限為0.002mg/mL(RSN= 3)。
精密度實(shí)驗(yàn):取0.02mg/mL的蘆丁對照品溶液20μL,連續(xù)進(jìn)樣6次,測定峰面積。
穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn):精密稱取1.000g破壁桑葉粉6份,按1.3.1.3節(jié)制成供試品溶液分別于0、1、2、4、6、8h進(jìn)行測定。
重復(fù)性實(shí)驗(yàn):精密稱取1.000g未破壁桑葉粉6份,分別制成供試品溶液,測定樣品中蘆丁含量。
加樣回收率實(shí)驗(yàn):精密稱取6份已知蘆丁含量的未破壁桑葉粉各1.000g,分別加入1mg/mL的蘆丁溶液1mL制成供試品溶液,測定其中蘆丁含量。
1.3.2.5 樣品中蘆丁含量的測定
將1.3.1.3節(jié)制備的破壁及未破壁桑葉溶液20μL按照1.3.2.1節(jié)條件測定蘆丁峰面積,由線性方程求出樣品液中蘆丁的含量。
1.3.3 分光光度法測定桑葉中多糖含量
1.3.3.1 葡萄糖對照品溶液的制備
精密稱取105℃干燥至恒質(zhì)量的葡萄糖對照品25.0mg于25mL的容量瓶,加水溶解至刻度,得1mg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)貯備液。分別取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)貯備液0.2、0.4、0.8、1.6、3.2mL于10mL容量瓶中,加水稀釋至刻度,得質(zhì)量濃度分別為0.02、0.04、0.08、0.16、0.32mg/mL的葡萄糖系列對照品溶液。過膜,備用。
1.3.3.2 硫酸-蒽酮法測定桑葉中多糖含量[14]
精密吸取葡萄糖系列對照溶液及蒸餾水各1.0mL,分別置于10mL具塞試管中,冰水浴5min,加入0.2%蒽酮硫酸試液4mL搖勻,立即置于沸水浴加熱15min,取出,冷水冷卻至室溫,室溫放置10min左右,于620nm波長處測定吸收度。以葡萄糖質(zhì)量濃度(ρ)為橫坐標(biāo),吸光度(A)為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性方程:A=1.151ρ+0.3714,R2=0.9994。線性范圍為0.02~0.32mg/mL。
1.3.3.3 樣品溶液的制備
取破壁和未破壁的桑葉各5.000g,分別置于索氏提取裝置中,用石油醚(60~90℃)回流2h,再用95%乙醇回流2h,進(jìn)行脫脂處理。殘?jiān)鼡]干溶劑,加水50mL,40℃超聲提取3次,30min/次,合并提取液,用Sevag法(氯仿-正丁醇體積比4:1)去除蛋白,6000r/min離心20min,取上清液濃縮至5mL,加無水乙醇使乙醇含量達(dá)80%以上,靜置12h,抽濾,得沉淀物,用乙醇和丙酮各洗脫3次,于60℃干燥得白色無定形粉末。將其以水定容于100mL容量瓶中,供多糖含量測定。
1.3.3.4 樣品中多糖含量的測定
取1.3.1.3節(jié)制備的破壁及未破壁溶液各1mL,按照1.3.3.2節(jié)方法進(jìn)行樣品溶液的吸光度的測定,通過回歸方程計(jì)算出多糖的質(zhì)量濃度。
參照文獻(xiàn)[15-17]方法,對DNJ進(jìn)行柱前衍生化,有效的去除了雜質(zhì),并在HPLC測定條件上進(jìn)行了改善,采用乙腈-水梯度洗脫,DNJ衍生化產(chǎn)物的保留時間在18.7min左右,其他衍生化試劑吸收峰的保留時間大于29min,所得峰形對稱,分離度高,干擾小,且避免了酸對色譜柱的損傷。色譜圖見圖1。
圖 1 DNJ含量測定的HPLC圖Fig.1 HPLC chromatogram of DNJ
DNJ精密度實(shí)驗(yàn),其保留時間的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為0.37%(n = 6),峰面積的RSD為1.32%(n = 6),表明儀器精密度良好;穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn),DNJ峰面積的RSD為0.52%(n = 6),說明樣品液在8h內(nèi)基本穩(wěn)定;重復(fù)性實(shí)驗(yàn)的RSD為1.98% (n = 6),說明方法可行;加樣回收率實(shí)驗(yàn),加樣回收率為98.76%,RSD為2.11%(n = 6)。經(jīng)方法學(xué)考察,結(jié)果穩(wěn)定,重現(xiàn)性好。
蘆丁為酸性成分,采用HPLC法測定其含量時,流動相中常加入酸,以防止拖尾現(xiàn)象的產(chǎn)生[18-20]。本實(shí)驗(yàn)所建立的測定條件中,避免了酸的使用,且由圖2可知,經(jīng)方法學(xué)考察及樣品中蘆丁含量檢測的應(yīng)用,色譜峰分離度高,峰面積值穩(wěn)定。
精密度實(shí)驗(yàn),保留時間的RSD值為0.87%,峰面積的RSD 為1.59%,表明儀器精密度良好;穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn),蘆丁峰面積RSD值為1.12%(n = 6),說明樣品液在8h內(nèi)基本穩(wěn)定;重復(fù)性實(shí)驗(yàn),RSD為1.41%(n = 6),說明方法可行;加樣回收率實(shí)驗(yàn),加樣回收率為99.07%,RSD為1.45%(n = 6)。
由表1可知,經(jīng)真空氣流植物細(xì)胞破壁技術(shù)(VAPB)處理的桑葉,其DNJ、蘆丁及多糖含量測定值均明顯高于未進(jìn)行破壁處理樣品。破壁處理對多糖的測定值影響最小,為未破壁處理樣品值的1.48倍;對DNJ及黃酮的影響則分別為1.74倍和1.58倍。
表 1 破壁與未破壁桑葉中DNJ、蘆丁及多糖的測定含量(n=3)Table 1 Contents of DNJ, rutin and polysaccharose in mulberry leaf samples (n=3)mg/g
通過比較VAPB處理前后的桑葉樣品中DNJ、蘆丁及多糖含量的測定值可知,VAPB在桑葉有效成分提取過程中發(fā)揮了極大的作用,破壁較未破壁桑葉樣品中的生物堿、黃酮及多糖含量的測定值分別高出74%、58%和48%,使有效成分溶出量顯著提高,可使其藥理活性得到更充分的發(fā)揮。將VAPB技術(shù)應(yīng)用于其他植物中成分的提取具有極大的推廣潛力。
[1] 國家藥典委員會. 中國藥典(2010年版: 一部)[M]. 北京: 中國醫(yī)藥科技出版社, 2010: 279.
[2] 陳建國, 步文磊, 來偉旗, 等. 桑葉多糖降血糖作用及其機(jī)制研究[J]. 中草藥, 2011, 42(3): 515-520.
[3] 陳玲玲, 劉煒, 陳建國, 等. 桑葉黃酮對糖尿病小鼠調(diào)節(jié)血糖的作用機(jī)制研究[J]. 中國臨床藥理學(xué)雜志, 2010, 26(11): 835-838.
[4] 玄光善, 潘士佳, 南姬. 桑葉有效成分降糖作用研究[J]. 食品科學(xué), 2011, 32(7): 323-326.
[5] 楊雨, 歐陽臻, 常鈺, 等. 桑葉不同組分降血糖作用研究[J]. 食品科學(xué), 2007, 28(8): 454-456.
[6] NAOWABOOT J, PANNANGPETCH P, KUKONGVIRIYAPAN V, et al. Mulberry leaf extract restores arterial pressure in streptozotocininduced chronic diabetic rats[J]. Nutr Res, 2009, 29(8): 602-608.
[7] ANDALLUA B, VARADACHARYULU N C H. Antioxidant role of mulberry (Morus indica L. cv. Anantha) leaves in streptozotocindiabetic rats[J]. Clin Chim Acta, 2003, 338(1/2): 3-10.
[8] ASANO N, OSEKI K, TOMIOKA E, et al. N-containing sugars from morus alba and their glycosidaes inhibitory activities[J]. Carbohydr Res, 1994, 259(2): 243-255.
[9] NAKANISHI H, ONOSE S, KITAHARA E, et al. Effect of environmental conditions on the α-glucosidase inhibitory activity of mulberry leaves[J]. Biosci Biotechnol Biochem, 2011, 75(12): 2293-2296.
[10] KOJIMA Y, KIMURA T, NAKAGAWA K, et al. Effects of mulberry leaf extract rich in 1-deoxynojirimycin on blood lipid profiles in humans[J]. J Clin Biochem Nutr, 2010, 47(2): 155-161.
[11] 馬慶一, 時國慶, 陳春濤, 等. 桑葉中α-葡萄糖苷酶活性調(diào)節(jié)成分的研究[J]. 食品科學(xué), 2006, 27(2): 108-111.
[12] 崔維利, 陳濤. 真空氣流植物細(xì)胞破壁技術(shù)在中藥領(lǐng)域的應(yīng)用[J]. 中國現(xiàn)代應(yīng)用藥學(xué)雜志, 2007, 24(1): 31-33.
[13] 王艷, 李晶, 張鐵軍, 等. 真空氣流植物細(xì)胞破壁技術(shù)在靈芝藥材提取前處理中的應(yīng)用[J]. 天津中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報, 2008, 27(2): 84-86.
[14] 歐陽臻, 李永輝, 宿樹蘭, 等. 桑葉多糖的含量測定[J]. 食品科學(xué), 2003, 24(11): 118-120.
[15] 劉韋鋆, 趙駿, 曾森, 等. 桑葉總生物堿中1-脫氧野尻霉素的測定及方法學(xué)考察[J]. 天津中醫(yī)藥, 2010, 27(2): 166-168.
[16] 張作法, 金潔, 時連根. 反相高效液相色譜法測定桑枝中1-脫氧野尻霉素的含量[J]. 中國藥學(xué)雜志, 2007, 42(7): 535-538.
[17] 魏兆軍, 蔣磊, 周樂春, 等. 反相高效液相色譜法檢測不同品種和葉位桑葉中1-脫氧野尻霉素[J]. 食品科學(xué), 2009, 30(16): 258-261.
[18] 劉麗芳, 王宇新, 黃麗, 等. 桑葉中黃酮類成分的含量測定[J]. 藥物分析雜志, 2006, 26(5): 640-642.
[19] 吳好好, 蔣惠娣, 高處寒, 等. 桑葉中綠原酸和主要黃酮苷含量的RP-HPLC測定[J]. 藥物分析雜志, 2007, 27(3): 374-377.
[20] 賈冬冬, 李淑芬, 楊鴻玲. RP-HPLC法測定桑葉中的蘆丁和異槲皮苷含量[J]. 食品科學(xué), 2008, 29(8): 499-501.