郭睿等
摘要:檸檬酸是能量代謝的產(chǎn)物,只有在阻止正常代謝進(jìn)行的情況下檸檬酸才可能大量積累。20世紀(jì)30年代人們已經(jīng)初步掌握了黑曲霉(Aspergillus niger)檸檬酸的發(fā)酵條件并進(jìn)行規(guī)?;a(chǎn),然而對(duì)檸檬酸積累機(jī)理的研究還不是很透徹,黑曲霉檸檬酸積累引起了眾多研究者的關(guān)注。另外,一些新的生物技術(shù)如基因組學(xué)技術(shù)的應(yīng)用也為黑曲霉檸檬酸代謝的深層研究提供了可能。綜述了黑曲霉檸檬酸代謝過(guò)程中己糖的輸送、糖酵解和能荷調(diào)節(jié)機(jī)制的研究進(jìn)展。
關(guān)鍵詞:黑曲霉(Aspergillus niger);檸檬酸積累;代謝機(jī)制
中圖分類號(hào):TQ921+.1;TS261.1+2 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2013)07-1489-04
檸檬酸(2-羥基-丙烷-1,2,3-三羧酸)最初被認(rèn)為是柑橘屬植物的一種組分,作為三羧酸循環(huán)(TCA)的中間產(chǎn)物被發(fā)現(xiàn)已經(jīng)近70年。檸檬酸結(jié)合低毒、可口性和美味于一體,已成為一種廣泛的食品添加劑。并且檸檬酸能夠螯合鐵、銅等重金屬離子,因此在金屬離子催化的氧化反應(yīng)過(guò)程中,對(duì)油、脂肪和抗壞血酸的穩(wěn)定性具有重要的作用,已被廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥和化妝品行業(yè)中[1]。
目前,檸檬酸全世界消耗量已達(dá)120萬(wàn)t,年產(chǎn)量達(dá)160萬(wàn)t,市場(chǎng)貿(mào)易量為90萬(wàn)t以上,且每年以7%的速度遞增。雖然檸檬酸有一小部分在酵母發(fā)酵中產(chǎn)生,但大多數(shù)發(fā)生在真菌黑曲霉(Aspergillus niger)中。數(shù)十年來(lái),黑曲霉積累檸檬酸的生化代謝機(jī)制引起了基礎(chǔ)科學(xué)和應(yīng)用科學(xué)研究者的廣泛關(guān)注,并開(kāi)展了大量研究。本文結(jié)合近些年來(lái)黑曲霉合成檸檬酸代謝機(jī)制的研究進(jìn)展,對(duì)其進(jìn)行總結(jié)概括,以求更深入理解其內(nèi)在機(jī)理。
1 黑曲霉合成檸檬酸的途徑
自1940年TCA學(xué)說(shuō)建立以來(lái),檸檬酸的發(fā)酵機(jī)理逐漸被人們所認(rèn)識(shí)。Cleland等[2]的研究表明檸檬酸的合成過(guò)程包括葡萄糖酵解的分解代謝。由于檸檬酸合成酶位于線粒體中,合成的草酰乙酸并不立即參與檸檬酸合成酶的反應(yīng),而是首先被細(xì)胞質(zhì)中的蘋(píng)果酸脫氫酶催化形成蘋(píng)果酸,進(jìn)而通過(guò)蘋(píng)果酸-檸檬酸反向轉(zhuǎn)運(yùn)進(jìn)線粒體(圖1)。由圖1可知,檸檬酸是整個(gè)TCA代謝過(guò)程中的中間產(chǎn)物。在檸檬酸積累過(guò)程中,只有當(dāng)黑曲霉順烏頭酸酶和異檸檬酸脫氫酶活性很低,而檸檬酸合成酶活性很高時(shí)才有利于檸檬酸的大量積累。
2 黑曲霉合成檸檬酸的代謝調(diào)控
2.1 葡萄糖的吸收
對(duì)于檸檬酸發(fā)酵,由于黑曲霉在以葡萄糖和果糖為碳源時(shí)能夠很好地生長(zhǎng),所以通常采用己糖為碳源。對(duì)于工業(yè)用蔗糖,一般采用在低pH條件下高溫滅菌或者利用細(xì)胞外的轉(zhuǎn)化酶水解為單糖。葡萄糖吸收主要依靠?jī)煞N親和性不同的運(yùn)載體的被動(dòng)擴(kuò)散作用。Vankuyk等[3]發(fā)現(xiàn)了一個(gè)由mstA編碼的高親和性的運(yùn)載體,碳源濃度較低時(shí)該高親和性運(yùn)載體就能夠生成,它能夠催化單糖/H+交換,其Km值為25±10 μmol/L,試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)pH降低或者檸檬酸濃度升高會(huì)影響該運(yùn)載體的活性。
葡萄糖達(dá)到15%(W/V)時(shí),黑曲霉內(nèi)除高親和性運(yùn)載體外,還生成一種低親和性的運(yùn)載體,該低親和性運(yùn)載體受pH和檸檬酸的影響比高親和性運(yùn)載體要小。低親和性運(yùn)載體的Km值為360 μmol/L,遠(yuǎn)比高親和性運(yùn)載體大。借助同源構(gòu)巢曲霉的基因分析發(fā)現(xiàn),低親和力運(yùn)載體可能有mstE基因編碼,mstE基因的表達(dá)隨葡萄糖濃度的升高而加強(qiáng)。
需要說(shuō)明的是,這兩種運(yùn)載體提供的是促進(jìn)擴(kuò)散而非主動(dòng)運(yùn)輸。促進(jìn)擴(kuò)散和主動(dòng)運(yùn)輸均與底物葡萄糖濃度呈非線性關(guān)系,但是簡(jiǎn)單擴(kuò)散卻是線性關(guān)系。Wayman等[4]的試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)葡萄糖的吸收率與葡萄糖濃度為簡(jiǎn)單的線性關(guān)系而不是非線性模式。即使底物中檸檬酸的濃度很高,且這種高濃度的檸檬酸對(duì)運(yùn)載體有抑制作用,但葡萄糖吸收的速率卻不受限制[5]。
2.2 糖酵解的調(diào)節(jié)
發(fā)酵初期磷酸戊糖途徑占主要部分,黑曲霉生長(zhǎng)期間幾乎全部TCA酶的含量都很高,此時(shí)大量的葡萄糖被用于黑曲霉菌株的生長(zhǎng)。24 h后開(kāi)始有檸檬酸生成,如圖1所示,在檸檬酸發(fā)酵初期,檸檬酸通過(guò)TCA循環(huán)轉(zhuǎn)換為α-酮戊二酸。NAD-和NADP-專一性異檸檬酸脫氫酶此時(shí)具有很高的活性??梢钥闯?,檸檬酸積累的最初階段并沒(méi)有阻斷TCA循環(huán)。然而此時(shí)檸檬酸產(chǎn)量比理論值要高,這可能是氨基糖的瞬時(shí)積累及釋放所致[6]。在檸檬酸積累的誘導(dǎo)期間,延胡索酸和異檸檬酸減少,丙酮酸、草酰乙酸和檸檬酸增加。這種中間產(chǎn)物水平的短暫變化主要是因?yàn)棣?酮戊二酸脫氫酶的減少,進(jìn)而導(dǎo)致琥珀酸、延胡索酸的水平降低。同時(shí)由于酶解作用強(qiáng)烈使丙酮酸和草酰乙酸增加,這為檸檬酸的積累提供了條件[7]。
糖酵解的調(diào)節(jié)可以在不同的層面上進(jìn)行:轉(zhuǎn)錄水平調(diào)節(jié);利用特定效應(yīng)因子以及翻譯后修飾調(diào)節(jié)別構(gòu)酶活性[8,9]。對(duì)糖酵解調(diào)節(jié)酶基因的研究表明己糖激酶、葡糖激酶、丙酮酸激酶的合成與菌體外部環(huán)境有關(guān),將黑曲霉置于葡萄糖和果糖碳源時(shí)能夠顯著激發(fā)轉(zhuǎn)錄過(guò)程并進(jìn)而刺激這些激酶的生成。
2.2.1 己糖激酶和葡萄糖激酶 己糖的磷酸化由己糖激酶和葡萄糖激酶共同作用。但是兩種酶的基因彼此孤立,動(dòng)力學(xué)決定性因素也不同。在激活的碳代謝條件下,兩種酶都可以組成型表達(dá),只不過(guò)己糖激酶擁有更多的特異性底物。果糖可以被己糖激酶磷酸化,但是反應(yīng)很慢,在細(xì)胞中可以忽略不計(jì)。葡萄糖激酶能夠抵抗不同效應(yīng)因子的抑制,但pH稍微下降即容易被破壞。另外糖濃度低時(shí),無(wú)論果糖還是葡萄糖均能被己糖激酶磷酸化并且沒(méi)有明顯的先后次序。己糖激酶還可以被6-磷酸海藻糖(一種海藻糖生物合成的中間產(chǎn)物)強(qiáng)烈抑制。但6-磷酸海藻糖只存于發(fā)酵的48 h以內(nèi),在被cAMP依賴的蛋白激酶(PKA)磷酸化后即被中性海藻糖酶水解。6-磷酸海藻糖的水解可以使己糖激酶不再受到抑制,大量的果糖和葡萄糖被磷酸化,并可能最終促使磷酸戊糖途徑向糖酵解途徑轉(zhuǎn)變[10]。
2.2.2 磷酸果糖激酶 磷酸果糖激酶(PFK)是糖酵解途徑中的關(guān)鍵酶,它催化糖酵解的第一步不可逆反應(yīng),利用Mg-ATP磷酸化果糖-6-磷酸形成果糖-1,6二磷酸并釋放副產(chǎn)物Mg-ADP。由于PFK既能保證高的糖酵解通量又能提高細(xì)胞內(nèi)檸檬酸濃度,因而受到眾多研究者的關(guān)注。
磷酸果糖激酶被正常生理濃度的檸檬酸(1~5 mmol/L)所抑制。但是在發(fā)酵條件下,這種抑制作用被許多正向效應(yīng)因子(NH4+,AMP,F(xiàn)ru-2,6-P2)所中和。碳源的濃度也可能對(duì)此有作用,這是因?yàn)樘幱诟邼舛日崽腔蛘咂咸烟侵械暮谇?,其?xì)胞內(nèi)Fru-2,6-P2(磷酸果糖激酶活化因子)濃度同樣會(huì)升高。用1-13C葡萄糖的NMR研究證實(shí)了果糖-6-磷酸為低糖條件下的主控步驟,但在高糖濃度下主控步驟下移到3-磷酸甘油醛脫氫酶[11]。
NH4+能有效解除檸檬酸和ATP對(duì)PFK的抑制。細(xì)胞內(nèi)NH4+的濃度處于生理水平時(shí),PFK對(duì)檸檬酸不敏感。當(dāng)NH4+被消耗時(shí)溶液的pH會(huì)有所下降,這對(duì)檸檬酸發(fā)酵是有利的。
最近Legi?觢a的研究發(fā)現(xiàn)PFK1翻譯后修飾會(huì)產(chǎn)生一個(gè)短的活性片段。首先通過(guò)特定蛋白酶將分子量為85 u的原蛋白水解得到無(wú)活性的49 u的片段;第二步由cAMP-依賴蛋白激酶(PKA)使蛋白分子磷酸化,從而得到短的有活性的PFK1片段[8,9]。去除具有檸檬酸結(jié)合位點(diǎn)的酶的C末端并保留活性N-末端部分可以使蛋白既能擁有酶的活性的同時(shí)又不受檸檬酸的抑制。與原酶相比,該活性片段被果糖-2,6-二磷酸、AMP和NH4+激活后活性更高,并且對(duì)ATP抑制作用響應(yīng)不明顯。同時(shí)為了避免復(fù)雜的翻譯后修飾自發(fā)進(jìn)行,必須對(duì)活性短的PFK1片段的編碼基因進(jìn)行修飾。Capuder等[12]篩選出能夠改變PFK1活性的短片段然后用谷氨酸代替相應(yīng)的蘇氨酸終止磷酸化。修飾后的基因能夠直接表達(dá)而不受檸檬酸抑制。
2.2.3 丙酮酸激酶 雖然PFK是糖酵解中最復(fù)雜的調(diào)控酶,但通常催化糖酵解的第三步不可逆反應(yīng)的丙酮酸激酶控制細(xì)胞內(nèi)糖酵解的速率。PKIA基因控制編碼丙酮酸激酶,這種酶由分子量為58 u的單體構(gòu)成。酶動(dòng)力學(xué)研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)果糖1,6-二磷酸能夠阻止純化階段丙酮酸激酶的失活。有趣的是,對(duì)丙酮酸激酶有明顯抑制的ATP對(duì)6-磷酸-1-激酶卻沒(méi)有任何抑制,相反活性還略有提高。丙酮酸激酶一直被認(rèn)為是調(diào)控檸檬酸合成階段的重要酶,但是Meixner-Monori等[13]發(fā)現(xiàn)提純后的丙酮酸激酶受到代謝程度的影響很小。并且Ruijter等[14]發(fā)現(xiàn)無(wú)論是單獨(dú)還是同時(shí)擴(kuò)增PFK1和PKIA的基因,檸檬酸積累的產(chǎn)率都沒(méi)有增加。這可能驗(yàn)證了Torres等[15]的計(jì)算——必須同時(shí)至少增加7個(gè)糖酵解酶的活性才能獲得較為顯著的檸檬酸積累。
2.3 能荷調(diào)節(jié)
葡萄糖進(jìn)行糖酵解途徑會(huì)產(chǎn)生一定量的NADH,NADH必須及時(shí)經(jīng)過(guò)電子傳遞轉(zhuǎn)化為NAD+才能保證黑曲霉菌體內(nèi)氧化還原電位的平衡。NADH泛醌氧化還原酶全部失活時(shí)才能使檸檬酸產(chǎn)率提高。這是由于NADH失去的電子經(jīng)過(guò)呼吸鏈會(huì)產(chǎn)生ATP,過(guò)量的ATP會(huì)抑制磷酸果糖激酶的活性,不利于糖酵解的順利進(jìn)行。研究發(fā)現(xiàn),黑曲霉中除了有一條正常的呼吸鏈外還有一條受水楊酸氧肟酸 (SHAM)抑制的側(cè)呼吸鏈,黑曲霉發(fā)酵后期檸檬酸的合成主要是通過(guò)側(cè)呼吸鏈完成的,缺氧會(huì)造成側(cè)呼吸鏈不可逆而失活[16]。
在檸檬酸生產(chǎn)階段,大量的NADH通過(guò)側(cè)呼吸鏈被氧化(圖2)。高活性的側(cè)鏈氧化酶將多余的NADH氧化,這樣不僅不會(huì)產(chǎn)生多余的ATP,還能夠保證細(xì)胞內(nèi)的氧化還原電位的平衡。側(cè)鏈氧化酶是在細(xì)胞質(zhì)合成后轉(zhuǎn)移到線粒體中的,Hattori等[17]研究發(fā)現(xiàn)檸檬酸生成時(shí)側(cè)鏈氧化酶僅由側(cè)鏈氧化酶基因(aoxl)的轉(zhuǎn)錄水平調(diào)節(jié)。
ODonnell等[18]研究了氧壓增強(qiáng)時(shí)側(cè)NADH脫氫酶的作用,發(fā)現(xiàn)增加溶氧含量能夠使活性氧(ROS)濃度和抗氧化酶活性快速提高,也使細(xì)胞內(nèi)蛋白濃度下降,從而導(dǎo)致ATP下降。過(guò)量的氧環(huán)境加速了細(xì)胞的衰老和死亡。分析認(rèn)為在過(guò)量溶氧條件下為了維持低濃度的ROS,側(cè)NADH脫氫酶的活性顯著增加,但是這也降低了機(jī)體合成蛋白的能力,從而無(wú)法合成足夠的ATP。
3 小結(jié)與展望
荷蘭工業(yè)化學(xué)公司DSM已經(jīng)完成了黑曲霉基因組測(cè)序的工程[19]。黑曲霉基因組約3 390萬(wàn)個(gè)堿基對(duì)編碼了14 000多個(gè)基因。其中大約6 500個(gè)基因的功能已被確定。未來(lái),黑曲霉基因組可以用于設(shè)計(jì)DNA芯片,并可用來(lái)鑒定改進(jìn)菌株中表達(dá)上調(diào)和下調(diào)的基因;有助于發(fā)酵成功。另外還能夠檢測(cè)有害參數(shù)例如Mn2+或者糖濃度以及糖類型對(duì)發(fā)酵的影響。
目前國(guó)內(nèi)黑曲霉積累檸檬酸產(chǎn)量每年都有所提高,但檸檬酸生產(chǎn)時(shí)的糧耗卻居高不下,檸檬酸企業(yè)在發(fā)酵技術(shù)改造研究上的投入也相對(duì)不足,借助基因組學(xué)一些新技術(shù)深入研究黑曲霉發(fā)酵檸檬酸代謝調(diào)節(jié),可望為培育菌株提供更好的篩選策略。
參考文獻(xiàn):
[1] 任曉莉,趙 林,趙潤(rùn)柱.檸檬酸發(fā)酵生產(chǎn)菌種黑曲霉的選育[J].食品工業(yè)科技,2010,31(8):151-153.
[2] CLELAND W, JOHNSON M. Tracer experiments on themechanism of citric acid formation by Aspergillus niger[J]. J Biol Chem,1954,208(2):679-692.
[3] VANKUYK P A,DIDERICH J A,MACCABE A P,et al. Aspergillus niger mstA encodes a high-affinity sugar/H+ symporter which is regulated in response to extracellular pH [J]. Biochem J,2004,379(2):375-383.
[4] WAYMAN F M,MATTEY M. Simple diffusion is the primary mechanism for glucose uptake during the production phase of the Aspergillus niger citric acid process [J]. Biotechnol Bioeng,2000,67(4):451-456.
[5] TORRES N V,VOIT E O,?魣GONZ?魷LEZ-ALC?魷N C. Optimization of nonlinear biotechnological process with linear programming: application to citric acid production by Aspergillus niger[J]. Biotechnol Bioeng,1996,49(3):247-258.
[6] PAPAGIANNI M, WAYMAN F, MATTEY M. Fate and role of ammonium ions during fermentation of citric acid by Aspergillus niger[J]. Appl Environ Microbiol,2005,71(11):7178-7186.
[7] LEVENTE K, CHRISTIAN P K. Aspergillus niger citric acid accumulation: Do we understand this well working black box[J]. Appl Microbiol Biotechnol,2003,61(3):189-196.
[8] MESOJEDNIK S, LEGISA M. Post-translational modification of 6-phosphofructo-1-kinase in Aspergillus niger[J]. Appl Environ Microbiol,2005,71(3):1425-1432.
[9] MLAKAR T, LEGISA M. Citrate inhibition resistant from of 6-phosphofructo-1-kinase from Aspergillus niger[J]. Appl Environ Microbiol,2006,72(7):4515-4521.
[10] LEGISA M, MATTEY M. Changes in primary metabolism leading to citric acid overflow in Aspergillus niger[J]. Biotechnol Lett,2007,29(2):181-190.
[11] 孫 榮,王 燕,楊平平.檸檬酸發(fā)酵現(xiàn)狀及展望[J]. 中國(guó)調(diào)味品,2011,36(1):90-96.
[12] CAPUDER M,SOLAR T,BENCINA M,et al. Highly active, citrate inhibition resistant form of Aspergillus niger 6-phosphofructo-1-kinase encoded by a modified pfkA gene[J]. J Biotechnol,2009,144(1):51-57.
[13] MEIXNER-MONORI B,KUBICEK C P,R?魻HR M. Pyruvate kinase from Aspergillus niger:A regulatory enzyme in glycolysis[J]. Can J Microbiol,1984,30(1):16-22.
[14] RUIJTER G J, PANNEMAN H, HETTY C,et al. Characterisation of the Aspergillus nidulans frA1 mutant: Hexose phosphorylation and apparent lack of involvement of hexokinase in glucose repression[J]. FEMS Microbiol Lett,1996,139(2-3):223-228.
[15] TORRES N V,RIOL-CIMAS J M,WOLSCHEK M,et al. Glucose transport by Aspergillus niger: The low affinity carrier is only formed during growth on high glucose concentrations [J]. Appl Microbiol Biotechnol,1996,44(6):790-794.
[16] KUBICEK C P,ZEHENTGRUBER O, HOUSAM E K,et al.Regulation of citric acid production by oxygen: Effeetof dissolved oxygen tension on adenylate levels and respiration in Aspergillus niger[J]. Microbiol Bioteehnol,1988,9(2):101-116.
[17] HATTORI T,KINO K,KIRIMURA K. Regulation of alternative oxidase at the transcription stage in Aspergillus niger under the conditions of citric acid production[J]. Curr Microbiol,2009,58(4):321-325.
[18] ODONNELL A,HARVEY L M,MCNEIL B. The roles of the alternative NADH dehydrogenases during oxidative stress in cultures of the filamentous fungus Aspergillus niger[J]. Fungal Biology,2011,115(4-5):359-369.
[19] HERMAN J P, JOHANNES H W, DAVID B A,et al.Genome sequencing and analysis of the versatile cell factory Aspergillus niger CBS 513.88[J]. Nature Biotechnol,2007,25(2):221-231.