苗志加,薛桂松,翁冬晨,曹貴華,彭永臻
(北京工業(yè)大學(xué) 北京市水質(zhì)科學(xué)與水環(huán)境恢復(fù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100124)
強(qiáng)化生物除磷技術(shù)(Enhanced Biological Phosphorus Removal,簡稱EBPR)已成為生物除磷的重要途徑,日益受到學(xué)者們的關(guān)注。EBPR是以富集的聚磷菌(PAOs)在厭氧條件下吸收VFA用于細(xì)胞內(nèi)合成PHA并且釋放磷,好氧條件下分解PHA提供能量同時(shí)過量吸磷,通過排泥達(dá)到除磷的目的[1]。EBPR的設(shè)計(jì)大多是以ASM2號(hào)模型為基礎(chǔ),PAOs衰減速率作為模型中最重要的參數(shù)之一,獲得其準(zhǔn)確的數(shù)值對(duì)建立完善、實(shí)用的數(shù)學(xué)模型具有重要意義,同時(shí)對(duì)EBPR生物處理過程的設(shè)計(jì)和運(yùn)行管理、控制策略也具有借鑒意義[2-4]。水溫的變化對(duì)于微生物衰減速率有重要的影響[5],在實(shí)際污水處理廠運(yùn)行過程中主要面臨的問題也是季節(jié)溫差變化較大,尤其是中國北方大部分地區(qū)水溫波動(dòng)較大。目前對(duì)于EBPR系統(tǒng)衰減特征的研究主要是環(huán)境溫度恒定在20℃左右,Lu等[6]采用PAOs純度達(dá)到85%的EBPR系統(tǒng)為研究對(duì)象,考察了22℃條件下PAOs在厭氧、缺氧、好氧的衰減過程,Hao等[7]考察了同樣是恒定環(huán)境溫度在22±0.5℃的條件下PAOs和聚糖菌(GAOs)好氧條件下的衰減特征,而目前對(duì)于低溫下PAOs的衰減特征的研究未見報(bào)道。所以本文采用已運(yùn)行340d的EBPR系統(tǒng)內(nèi)種泥,考察不同溫度對(duì)PAOs在厭氧和好氧條件下的衰減特性,并結(jié)合現(xiàn)代分子生物學(xué)的手段鑒定分析細(xì)胞死亡引起的數(shù)量衰減所占比例[8]。
衰減速率試驗(yàn)在3L抽濾瓶中進(jìn)行,取已富集PAOs濃度達(dá)到90%以上的EBPR系統(tǒng)內(nèi)好氧結(jié)束時(shí)刻的種泥,持續(xù)曝氣5h后平均分裝在4個(gè)小試反應(yīng)器內(nèi),加入不含碳源的配水定容為2L,采用磁力攪拌器進(jìn)行攪拌,其轉(zhuǎn)速為100r·min-1。1#,2#反應(yīng)器放置在10℃恒溫培養(yǎng)箱,3#、4#放置在20℃恒溫培養(yǎng)箱。1#、3#為厭氧條件,試驗(yàn)過程中曝氮?dú)庖员WC厭氧環(huán)境。2#、4#為好氧條件,控制空氣流量為0.1m3/h保證溶解氧在2.0以上。
4個(gè)反應(yīng)器分別在第0、0.5、1、3、5、7、9d取250mL泥水混合物,6 000轉(zhuǎn)離心5min,用配水清洗2遍離心后放入500mL錐形瓶中,加入0.127 5g乙酸鈉(200mgCOD),配水補(bǔ)足500mL,厭氧攪拌1h,測(cè)定期間的磷釋放速率。在運(yùn)行的9d內(nèi)每天取泥樣,測(cè)污泥濃度、PHA、糖原的變化。
配水配方如下[9]:NH4Cl 1.02g·L-1,MgSO4·7H2O1.20g·L-1,CaCl2·2H2O 0.19g·L-1,ATU(硝化抑制劑)7.94mg·L-1,微量元素溶液4ml·L-1,其中微量金屬元素成分為:FeCl3·6H2O 1.5g·L-1,H3BO30.15g·L-1,CuSO4·5H2O 0.03g·L-1,KI 0.18g·L-1,MnCl2·4H2O0.12g·L-1,Na2MoO4·2H2O 0.06g·L-1,ZnSO4·7H2O 0.12g·L-1,CoCl2·6H2O 0.15g·L-1,乙二胺四乙酸(EDTA)10g·L-1。4個(gè)反應(yīng)器內(nèi)加入Tris-buffer使系統(tǒng)維持pH值穩(wěn)定在7.5左右。
試驗(yàn)種泥采用已乙酸/丙酸交替運(yùn)行340d的EBPR系統(tǒng)內(nèi)污泥,通過熒光原位雜交(FISH)結(jié)果分析,其PAOs的純度高達(dá)90%±2,污泥齡(SRT):10d。
1.4.1 常規(guī)檢測(cè)方法 實(shí)驗(yàn)所用常規(guī)檢測(cè)方法見水和廢水監(jiān)測(cè)分析方法(第4版)[10]。PHA及其組分采用氣相色譜法[11];VFA采用氣相色譜法。
1.4.2 LIVE/DEAD活死細(xì)胞鑒定 采用LIVE/DEADRBacLightTM(moleculer probes,L-7012)試劑盒測(cè)定第0、0.5、1、3、5、7、9d的泥樣中活死細(xì)胞的變化情況。該試劑包括綠熒光核酸染料SYTOR9和紅色熒光染料PI(propidium iodide)2中熒光染料,與待測(cè)樣品孕育一定時(shí)間后,具有完整細(xì)胞壁的活細(xì)胞顯綠色,細(xì)胞壁已經(jīng)破損的的死細(xì)胞顯紅色。
染色步驟對(duì)試劑盒的方法進(jìn)行了優(yōu)化,每次取待測(cè)泥樣15mL,去離子水清洗1遍后離心后倒去上清液,采用0.85%的NaCl浸泡1h,期間隔10min上下顛倒一次。取1mL經(jīng)預(yù)處理的泥樣與2mL離心管內(nèi),分別加入0.5μL的SYTOR9和0.5μL的PI染料,混合均勻后在暗處放置15min,期間上下混勻2~3次。取10μL已染色的泥樣制作玻片,在熒光顯微鏡下觀測(cè)拍照30組照片。同一視野內(nèi)照紅綠兩組熒光照片,通過AxioVision軟件對(duì)照片做灰度分析并結(jié)合IPP軟件的計(jì)數(shù)分析,得出綠色和紅色熒光所占的比例,即活死細(xì)胞所占的比例。
對(duì)0、0.5、1、3、5、7、9d的磷釋放速率的對(duì)數(shù)值做線性回歸分析,計(jì)算公式如下:R0為未衰減初始時(shí)刻磷釋放速率,Rt為衰減后某一時(shí)刻磷釋放速率,td為衰減時(shí)間[12]。細(xì)胞活性衰減通過對(duì)0、0.5、1、3、5、7、9d死細(xì)胞比例進(jìn)行回歸線性計(jì)算,得到其衰減數(shù)值[6]。
圖1為4個(gè)反應(yīng)器在不同溫度下厭氧衰減和好氧衰減過程中磷釋放速率的變化??梢钥闯鲈谒p開始后的1d內(nèi)4個(gè)系統(tǒng)其活性沒有下降反而都略有上升,在其后的8d里活性平緩下降,此實(shí)驗(yàn)現(xiàn)象未見報(bào)道。分析可能的原因是本研究所用種泥中含有少量顆?;勰?,在衰減初始的第1d內(nèi)這部分顆?;勰嘧匀埽粌H提供了少量碳源基質(zhì)也使顆粒內(nèi)PAOs溶出,使得系統(tǒng)中PAOs的相對(duì)活性增加;也有可能是種泥細(xì)胞內(nèi)存儲(chǔ)的能源底物還沒有完全消耗掉,第1d內(nèi)并沒有造成實(shí)際意義上的衰減。
圖1 不同溫度條件下PAOs的衰減速率變化
設(shè)定第1d為初始R0,對(duì)1~9d內(nèi)4個(gè)系統(tǒng)釋磷速率的對(duì)數(shù)值做線性回歸,結(jié)果如圖2所示,得到期間10℃厭氧、10℃好氧、20℃厭氧、20℃好氧對(duì)應(yīng)PAOs的平均衰減速率分別為:0.053、0.050、0.072、0.145/d。HAO等[6]在22℃±2的好氧條件下,測(cè)得7d內(nèi)PAOs的平均衰減速率為0.113/d,與本試驗(yàn)結(jié)果比較,這個(gè)數(shù)值低于本試驗(yàn)中20℃好氧所得衰減速率,這可能是由于他們所用種泥的SRT為12d,略高于本實(shí)驗(yàn)中的10d,長SRT條件下運(yùn)行的系統(tǒng)可能會(huì)培養(yǎng)出更耐饑餓的菌種[13]。由圖1可以看出從第5d開始20℃條件下的2個(gè)系統(tǒng)衰減速率開始迅速下降,通過式(1)計(jì)算,5~9d內(nèi)20℃厭氧、20℃好氧對(duì)應(yīng)PAOs的平均衰減速率分別為:0.081、0.199/d,見表1。而在此期間10℃條件下衰減速率并無明顯變化且好氧與厭氧衰減速率具有相似的數(shù)值。由此可以看出不同溫度對(duì)PAOs在厭氧和好氧的衰減代謝有重要影響,溫度越高衰減速率越快。低溫條件(10℃)下好氧衰減速率與厭氧衰減速率差別不大,常溫(20℃)條件下好氧衰減速率大于厭氧衰減速率。
圖2 不同條件衰減過程中衰減速率對(duì)數(shù)值的變化
在污水生物處理過程中,微生物的衰減包括細(xì)胞的死亡和功能性微生物活性的喪失,然而在大多數(shù)學(xué)模型和文獻(xiàn)報(bào)道中,細(xì)胞衰減被單一的認(rèn)為是細(xì)胞死亡引起的數(shù)量衰減,對(duì)于細(xì)胞活性衰減并沒有特意區(qū)分[3,14],試驗(yàn)研究中利用 LIVE/DEAD 試劑盒鑒定0~9d內(nèi)死活細(xì)胞數(shù)量的變化,通過軟件分析得到活細(xì)胞所占比例,結(jié)果如圖3所示。通過線性回歸分析得出,PAOs在不同溫度好氧與厭氧條件下的衰減速率。
由圖3可知,溫度對(duì)微生物生理代謝有直接的影響,溫度越高微生物代謝活性越快,同時(shí)在饑餓衰減的條件下,污泥中有一部分細(xì)胞會(huì)發(fā)生自溶并產(chǎn)生少量外源底物[15],PAOs可以利用這一部分底物合成細(xì)胞內(nèi)貯存底物,維持活性或二次生長。溫度越高細(xì)胞自溶數(shù)量越多,細(xì)胞死亡所占衰減速率的比例越低,計(jì)算結(jié)果見表1。在不同溫度厭氧條件下的2個(gè)系統(tǒng)細(xì)胞活性衰減速率一致,都為0.019/d,不同溫度好氧條件下PAOs細(xì)胞活性衰減速率數(shù)值對(duì)比比較明顯,10℃與20℃的溫度下其數(shù)值分別為:0.017、0.30/d。由此可得出好氧條件下PAOs的細(xì)胞活性衰減隨溫度升高而加快,但是厭氧條件下10℃與20℃沒有變化。通過計(jì)算可得10℃厭氧、10℃好氧、20℃厭氧、20℃好氧4個(gè)系統(tǒng)內(nèi)細(xì)胞死亡所占的衰減比例分別為:35.8%、34%、26.4%、20.7%。
圖3 不同條件衰減過程中活細(xì)胞所占比例變化
表1 不同條件下PAOs的衰減速率
聚羥基烷酸(PHA)和糖原作為PAOs細(xì)胞內(nèi)貯存的能源物質(zhì),在饑餓狀態(tài)下對(duì)細(xì)胞的衰減起著重要的作用,圖4、圖5顯示4個(gè)系統(tǒng)PHA與糖原的變化情況。由圖4可知,1#(10℃厭氧)與3#(20℃厭氧)系統(tǒng)PHA濃度在第0~2d的變化趨勢(shì)相似,均迅速降低;10℃條件下第7d出現(xiàn)的最小值:1.094mg PHA/g VSS,20℃條件下第2d出現(xiàn)最小值:1.24mg PHA/g VSS,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果得到的最低PHA含量與Temmink等[16]在低碳源負(fù)荷下得到1.55mg PHA/g VSS的數(shù)值接近。1#(10℃厭氧)系統(tǒng)2~9d內(nèi)維持在最小值略有波動(dòng),而3#(20℃厭氧)系統(tǒng)在2~9d里其數(shù)值不下降反而升高,在第6d達(dá)到了9.778mg PHA/g VSS,分析原因可能是在與10℃相比20℃厭氧衰減過程中,細(xì)胞自溶的量更大,給PAOs提供了外碳源從而合成細(xì)胞內(nèi)的PHA。而Lopez等[17]的研究結(jié)果表明,在20±2℃下PAOs厭氧衰減過程中PHA含量在第1d就達(dá)到最小值:5.2mg PHA/g VSS,7d內(nèi)并無明顯變化,這與1#系統(tǒng)內(nèi)變化趨勢(shì)相似,而與3#系統(tǒng)差異較大。這可能與污泥性質(zhì)與馴化過程不同有關(guān),本試驗(yàn)采用乙酸/丙酸交替運(yùn)行,已富集到純度達(dá)90%±2聚磷菌,而Lopez采用乙酸為單一碳源富集的PAOs純度較低,菌群結(jié)構(gòu)更加復(fù)雜。
好氧條件下,2#與4#系統(tǒng)在起始衰減階段由于PHA可以被氧化提供能量,在0.5d內(nèi)其含量便迅速降低,如圖4所示。10℃條件下衰減,PAOs中PHA含量略高于20℃條件下的數(shù)值,其1~9d的平均值 分 別 為:1.97mg PHA/g VSS,0.43mg PHA/g VSS。
圖4 不同條件衰減過程中PHA變化情況的
圖5 不同條件衰減過程中糖原變化情況
衰減過程中糖原的變化如圖5所示。在0~1d不同溫度條件下,厭氧衰減過程中糖原濃度降低,好氧衰減過程中糖原濃度升高,4個(gè)反應(yīng)器內(nèi)糖原的變化符合典型的PAOs代謝模型[18]:厭氧條件下糖原被分解為丙酮酸同時(shí)供還原力生成PHA,濃度下降;好氧條件下一部分PHA重新轉(zhuǎn)化為糖原,濃度升高。Lu等[6]研究結(jié)果表明,PAOs在20±2℃下厭氧衰減,在0~2d內(nèi)細(xì)胞生長代謝所需的ATP由糖原與聚磷顆粒一起提供,而在2~8d期間主要是聚磷顆粒產(chǎn)生ATP,糖原濃度浮動(dòng)較小。然而本實(shí)驗(yàn)在1~9d期間,4個(gè)系統(tǒng)內(nèi)糖原濃度均呈下降趨勢(shì),且下降幅度較大,這與Lu等研究結(jié)果差異較大。分析原因可能是,種泥起始狀態(tài)中所含糖原濃度不同,本實(shí)驗(yàn)所用種泥中糖原濃度含量更高,在饑餓條件下糖原作為能源物質(zhì)分解用來提供細(xì)胞代謝的能量。在整個(gè)衰減試驗(yàn)過程中:同樣溫度下,糖原的厭氧降解速率大于好氧降解速率;在厭氧、好氧的衰減過程中,溫度越高糖原降解速率越快。
1)考察了在10、20℃條件下PAOs厭氧、好氧衰減速率,結(jié)果表明溫度越高衰減速率越明顯。在初始階段由于種泥中一部分顆粒污泥破碎,4個(gè)系統(tǒng)在衰減1d后釋磷活性反而升高,在1~9d里釋磷速率逐漸下降,其平均值分別為:1#(10℃厭氧):0.053/d;2#(10℃好氧):0.050/d;3#(20℃厭氧):0.072/d;4#(20℃好氧):0.145/d。
2)通過LIVE/DEAD試劑盒鑒定0~9d衰減期內(nèi)細(xì)胞的活性,測(cè)得4個(gè)衰減系統(tǒng)內(nèi)由細(xì)胞死亡所引起衰減速率為:10℃厭氧:0.019/d;10℃好氧:0.017/d;20℃厭氧:0.019/d;20℃好氧:0.03/d,溫度越高細(xì)胞死亡引起的活性衰減占總活性衰減比例越低,其比例分別為:35.8%、34%、26.4%、20.7%。
3)在10、20℃溫度條件下的厭氧、好氧衰減的4個(gè)系統(tǒng)中,細(xì)胞內(nèi)所貯存的PHA與糖原被分解用來提供能量,在9d衰減過程中其濃度總體均呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。相同溫度下,糖原在厭氧衰減過程中降解速率大于好氧;在同樣的厭氧、好氧衰減條件下,溫度越高糖原降解速率越快。
[1]Barat R,Montoya T,Seco A.Modelling biological and chemically induced precipitation of calcium phosphate in enhanced biological phosphorus removal systems [J].Water Research,2011,45(12):3744-3752.
[2]Zhang T,Zhang D J,Li Z L.Evaluating the structural identifiability of the parameters of the EBPR sub-model in ASM 2dby the differential algebra method [J].Water Research,2010,44(9):2815-2822.
[3]Oehmen A,CarvalhoG,Lopez V.Incorporating microbial ecology into the metabolic modelling of polyphosphate accumulating organisms and glycogen accumulating organisms[J].Water Research,2010,44(17):4992-5004.
[4]Trutnau M,Petzold M,Mehlig L.Using a carbon-based ASM3EAWAG Bio-P for modelling the enhanced biological phosphorus removal in anaerobic/aerobic activated sludge systems [J].Bioprocess and Biosystems Engineering,2011,34(3):287-295.
[5]Hao X D,Wang Q L,Cao Y L.Evaluating sludge minimization caused by predation and viral infection based on the extended activated sludge model No.2d[J].Water Research,2011,45(16):5130-5140.
[6]Lu H B,Keller J,Yuan Z G.Endogenous metabolism of Candidatus Accumulibacter phosphatis under various starvation conditions [J].Water Research,2007,41(20):4646-4656.
[7]Hao X D,Wang Q L,Cao Y L.Experimental evaluation of decrease in the activities of polyphosphate/glycogenaccumulating organisms due to cell death and activity decay in activated sludge [J].Biotechnology and Bioengineering,2010,106(3):399-407.
[8]Hao X D,Wang Q L,Zhang X P.Experimental evaluation of decrease in bacterial activity due to cell death and activity decay in activated sludge[J].Water Research,2009,43(14):3604-3612.
[9]Lu H B,Oehmen A,Virdis B,et al.Obtaining highly enriched cultures of Candidatus Accumulibacter phosphates through alternating carbon sources [J].Water Research,2006,40(20):3838-3848.
[10]國家環(huán)保護(hù)局《水和廢水監(jiān)測(cè)分析方法》編委會(huì).水和廢水監(jiān)測(cè)分析方法[M].北京:中國環(huán)境科學(xué)出版社,2002:252-354.
[11]Oehmen A,Keller L B,Zeng R J,et al.Optimisation of poly-beta-h(huán)ydroxyalkanoate analysis using gas chromatography for enhanced biological phosphorus removal[J].Journal of Chromatography A,2005,1070(1/2):131-136.
[12]Lesouef A,Payraydeau M,Rogalla F,et al.Optimizing nitrogen removal reactor configuration by on-site calibration of the IAWPRC activated sludge model[J].Water Science and Technology,1992,25(6):105-123.
[13]Siegrist H,Brunner I,Koch G.Reduction of biomass decay rate under anoxic and anaerobic conditions [J].Water Science and Technology,1999,39(1):129-137.
[14]Gujer W,Henze M,Mino T.Activated sludge model No.3[J].Water Science and Technology,1999,39(1):183-193.
[15]Lavallee B,Lessard P,Besser C.Decay rate variability of active heterotrophic biomass [J].Water Science and Technology,2002,46(1/2):423-430.
[16]Temmink H,Petersen B,Isaacs S.Recovery of biological phosphorus removal after periods of low organic loading[J].Water Science and Technology,1996,34(1/2):1-8.
[17]Lopez C,Pons M N,Morgenroth E.Endogenous processes during long-term starvation in activated sludge performing enhanced biological phosphorus removal[J].Water Research,2006,40(8):1519-1530.
[18]Lopez C M,Oehmen A,Hooijmans C M.Modeling the PAO-GAO competition:Effects of carbon source,pH and temperature[J].Water Research,2009,43(2):450-462.