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        克魯維酵母菊粉酶的酶學(xué)特性研究

        2012-12-03 05:44:26孔令堅(jiān)石勇陳雄
        食品研究與開發(fā) 2012年5期
        關(guān)鍵詞:外切菊粉果糖

        孔令堅(jiān),石勇,陳雄

        (湖北工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,發(fā)酵工程省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430068)

        菊粉是由多個果糖分子通過β-2,1-果糖糖苷鍵連接而成的多聚果糖,末段有一個葡萄糖殘基以α-1,2糖苷鍵與之相連,呈直鏈結(jié)構(gòu)。菊粉廣泛存在于一些菊科植物中,如菊芋、菊苣、大麗花等。其中菊芋是一個廉價的糖源,在我國大部分地區(qū)都有種植,畝產(chǎn)可達(dá)3000 kg~5000 kg,通常被作為食用或飼用原料,未獲取其真正的價值,故急待開發(fā)利用[1-3]。

        菊粉酶(inulinase,EC3.2.1.7)是一種主要來源于微生物的多糖水解酶,可分為內(nèi)切型、外切型兩種,其中內(nèi)切型菊粉酶可水解菊粉β-2,1-果糖糖苷鍵生產(chǎn)高純度的低聚果糖(fructooligosaccharides,F(xiàn)OS),外切型菊粉酶可水解菊粉生產(chǎn)超高果糖漿(Ultra High Fructose Glucose Syrups,UHFGS)[4-5]。

        本實(shí)驗(yàn)室(湖北工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,發(fā)酵工程省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室)分離了一株克魯維酵母S120[6],可產(chǎn)菊粉酶,本文探討了該克魯維酵母菊粉酶的酶學(xué)特性。

        1 材料和方法

        1.1 菌株

        克魯維酵母(Kluyveromyces)S120:由本實(shí)驗(yàn)室(湖北工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院,發(fā)酵工程省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室)篩選得到。

        1.2 培養(yǎng)基

        1.2.1 斜面培養(yǎng)基

        葡萄糖20.0 g,酵母膏10.0 g,蛋白胨10.0 g,瓊脂20.0 g,蒸餾水定容到1000 mL,pH自然。

        1.2.2 種子培養(yǎng)基

        酵母膏10.0 g,蛋白胨20.0 g,菊芋粉10.0 g,蒸餾水定容到1000 mL,pH 6.0。

        1.2.3 固體發(fā)酵培養(yǎng)基

        在300 mL三角瓶中加入18 g麩皮,2 g菊芋粉,另加入30 mL營養(yǎng)鹽液(0.4%NH4SO4,3%KH2PO4,0.5%MgSO4·7H2O,0.0003%MnSO4·H2O,0.0008%FeSO4·6H2O,0.00025%ZnSO4·7H2O,0.00035%CaCl2),初始 pH5.7。

        1.3 方法

        1.3.1 接種和培養(yǎng)條件

        挑取斜面活化菌種Kluyveromyces S120接入裝有20 mL新鮮種子培養(yǎng)液的250 mL三角瓶中,30℃下150 r/min培養(yǎng)24 h,按4%接種量接種種子培養(yǎng)液,混合均勻,34℃下培養(yǎng)72 h,間時拍打,使其均勻生長。

        1.3.2 酶液的制備與純化

        發(fā)酵結(jié)束后,在固體培養(yǎng)物加入1∶10(以干重計(jì))的蒸餾水,于室溫下(25±2)℃攪拌1 h,過濾,重復(fù)提取兩次,合并濾液,濾液作為粗酶液。將粗酶液用50%~60%硫酸銨分級鹽析、陽離子樹脂交換純化得到菊粉酶產(chǎn)品。

        1.3.3 菊粉酶的測定

        向試管中吸取一定稀釋度的粗酶液1.0 mL,加0.1 mol/L醋酸鹽緩沖液(pH 5.0)配制的2%菊粉液4 mL,混勻,于60℃保溫30 min后置于沸水中10 min使酶失活,然后冷卻到室溫,產(chǎn)生的還原糖用3,5-二硝基水楊酸法(DNS法)測定。每個試驗(yàn)平行3次,試驗(yàn)結(jié)果取3次的平均值。菊粉酶(I)活力單位規(guī)定為:在上述條件下,每分鐘產(chǎn)生1 μmol果糖所需的酶量為一個菊粉酶單位(U)。

        1.3.4 蔗糖酶的測定

        吸取一定稀釋度的粗酶液1.0 mL,加0.1 mol/L醋酸鹽緩沖液(pH 5.0)配制的2%蔗糖溶液4 mL,混合均勻,37℃反應(yīng)30 min。用DNS法測定反應(yīng)液中還原糖的量。以煮沸酶液作對照,每個試驗(yàn)平行3次,試驗(yàn)結(jié)果取3次的平均值。蔗糖酶(S)活力單位規(guī)定為:在上述條件下,每分鐘水解1 μmol的蔗糖量。

        1.3.5 菊粉酶酶學(xué)特性

        1.3.5.1 菊粉酶的最適pH及酸堿穩(wěn)定性

        分別以pH 4.5~9.0的緩沖液配制底物和稀釋酶液,測定酶活力,以酶活最高者為100%。將酶分別在pH 4.0~9.0的緩沖液中30℃放置1 h后,測定其殘余酶活力,以未保溫酶液的酶活力為100%。

        1.3.5.2 菊粉酶的最適溫度及熱穩(wěn)定性

        在不同溫度下測定酶活力,以酶活最高者為100%。在pH5.5條件下,將酶在30℃~60℃范圍內(nèi)保溫1h后,測定其殘余酶活力,以未保溫酶液的酶活力為100%。

        1.3.5.3 動力學(xué)常數(shù)測定

        酶與底物在pH 5.5、50℃反應(yīng)5 min,測定反應(yīng)產(chǎn)物中還原糖的增加量,以單位時間內(nèi)產(chǎn)物中還原糖的增加量作為酶反應(yīng)的初速度,用Lineweaver-Burk雙倒數(shù)作圖。

        1.3.5.4 金屬離子對酶活力的影響

        將酶液對重蒸餾水透析過夜,添加不同金屬離子,測定其酶活力。以不加金屬離子的酶活力為100%。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 內(nèi)、外切型菊粉酶的確定

        [7],對于具有內(nèi)切型、外切型菊粉酶活性的粗酶液,通常測其對2%菊粉溶液的活性(I)和2%蔗糖溶液的活性(S),計(jì)算出I/S值,一般認(rèn)為當(dāng)I/S大于10時,表現(xiàn)為內(nèi)切酶活性。I/S小于10時,表現(xiàn)為外切酶活性。本試驗(yàn)首先確定Kluyveromyces S120的I/S值為13.5,I/S值大于10,為內(nèi)切菊粉酶菌株。內(nèi)切菊粉酶可水解菊粉產(chǎn)生低聚果糖。

        2.2 酶學(xué)特性研究

        2.2.1 pH對酶活力的影響

        在pH 4.5~9.0條件下,通過多次平行試驗(yàn),測定相對酶活力,所得結(jié)果見圖1,將酶分別在pH 4.0~9.0的緩沖液中30℃放置1 h后,通過多次平行試驗(yàn),測定其殘余酶活力,結(jié)果見圖2。

        圖1 pH對酶活力的影響Fig.1 Effect of pH on enzyme activity

        圖2 pH對酶穩(wěn)定性的影響Fig.2 Effect of pH on enzyme stability

        從圖1中可知酶的最適pH5.5。低于或高于pH5.5,酶活都有所下降。在pH5.0~pH6.0之間,相對酶活力達(dá)90%以上;pH大于7,相對酶活力急劇下降,pH9.0后相對酶活力很低。從圖2中可知該酶在pH 4.5~7.0范圍內(nèi)穩(wěn)定,殘留酶活達(dá)90%以上。pH影響酶活的原因有:過堿會影響酶蛋白的結(jié)構(gòu),甚至使酶變性失活;pH也可能影響酶分子中一些基團(tuán)的解離,從而影響酶的活性。

        2.2.2 溫度對酶活力的影響

        在pH 5.5條件下,30℃~60℃范圍內(nèi)通過多次平行試驗(yàn),測定相對酶活力,結(jié)果見圖3。將酶分別在30℃~60℃放置1 h后,通過多次平行試驗(yàn),測定其殘余酶活力,結(jié)果見圖4。

        圖3 溫度對酶活力的影響Fig.3 Effect of temperature on enzyme activity

        圖4 溫度對酶穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effect of temperature on enzyme stability

        如圖3所示,在溫度為50℃時,酶活力最高。如圖4所示,在50℃~60℃間能維持80%以上的酶活力。溫度對酶促反應(yīng)的影響有兩方面:一方面是當(dāng)溫度升高時反應(yīng)速度會加快;另一方面是隨著溫度的升高,酶逐漸變性。酶的最適溫度是這兩種過程的平衡效果,在低于最適溫度時,前一種效應(yīng)為主,因而酶的活性增加;在高于最適溫度時,后一種效應(yīng)為主,因而酶的活性迅速降低。

        2.2.3 金屬離子對酶活力影響

        將酶液對重蒸餾水透析過夜,通過添加不同金屬離子,測定其酶活力。不同金屬離子對產(chǎn)酶的影響見圖5。

        由圖5可知,錳離子、鎂離子、鈣離子對菊粉酶的激活作用最顯著,而鋅離子,銅離子,亞鐵離子有抑制作用。

        圖5 金屬離子對酶活力影響Fig.5 Effect of metal ion on enzyme activity

        2.2.4 米氏常數(shù)與最大反應(yīng)速度

        菊粉酶經(jīng)過初步純化后,在5 min時間內(nèi),酶量一定及酶促反應(yīng)最適條件下,改變底物濃度(s),測產(chǎn)物濃度(p),初速度設(shè)定為 ΔP/t。按 Lineweaver-Burk作圖法以1/V對1/S作圖,如圖 6,得到 1/V=0.6763(1/S)+0.0636,根據(jù)直線在橫軸上的截距(-1/Km)求出米氏常數(shù)Km為10.63 mg/mL,最大反應(yīng)速度為15.72 mg/(mL·s)。

        圖6 底物濃度與反應(yīng)速度的關(guān)系Fig.6 Relation of substrate concentration and reaction velocity

        3 結(jié)論

        克魯維酵母S120菊粉酶為內(nèi)切菊粉酶。其最適pH5.5,最適溫度50℃,錳離子、鎂離子、鈣離子對菊粉酶的激活作用最顯著,而鋅離子,銅離子,亞鐵離子有抑制作用。在試驗(yàn)條件下,米氏常數(shù)Km為10.63 mg/mL,最大反應(yīng)速度為15.72 mg/(mL·s)。

        參考文獻(xiàn):

        [1]張連富,李紅.內(nèi)切菊粉酶法生產(chǎn)低聚果糖研究進(jìn)展[J].中國食品添加劑,2000(1):20-25

        [2]Kulminskaya A A,Arand M,Eneyskaya E V.Biochemical characterization of aspergillus awamori exoinulinase:substrate binding characteristics and regioselectivity of hydrolysis[J].Biochimica and biophysica acta,2003,1650(1):22-29

        [3]Vandamme E F,Derycke D G.Microbial inulinases:fermentation process,properties and applications[J].Adv Appl Microbiol,1993,29:139-176

        [4]Gennaro S D,Birch G G,Parke S A.Studies on the physiochemical properties of inulin and inulin oligomers[J].Food chemistry,2000,68:179-183

        [5]Manzonl M,Cavazzoni V.Hydrolysis of Topinambur(Jerusalem artichoke)fructans by extracellular inulinase of Kluyveromyes marxianus Var.bulgaricus[J].J Chem Technol Biotechnol,1992,54:311-315

        [6]陳雄.內(nèi)切型菊粉酶高活力菌株的篩選[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2003(3):93-94

        [7]Arhari R.Purification and characterization of endo-and exo-inulinase[J].Biotechnol Biochem,1999,11:105-107

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