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        糖氧剝奪誘導(dǎo)神經(jīng)元磷酸化Rb蛋白表達特點及其與凋亡關(guān)系研究

        2012-10-18 06:37:58張兆輝喻志源
        卒中與神經(jīng)疾病 2012年6期
        關(guān)鍵詞:胞漿細(xì)胞周期磷酸化

        余 櫻 張兆輝 喻志源 王 偉

        視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤蛋白(Retinoblastoma protein,Rb)及其相關(guān)蛋白(p107,p130)被認(rèn)為是細(xì)胞周期G1/S期轉(zhuǎn)變的“檢驗點”。在應(yīng)對中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷時,終末分化的成熟神經(jīng)元保留細(xì)胞周期再活化的能力,嘗試通過“檢驗點”再次進入細(xì)胞周期。有研究發(fā)現(xiàn)神經(jīng)元暴露在不同的死亡刺激中均能檢測到磷酸化的Rb[1],提示Rb信號途徑可能在缺血后神經(jīng)元凋亡中起重要作用,但是Rb和神經(jīng)元凋亡的準(zhǔn)確關(guān)系、參與神經(jīng)元凋亡的具體機制仍然不明確。本研究采用離體培養(yǎng)的皮層神經(jīng)元糖氧剝奪(Oxygen-glucose deprivation,OGD)再給氧實驗,探討OGD誘導(dǎo)體外培養(yǎng)的神經(jīng)元細(xì)胞內(nèi)磷酸化Rb(phospho-Rb,p-Rb)的表達變化特點及其與神經(jīng)元凋亡的關(guān)系,嘗試從神經(jīng)元細(xì)胞周期調(diào)控的角度來闡述缺血缺氧誘導(dǎo)神經(jīng)元凋亡的可能機制。

        1 材料與方法

        1.1 大鼠皮層神經(jīng)元的原代培養(yǎng)

        按照Katchanov的方法[2]稍加改進。取24 h內(nèi)新生的SD大鼠大腦皮層,0.125%胰酶-0.02%EDTA37℃消化15 min,1000 r/min室溫離心3 min,棄上清,在含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)液中重懸,吹打分散成細(xì)胞懸液,經(jīng)直徑70μm的篩網(wǎng)過濾,以3.5×105/ml的細(xì)胞密度接種于多聚賴氨酸(0.1 mg/ml)包被過的24孔板中,于37℃5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),第2 d更換神經(jīng)元培養(yǎng)基(Neurobasal-A+2%B27+0.5 mM L-谷氨酰胺),以后每3 d半量換液一次,選取第7 d的細(xì)胞進行實驗研究。

        1.2 糖氧剝奪模型制備

        參考Gwag的方法[3]制備OGD模型。將培養(yǎng)的皮層神經(jīng)元隨機分為對照組、糖氧剝奪1 h后恢復(fù)糖氧供給(OGD/R)6、12、24 h組。OGD/R各組神經(jīng)元加入不含糖Earl’s平衡鹽溶液(EBSS:116.4 mM NaCl,0.8 mM MgSO4,5.4 mM KCl,2.6 mM NaH2PO4,26.2 mM NaHCO3,1.8 mM CaCl2,and 20.1 mM HEPES pH7.4)后放入缺氧培養(yǎng)箱(93%N2,5%CO2,<2%O2)37℃培養(yǎng)1 h,對照組加入含糖EBSS(EBSS加5.6 mM葡萄糖)放入正常條件培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng)1 h。此后,對照組和OGD/R各組神經(jīng)元均換成神經(jīng)元培養(yǎng)基正常條件培養(yǎng),規(guī)定時間點取出細(xì)胞進行相關(guān)檢測。

        1.3 OGD/R各時間點神經(jīng)元微管相關(guān)蛋白2(Microtubule-associated protein 2,MAP-2)與p-Rb免疫熒光細(xì)胞化學(xué)雙標(biāo)記染色

        各組細(xì)胞爬片于相應(yīng)時間點去除培養(yǎng)基,PBS漂洗,甲醇室溫固定15 min,0.2%Triton-PBS液中透膜15 min,加封閉液(10%BSA-PBS)室溫封閉2 h,滴加比例稀釋的小鼠抗 MAP-2單克隆抗體(Chemicon,1∶100)和兔抗磷酸化Rb(ser 795)多克隆抗體(Cell Signaling,1∶100)4℃孵育過夜,棄一抗,滴加CY3標(biāo)記羊抗兔IgG(Jackson ImmunoResearch,1∶200)和FITC標(biāo)記羊抗鼠IgG(Jackson ImmunoResearch,1∶200)室溫避光孵育40 min,棄二抗,滴加核染料DAPI(5 mg/ml)復(fù)染10 min,流水沖洗后50%甘油封片。

        1.4 細(xì)胞凋亡(TUNEL)染色與p-Rb雙標(biāo)記熒光染色

        TUNEL染色方法按照試劑盒(Clontech)說明書進行操作。各組細(xì)胞爬片于相應(yīng)時間點固定、透膜,滴加Equilibration Buffer室溫放置10 min,滴加TdT Incubation Buffer混合液濕盒中37℃避光孵育1 h,2×SSC Buffer室溫終止反應(yīng),滴加上述比例稀釋的兔抗磷酸化Rb(ser 795)多克隆抗體4℃孵育過夜,依次滴加羊抗兔CY3二抗、核染料DAPI孵育,沖洗封片如上述。熒光顯微鏡下觀察、照相。計算隨機不重復(fù)的6個高倍(×400倍)視野下TUNEL或p-Rb陽性細(xì)胞數(shù)或兩者共定位細(xì)胞占DAPI數(shù)量的百分比(n=3),計算陽性率。

        1.5 統(tǒng)計學(xué)處理

        采用SPSS11.0統(tǒng)計軟件。實驗數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,兩組間比較采用t檢驗;多組間比較采用方差分析,繼以LSD進行兩組間差異性檢驗。

        2 結(jié) 果

        2.1 OGD誘導(dǎo)神經(jīng)元 MAP-2與p-Rb表達的特點

        對照組 MAP-2在神經(jīng)元胞漿表達,顯示神經(jīng)元胞體呈錐體狀,形態(tài)完整,突起分2~3支,細(xì)長連續(xù),與相鄰神經(jīng)元突起之間相互連接成網(wǎng),僅有少數(shù)神經(jīng)元胞核或者胞漿有p-Rb弱表達。OGD/R6 h組觀察到MAP-2顯示神經(jīng)元的突起斷裂不連續(xù),p-Rb主要在神經(jīng)元胞漿表達,表達率較對照組增多,達到神經(jīng)元總數(shù)的20~30%。OGD/R12 h,神經(jīng)元突起斷裂,相互之間失去連接,網(wǎng)絡(luò)紊亂,此時p-Rb的表達達到高峰,約有40~50%的神經(jīng)元p-Rb在胞漿強表達。OGD/R24 h,約有將近一半的神經(jīng)元結(jié)構(gòu)不完整,破碎零散,p-Rb表達稍有減少。

        2.2 OGD誘導(dǎo)神經(jīng)元p-Rb表達與凋亡的關(guān)系

        對照組中只有5%~10%的神經(jīng)元p-Rb在胞漿內(nèi)弱表達,極少能與TUNEL染色共定位。OGD/R6 h,p-Rb表達增強,凋亡細(xì)胞數(shù)開始增多,兩者共定位的細(xì)胞比例增高,OGD/R12 h,p-Rb表達達到高峰時,幾乎所有凋亡的細(xì)胞均與p-Rb共定位(圖1)。OGD/R 24 h時雖然p-Rb表達和TUNEL均維持在比較高的水平,但是很少觀察到兩者共定位表達(圖1),提示Rb磷酸化可能參與OGD誘導(dǎo)的神經(jīng)元早期凋亡過程。

        3 討 論

        圖1 各組神經(jīng)元p-Rb標(biāo)記、TUNEL標(biāo)記和兩者共定位標(biāo)記的細(xì)胞比例

        既往認(rèn)為神經(jīng)元為終末分化細(xì)胞,一旦分化完成,就不能再進行分裂增殖。精確調(diào)控細(xì)胞周期進程對于維持神經(jīng)元表型及存活十分關(guān)鍵。大量研究證據(jù)顯示在應(yīng)對中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷時,神經(jīng)元保留了細(xì)胞周期再活化的能力,嘗試通過“檢驗點”再次進入細(xì)胞周期[4]。Rb被認(rèn)為是神經(jīng)元細(xì)胞周期再進入和可能引起凋亡的一個“門衛(wèi)”[5]。非磷酸化狀態(tài)的Rb通過與轉(zhuǎn)錄因子E2F1結(jié)合阻滯其相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄而使細(xì)胞停留在G1期,而Rb翻譯后的磷酸化修飾參與神經(jīng)元的細(xì)胞周期誘導(dǎo)[6]。Rb磷酸化導(dǎo)致E2F1/Rb復(fù)合物解離和E2F1釋放,促進細(xì)胞進入S期和凋亡[6]。有報道卒中模型中神經(jīng)元表達磷酸化Rb增加[7,8],但它參與神經(jīng)元凋亡的具體機制不清楚。Rb磷酸化在腦缺血后神經(jīng)元中表達如何變化,如何參與神經(jīng)元的細(xì)胞周期調(diào)控并導(dǎo)致凋亡?本研究發(fā)現(xiàn)糖氧剝奪誘導(dǎo)的神經(jīng)元損傷導(dǎo)致神經(jīng)元細(xì)胞內(nèi)Rb磷酸化表達增加,這些細(xì)胞在損傷早期即發(fā)生凋亡,提示Rb可能通過誘導(dǎo)缺血缺氧神經(jīng)元細(xì)胞周期紊亂參與其早期凋亡過程。

        MAP-2是神經(jīng)元的細(xì)胞骨架成分,作為神經(jīng)元的標(biāo)記物,用來觀察OGD/R不同時間點神經(jīng)元細(xì)胞骨架形態(tài)的變化。對照組中,MAP-2存在于神經(jīng)元的胞漿和突起中,相鄰細(xì)胞突起相互交聯(lián),連接成網(wǎng)絡(luò)。當(dāng)遭受OGD損傷后,首先觀察到MAP-2標(biāo)記的神經(jīng)元突起斷裂不連續(xù),接著突起之間失去連接,網(wǎng)絡(luò)紊亂,最后觀察到將近一半的神經(jīng)元結(jié)構(gòu)欠完整,部分破碎零散,表明OGD1 h后恢復(fù)糖氧供給處理成功地對培養(yǎng)的皮層神經(jīng)元造成缺血缺氧損傷,為后續(xù)OGD誘導(dǎo)的神經(jīng)元細(xì)胞周期改變及凋亡建立有效細(xì)胞模型。

        本研究對培養(yǎng)的皮層神經(jīng)元糖氧剝奪后再恢復(fù)糖氧供給,來誘導(dǎo)神經(jīng)元損傷。我們的結(jié)果顯示神經(jīng)元OGD處理后,ser 795位點磷酸化的Rb蛋白在早期(6 h和12 h)即表達迅速增加,提示這些神經(jīng)元正常細(xì)胞周期調(diào)控已被打亂,同時,我們觀察到損傷早期大部分發(fā)生Rb磷酸化的神經(jīng)元能與TUNEL染色共定位,說明OGD損傷的大部分神經(jīng)元通過Rb磷酸化導(dǎo)致其原有的細(xì)胞周期紊亂,但是這些神經(jīng)元最終結(jié)局不是增殖而是凋亡。

        我們在研究中發(fā)現(xiàn),神經(jīng)元暴露于OGD處理后,p-Rb表達在復(fù)氧后6 h和12 h顯著增加,OGD/R12 h,p-Rb表達達到高峰時,幾乎所有TUNEL染色細(xì)胞均與p-Rb共定位,但在OGD/R 24 h,雖然p-Rb表達和TUNEL染色細(xì)胞比例均分別維持在比較高的水平,卻很少觀察到兩者共定位表達,提示Rb磷酸化介導(dǎo)的神經(jīng)元細(xì)胞周期紊亂可能是OGD誘導(dǎo)的神經(jīng)元早期凋亡機制之一。

        Rb磷酸化能決定他自身與轉(zhuǎn)錄因子E2F1結(jié)合以及阻止E2F1轉(zhuǎn)錄的能力。Rb的磷酸化調(diào)控細(xì)胞通過G1期限定點并進入S期,是由細(xì)胞周期蛋白(cyclin)D,E,A和對應(yīng)的細(xì)胞周期蛋白依賴性激酶(CDKs)連續(xù)調(diào)節(jié)的過程。正常情況下神經(jīng)元內(nèi)的細(xì)胞周期蛋白是穩(wěn)定而有序的表達,但是當(dāng)神經(jīng)元受到各種損傷刺激后,細(xì)胞周期蛋白被激活并無序紊亂表達,再表達的CDKs使Rb磷酸化并從轉(zhuǎn)錄抑制復(fù)合物E2F1/Rb上脫離,啟動E2F1依賴的凋亡蛋白(如p53,caspase家族,Bax等)的表達來誘導(dǎo)神經(jīng)元凋亡[9,10]。根據(jù)細(xì)胞的狀態(tài),E2F能誘導(dǎo)一些凋亡途徑:1)激活b-myb和c-myb基因;2)增加caspase-3,-9,-8和 Apaf-1的表達;3)激活p53和p73,p53和p73激活前凋亡Bcl-2家族成員,釋放線粒體前凋亡蛋白如細(xì)胞色素c等[9]。

        總之,我們發(fā)現(xiàn)OGD處理的成熟神經(jīng)元通過Rb磷酸化導(dǎo)致細(xì)胞周期紊亂,并誘導(dǎo)其發(fā)生早期凋亡,推測Rb磷酸化介導(dǎo)的神經(jīng)元細(xì)胞周期紊亂可能是缺血缺氧誘導(dǎo)的神經(jīng)元早期凋亡機制之一。

        1 Park DS,Obeidat A,Giovanni A,et al.Cell cycle regulators in neuronal death evoked by excitotoxic stress:Implications for neurodegeneration and its treatment.Neurobiol Aging,2000,21(6):771-781.

        2 Katchanov J,Harms C,Gertz K,et al.Mild cerebral ischemia induces loss of cyclin-dependent kinase inhibitors and activation of cell cycle machinery before delayed neuronal cell death.J Neurosci,2001,21(14):5045-5053.

        3 Gwag BJ,Lobner D,Koh JY,et al.Blockade of glutamate receptors unmasks neuronal apoptosis after oxygen-glucose deprivation in vitro.Neuroscience,1995,68(3):615-619.

        4 Malik B,Currais A,Andres A,et al.Loss of neuronal cell cycle control as a mechanism of neurodegeneration in the presenilin-1 alzheimer's disease brain.Cell Cycle,2008,7(5):637-646.

        5 Liu DX,Greene LA.Neuronal apoptosis at the G1/S cell cycle checkpoint.Cell Tissue Res,2001,305(2):217-228.

        6 Dick FA,Dyson N.p-RB contains an E2F1-specific binding domain that allows E2F1-induced apoptosis to be regulated separately from other E2F activities.Mol Cell,2003,12(3):639-649.

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        8 Lazzerini Denchi E,Helin K.E2F1is crucial for E2F-dependent apoptosis.EMBO Rep,2005,6(7):661-668.

        9 Byrnes KR,F(xiàn)aden AI.Role of cell cycle proteins in cns injury.Neurochem Res,2007,32(10):1799-1807.

        10 Nguyen MD,Mushynski WE,Julien JP.Cycling at the interface between neurodevelopment and neurodegeneration.Cell Death Differ,2002,9(12):1294-1306.

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