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        RNA干擾HIF-2α基因?qū)θ朔蜗侔〢549細(xì)胞株侵襲轉(zhuǎn)移的影響

        2012-10-05 15:07:02袁凱王勇童繼春袁衛(wèi)東陳棟
        中國臨床醫(yī)學(xué) 2012年6期
        關(guān)鍵詞:差異水平

        袁凱 王勇 童繼春 袁衛(wèi)東 陳棟

        (南京醫(yī)科大學(xué)附屬常州第二人民醫(yī)院胸心外科,江蘇 常州 213003)

        缺氧微環(huán)境在肺癌發(fā)生發(fā)展中起著重要作用,缺氧誘導(dǎo)因子(hypoxia-inducible factors,HIFs)是缺氧微環(huán)境中的關(guān)鍵分子[1]。研究認(rèn)為,HIFs的功能主要是由α亞基決定的[2]。HIF-1α和 HIF-2α是其中兩種亞型,兩者雖然結(jié)構(gòu)相似但功能存在差異。我們先前的研究顯示,HIF-1α和 HIF-2α在非小細(xì)胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)組織中廣泛表達(dá),其中 HIF-2α表達(dá)與腫瘤大小、TNM分期以及患者預(yù)后關(guān)系密切,相反HIF-1α則無明顯相關(guān)[3-4]。在另 一項(xiàng)研 究中,我 們對人肺 腺癌A549細(xì)胞株成功進(jìn)行了缺氧培養(yǎng),并在多個缺氧時點(diǎn)進(jìn)行了 HIF-α的檢測。結(jié)果顯示,HIF-1α對于急性缺氧環(huán)境極為敏感,其表達(dá)在4 h即至高峰,而HIF-2α在慢性缺氧環(huán)境有持續(xù)較強(qiáng)表達(dá)[5]。通過該項(xiàng)研究我們認(rèn)識到,HIF-1α和 HIF-2α在缺氧過程調(diào)節(jié)中可能各有側(cè)重,即HIF-1α是急性缺氧期的主要反應(yīng)因子,而HIF-2α則主導(dǎo)慢性缺氧調(diào)節(jié)。NSCLC等實(shí)體腫瘤所在的慢性缺氧環(huán)境中,HIF-2α可能發(fā)揮更大的作用。本研究利用小干擾RNA(small interfering RNA,siRNA)技術(shù)抑制人肺腺癌細(xì)胞株A549中HIF-2α基因的表達(dá),觀察A549侵襲轉(zhuǎn)移能力的變化,進(jìn)一步探討 HIF-2α在NSCLC中的生物作用機(jī)制。

        1 資料與方法

        1.1 材料 A549細(xì)胞株購自中科院上海細(xì)胞生物學(xué)研究所,pGPU6/GFP/Neo質(zhì)粒購于上海GeneP-harma制藥技術(shù)有限公司,實(shí)驗(yàn)所需各種酶購自Takara公司,鼠抗人HIF-2α單克隆抗體購自Abcam公司,Lipofectamin 2000購自Invitrogen公司,Transwells小室購自美國Corning公司,Matrigel基質(zhì)膠購自美國BD Biosciences公司。

        1.2 主要儀器 CY-12C便攜式氧濃度監(jiān)測儀(建德市梅城電化分析儀器廠);CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo公司);Esco垂直流/水平流超凈工作臺(新加坡Esco公司);5415D小型高速離心機(jī)、5702R臺式冷凍離心機(jī)(德國Eppendorf公司);Roto-Gene 3000熒光定量PCR儀(澳大利亞Corbett Research公司);臺式超聲細(xì)胞破碎儀(英國SANYO公司);酶標(biāo)儀、電泳儀及電轉(zhuǎn)儀(美國Bio-Rad公司);KHY100空氣恒溫?fù)u床(上海蘇豪智能系統(tǒng)有限公司);IX51倒置顯微鏡、BX51熒光顯微鏡(日本OLYMPUS公司)。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        1.3.1 細(xì)胞培養(yǎng)及分組 A549細(xì)胞在DMEM培養(yǎng)基中常規(guī)培養(yǎng)傳代。實(shí)驗(yàn)分組:空白對照組(僅用轉(zhuǎn)染試劑處理),陰性對照組(轉(zhuǎn)染siRNA陰性質(zhì)粒),HIF-2α-siRNA 組 (轉(zhuǎn) 染 HIF-2α-siRNA 質(zhì)粒)。每組設(shè)3復(fù)孔。各實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞瞬時轉(zhuǎn)染24 h后鋪板并缺氧培養(yǎng)1~2 d。

        1.3.2 靶向抑制HIF-2α的siRNA的設(shè)計(jì)與合成參考siRNA設(shè)計(jì)原則[6],設(shè)計(jì)4條針對 HIF-2α的siRNA,另設(shè)計(jì)1條無關(guān)序列作為陰性對照。對于每條選定的siRNA序列,設(shè)計(jì)2條編碼該序列的單鏈寡核苷酸(single-strand oligonucleotide,ss oligo)模板,并交由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。

        1.3.3 siRNA表達(dá)載體的構(gòu)建 將合成的ss oligo退火,與經(jīng)過Bbs I、BamH I雙酶切的質(zhì)粒pGPU6/GFP/Neo連接,熱轉(zhuǎn)化至大腸桿菌JM109中,37℃過夜培養(yǎng),堿裂解法快速抽提質(zhì)粒。

        1.3.4 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 胰酶消化培養(yǎng)A549細(xì)胞并鋪板。轉(zhuǎn)染前將質(zhì)粒DNA及10μL脂質(zhì)體分別加入250μL無血清DMEM培養(yǎng)基中并輕輕混勻,靜置混合。然后將上述混合液加入1.5 mL無血清培養(yǎng)基中,混勻后將其加入漂洗過的細(xì)胞中,輕柔晃動平板使之與細(xì)胞充分接觸。37℃下培養(yǎng)6 h后將其中的培養(yǎng)基吸出棄去,更換新鮮培養(yǎng)基并置于缺氧環(huán)境下繼續(xù)培養(yǎng)24、48 h。

        1.3.5 轉(zhuǎn)染效果檢測 pGPU6/GFP/Neo載體可表達(dá)GFP綠色熒光蛋白,轉(zhuǎn)染后24 h和48 h分別在熒光顯微鏡下觀察5個視野,計(jì)數(shù)100個細(xì)胞,計(jì)算轉(zhuǎn)染效率。

        1.3.6 qRT-PCR 按常規(guī)方法提取樣品總RNA,進(jìn)行實(shí)時定量 PCR 檢測。HIF-2α 正義鏈:5′-GAAAACGAGTCCGAAGCC-3′; 反 義 鏈:5′-CCCAAAACCAGAGCCATT-3′。β-actin 正 義 鏈:5′-CTCTTCCAGCCTTCCTTCCTG-3′;反義鏈:5′-CAGCACTGTGTTGGCGTACAG-3′。擴(kuò) 增 反 應(yīng)條件為95℃90 s;95℃5 s,58℃30 s,共40個循環(huán),計(jì)算采用2-ΔΔCT法。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        1.3.7 Western-blot及酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)檢測蛋白表達(dá) 按常規(guī)方法進(jìn)行。

        1.3.8 Transwell檢測法 取100μL Matrigel稀釋后鋪于Transwell小室,4℃風(fēng)干。胰酶消化貼壁細(xì)胞,重懸細(xì)胞并調(diào)整至密度為1×105個/mL。取200μL細(xì)胞懸液加入Transwell小室,在下室內(nèi)加入含胎牛血清的完全培養(yǎng)基,分別缺氧培養(yǎng)24 h和48 h。培養(yǎng)結(jié)束后,取出小室并洗膜,將濾膜用甲醛固定并染色。鏡下計(jì)數(shù)上、下、左、右、中5個隨機(jī)視野細(xì)胞數(shù),取均值。

        1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示。對于多組數(shù)據(jù)比較,采用單因素方差分析(ANOVA)檢驗(yàn)。組間兩兩比較時,用Levene法進(jìn)行方差齊性檢驗(yàn)。若方差齊,采用LSD檢驗(yàn);若方差不齊,則用Games-Howell法進(jìn)行分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 轉(zhuǎn)染 HIF-2α-siRNA 后 HIF-2αmRNA 表達(dá)水平的變化 各組細(xì)胞HIF-2αmRNA的表達(dá)水平見表1。單因素方差分析顯示,各組間HIF-2αmRNA表達(dá)水平存在顯著差異(轉(zhuǎn)染后24 h:F=26.13,P<0.01;轉(zhuǎn)染后 48 h:F=46.32,P<0.01)。與空白對照組相比,轉(zhuǎn)染后缺氧培養(yǎng)24 h和48 h,HIF-2α-siRNA 組 HIF-2αmRNA 表達(dá)水平均下降。在轉(zhuǎn)染后24 h,4條 HIF-2α-siRNA對HIF-2αmRNA的抑制率差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。在 HIF-2α-siRNA 各組間兩兩比較顯示,HIF-2α-siRNA-4組在轉(zhuǎn)染后兩個時點(diǎn)HIF-2α mRNA表達(dá)水平低于其他3組(P<0.01)。陰性對照組HIF-2αmRNA雖略有下降,但與空白對照組間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        表1 A549細(xì)胞中 HIF-2α-siRNA對 HIF-2αmRNA表達(dá)的抑制作用

        2.2 轉(zhuǎn)染 HIF-2α-siRNA后 HIF-2α蛋白表達(dá)水平的變化 Western blot法檢測HIF-2α蛋白表達(dá),結(jié)果見表2及圖1。單因素方差分析顯示,各組蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(轉(zhuǎn)染后24 h:F=16.80,P<0.01;轉(zhuǎn)染后48 h:F=223.69,P<0.01)。組間兩兩比較顯示,與空白對照組相比,HIF-2α-siRNA-1組在兩個時點(diǎn)蛋白表達(dá)均無顯著改變(P>0.05);HIF-2α-siRNA-2組在轉(zhuǎn)染后48h與空白對照組相比,蛋白表達(dá)下調(diào)(P<0.01);HIF-2α-siRNA-3、4組細(xì)胞在轉(zhuǎn)染后兩個時點(diǎn)與空白對照組的HIF-2α蛋白表達(dá)水平相比均有顯著下調(diào)(P<0.01),而 HIF-2αsiRNA-4相較于 HIF-2α-siRNA-3組,在轉(zhuǎn)染后48 h其HIF-2α蛋白水平更低(P<0.01)。陰性對照組與空白對照組相比,在兩個時點(diǎn)其HIF-2α蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。轉(zhuǎn)染 HIF-2α-siRNA-4重組質(zhì)粒的A549細(xì)胞中HIF-2α蛋白下調(diào)最為顯著,且在轉(zhuǎn)染后48h抑制效果最好。

        表2 A549細(xì)胞中HIF-2α-siRNA對HIF-2α蛋白表達(dá)的抑制作用

        圖1 各組細(xì)胞中HIF-2α蛋白的Western blot分析

        2.3 HIF-2α-siRNA對 A549細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移的影響Transwell小室法結(jié)果如表3及圖2所示。方差分析顯示,各組穿膜細(xì)胞數(shù)存在顯著差異(24 h:F=2471.37,P<0.01;48 h:F=191.24,P<0.01)。兩兩比較顯示,與空白對照組相比,實(shí)驗(yàn)組在缺氧培養(yǎng)兩個時點(diǎn)其穿膜細(xì)胞數(shù)均顯著下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。陰性對照組與空白對照組相比,穿膜細(xì)胞數(shù)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        表3 各組的穿膜細(xì)胞數(shù)

        圖2 Transwell法測定各組細(xì)胞的侵襲力

        2.4 ELISA法檢測各組細(xì)胞VEGF表達(dá)水平 本研究采用ELISA法檢測各組細(xì)胞在缺氧培養(yǎng)24 h和48 h后血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)蛋白的表達(dá)水平,結(jié)果如表4所示。方差分析顯示,各組間VEGF蛋白表達(dá)水平有顯著差異(24 h:F=26.37,P<0.01;48 h:F=203.30,P<0.01)。兩兩比較顯示,與空白對照組相比,HIF-2α-siRNA組VEGF蛋白水平在轉(zhuǎn)染后兩個時點(diǎn)均顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)??瞻讓φ战M與陰性對照組之間VEGF蛋白表達(dá)水平差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        表4 各組VEGF蛋白的表達(dá)情況

        3 討 論

        RNA干擾(RNA interference,RNAi)是一種進(jìn)化過程中高度保守的抵御外來基因或病毒侵犯的防御機(jī)制。siRNA是RNA干擾作用賴以發(fā)生的重要中間效應(yīng)分子。siRNA是一類長21~25個核苷酸的特殊dsRNA分子,siRNA的序列與所作用的靶mRNA序列具有同源性;siRNA兩條單鏈末端為5′端磷酸和3′端羥基;每條單鏈的3′端均有2~3個突出的非配對的堿基。研究表明,RNAi的作用機(jī)制包括起始階段、效應(yīng)階段及反應(yīng)擴(kuò)大階段。RNAi作為基因阻斷技術(shù),具有特異性強(qiáng)、高效性的優(yōu)點(diǎn)。用RNAi技術(shù)來抑制目標(biāo)基因的異常表達(dá),為治療癌癥、遺傳病等疾病開辟了新的途徑。

        本研究構(gòu)建了4條針對HIF-2α的siRNA序列發(fā)現(xiàn) HIF-2α-siRNA-4對 HIF-2α的抑制效果最為明顯,在轉(zhuǎn)染后24 h和48 h HIF-2αmRNA表達(dá)相較于空白組下調(diào)了(60.63±5.10)%和(80.00±3.55)%;相應(yīng)在蛋白水平分別下調(diào)了(31.69±11.56)%和(82.87±4.09)%。Transwell試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),HIF-2αsiRNA組穿膜細(xì)胞數(shù)顯著少于兩對照組(P<0.01),提示HIF-2α與A549細(xì)胞侵襲力有密切關(guān)系。

        目前,關(guān)于HIF-1α和VEGF的關(guān)系研究較多且較深入,而對HIF-2α與VEGF的關(guān)系則研究較少。在 Wu等[3]的研究中,發(fā)現(xiàn) VEGF的表達(dá)與 HIF-2α的蛋白表達(dá)密切相關(guān)。本研究采用siRNA技術(shù)抑制HIF-2α表達(dá)后,同樣觀察到在轉(zhuǎn)染后24h和48h,VEGF表達(dá)較對照組顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。綜上所述,HIF-2α有望作為靶點(diǎn)應(yīng)用于NSCLC的治療。

        [1]Bertout J A,Patel S A,Simon M C.The impact of O2 availability on human cancer[J].Nat Rev Cancer,2008,8(12):967-975.

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        [6]Elbashir S M,Harborth J,Weber K,et al.Analysis of gene function in somatic mammalian cells using small interfering RNAs[J].Methods,2002,26(2):199-213.

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