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        植酸酶的高密度發(fā)酵、制備及其應(yīng)用研究

        2010-08-09 02:38:36王永華吳曉英齊振雄
        飼料工業(yè) 2010年20期
        關(guān)鍵詞:植酸酶菌體活力

        龍 躍 楊 博 王永華 吳曉英 齊振雄

        植酸酶是催化植酸及其鹽類水解成肌醇和磷酸的一類酶的總稱。磷是動物體內(nèi)一種必需的礦物質(zhì),在參與體內(nèi)正常的新陳代謝中起著重要的作用。磷還是骨骼的重要成分。畜禽必須從飼料中攝取足夠的磷,才能維持正常的生命活動。如果飼料中缺磷,會導(dǎo)致畜禽生長發(fā)育遲緩,骨骼和牙齒發(fā)育不良,動物生產(chǎn)性能降低等不良后果。在飼料中添加植酸酶,可以提高飼料的利用率,降低飼料系數(shù)和飼料成本,改善許多水產(chǎn)動物的生長性能,促進(jìn)其生長,所以植酸酶的應(yīng)用潛力很大。飼料中添加植酸酶可以減少磷酸二氫鈣的添加量,從而減少了磷源的浪費,同時降低了磷的排泄量,進(jìn)而減少了磷對水體環(huán)境的污染。

        巴斯德畢赤酵母(Pichia pastoris)表達(dá)系統(tǒng)是目前最優(yōu)秀、應(yīng)用最廣泛的外源基因表達(dá)系統(tǒng)之一。它不但克服了大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)不能表達(dá)結(jié)構(gòu)復(fù)雜的蛋白質(zhì),表達(dá)的蛋白多形成包涵體,背景蛋白多,表達(dá)量不很高等缺陷,還具有與真核生物極其相似的分泌途徑和很強(qiáng)的真核蛋白質(zhì)修飾功能,并且其自身分泌的蛋白質(zhì)很少且易于高密度發(fā)酵,因此,在表達(dá)和分離純化異源蛋白質(zhì)等方面具有很強(qiáng)的優(yōu)勢。本研究主要是對本實驗室保存的畢赤酵母產(chǎn)植酸酶基因工程菌的發(fā)酵工藝條件進(jìn)行優(yōu)化研究,確定產(chǎn)酶的最佳發(fā)酵條件,初步研究酶學(xué)特性,并且投入小規(guī)模的實際應(yīng)用,為今后大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)植酸酶提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 菌種

        巴斯德畢赤酵母基因工程菌,甲醇營養(yǎng)型,由華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院生物化工實驗室保存。

        1.2 培養(yǎng)基

        種子培養(yǎng)基:YPD液體培養(yǎng)基;固體平板培養(yǎng)基:液體YPD培養(yǎng)基加2%瓊脂;搖瓶生長培養(yǎng)基:BMGY;搖瓶甲醇誘導(dǎo)表達(dá)培養(yǎng)基:BMMY;發(fā)酵生長培養(yǎng)基:26.7 ml/l 85%磷酸、0.93 g/l CaSO4·2H2O、18.2 g/l K2SO4·2H2O、14.9 g/l MgSO4·7H2O、7.13 g/l KOH、40 g/l甘油、4.35 ml/l微量元素;補(bǔ)料生長培養(yǎng)基:50%甘油、12 ml/l微量元素;誘導(dǎo)表達(dá)培養(yǎng)基:100%甲醇、12 ml/l微量元素;微量元素:6 g/l CuSO4·5H2O、0.08 g/l NaI、3 g/l MnSO4·H2O、20 g/l ZnSO4·7H2O、65 g/l FeSO4·7H2O、0.5 g/l CoCl2·6H2O、0.02 g/l硼酸、5 ml/l濃硫酸(上述培養(yǎng)基均按“Invitrogen Pichia Fermentation Process Guidelines”推薦方法配制)。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 搖瓶發(fā)酵

        將菌種接于YPD平板,30℃培養(yǎng)2 d,4℃保藏;在平板上挑取單菌落接種至液體100 ml YPD中,28~30℃、250~300 r/min搖至菌體濃度OD600=2~6(對數(shù)生長,大約16~18 h);按10%接種量接種100 ml BMGY搖瓶中,28~30℃、250~300 r/min培養(yǎng)18~24 h;室溫1 500~3 000 g離心5 min收集細(xì)胞,去除上清,用相同體積BMMY重懸細(xì)胞,進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),加蓋兩層滅菌紗布或干酪包布,放入搖床28℃中繼續(xù)生長。每隔24 h,加入甲醇至終濃度為1%以繼續(xù)誘導(dǎo)。檢查培養(yǎng)基的量,確保正確加入甲醇,因為蒸發(fā)作用會減少培養(yǎng)基的體積,誘導(dǎo)72 h后取樣測酶活力。

        1.3.2 發(fā)酵罐發(fā)酵

        種子制備:從YPD平板挑取單菌接種到100 ml種子培養(yǎng)基中,28~30℃、250~300 r/min培養(yǎng)16~18 h,做為一級種子;按10%接種量接入200 ml種子培養(yǎng)基中,28~30℃、250~300 r/min培養(yǎng)24 h,做為二級種子。

        發(fā)酵罐準(zhǔn)備:30 L發(fā)酵罐中,裝入發(fā)酵生長培養(yǎng)基,按10%接種量將二級種子接種在28℃進(jìn)行菌體生長培養(yǎng),培養(yǎng)20 h,以18 ml/(L·h)流加50%甘油作為碳源補(bǔ)加4 h,使菌體達(dá)到一定的濃度,通過流加甲醇的補(bǔ)料方式,維持DO≥20%并且在26℃下進(jìn)行誘導(dǎo)產(chǎn)酶。pH值用氨水和磷酸調(diào)節(jié)。每隔4~6 h取1 ml培養(yǎng)基至1~5 ml離心管,室溫用水平離心機(jī)最大轉(zhuǎn)速離心2~3 min。這些樣品用于分析表達(dá)水平及確定誘導(dǎo)后收集細(xì)胞的最佳時間。

        1.3.3 酶活測定方法

        酶活定義:樣品在植酸鈉濃度為5.0 mmol/l,溫度37℃,pH值5.50的條件下,每分鐘從植酸鈉中釋放1 μmol無機(jī)磷,即為一個植酸酶活性單位,以U表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 發(fā)酵條件的優(yōu)化

        2.1.1 甲醇添加量對表達(dá)量的影響

        將10 ml菌液接入100 ml生長培養(yǎng)基BMGY中培養(yǎng)24 h,離心后將菌體轉(zhuǎn)入相同體積含有甲醇百分比濃度分別為 0.5%、1%、1.5%、2%的誘導(dǎo)培養(yǎng)基BMMY上進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),24 h后補(bǔ)加相同濃度的甲醇,誘導(dǎo)培養(yǎng)72 h后產(chǎn)酶結(jié)果如圖1。由圖1可以看出,甲醇百分比濃度為1.5%時酶活力達(dá)到最高,但甲醇濃度較高,達(dá)到2%時,酶活力開始下降。在重組畢赤酵母的高密度發(fā)酵中,控制適宜的甲醇濃度十分重要。甲醇濃度過低,AOX1啟動子不能有效啟動,外源基因則不能高效轉(zhuǎn)錄;甲醇濃度過高,會對細(xì)胞產(chǎn)生毒害。因此,甲醇濃度是實現(xiàn)外源蛋白高水平表達(dá)的保證。

        2.1.2 誘導(dǎo)溫度對表達(dá)量的影響

        將10 ml菌液接入100 ml生長培養(yǎng)基BMGY中培養(yǎng)24 h,離心后將菌體轉(zhuǎn)入相同體積含有1%甲醇誘導(dǎo)培養(yǎng)基 BMMY 中,分別在 22、26、30、34 ℃的條件下誘導(dǎo)培養(yǎng)72 h后產(chǎn)酶結(jié)果如圖2。由圖2可以看出,采用不同的溫度進(jìn)行蛋白誘導(dǎo)時,在22℃時酶活偏低,原因可能是溫度過低,抑制了細(xì)胞的活性,但26℃和30℃相比,溫度越低越有利于目的蛋白的表達(dá),原因可能是低溫有利于降低蛋白合成速率與新生成肽鏈的折疊速率,低的蛋白合成速率及折疊速率有利于新生肽鏈的正確折疊。

        2.1.3 生長時間對表達(dá)量的影響

        將10 ml菌液分別接入100 ml生長培養(yǎng)基BMGY 中分別培養(yǎng) 18、20、22、24、26、28 h,離心后將菌體轉(zhuǎn)入制好的甲醇濃度1%的相同體積培養(yǎng)基BMMY中條件下誘導(dǎo)72 h后產(chǎn)酶結(jié)果如圖3。由圖3可以看出,在生長20 h后進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)植酸酶酶活力較高,24 h后酶活力呈現(xiàn)下降趨勢,原因可能是因為誘導(dǎo)前菌種處于平穩(wěn)期中后期,細(xì)胞的產(chǎn)酶能力減弱。

        圖1 甲醇濃度對植酸酶表達(dá)的影響

        圖2 誘導(dǎo)溫度對植酸酶表達(dá)的影響

        圖3 生長時間對植酸酶表達(dá)的影響

        2.1.4 發(fā)酵時間對表達(dá)量的影響

        從發(fā)酵開始,每隔4 h,取發(fā)酵液樣品測其OD600值和濕重,以最大轉(zhuǎn)速離心2~3 min,保留上清液,發(fā)酵結(jié)束后測其植酸酶酶活大小,結(jié)果見圖4。由圖4可知,細(xì)胞在培養(yǎng)20 h后,進(jìn)入對數(shù)生長期,經(jīng)過4 h的補(bǔ)加甘油后,菌體密度迅速增加達(dá)到OD600=173,實現(xiàn)高密度發(fā)酵,在24 h,以4 ml/(L·h)的甲醇流加速度進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),由圖4可以看出,發(fā)酵24~108 h(誘導(dǎo)時間0~84 h)酶活逐漸呈上升趨勢,發(fā)酵108 h(誘導(dǎo)時間84 h)后,雖然菌體濃度一直增大,但酶活力開始下降。隨著時間的延長,植酸酶表達(dá)水平開始下降。原因有兩點:隨著細(xì)胞的生長,細(xì)胞同時也會分泌大量的蛋白酶,表達(dá)外源細(xì)胞被水解;二是隨著發(fā)酵時間延長,受發(fā)酵條件的限制,菌體進(jìn)入平穩(wěn)期后期,表達(dá)蛋白的能力逐漸喪失。

        圖4 發(fā)酵時間對植酸酶表達(dá)及菌體生長的影響

        2.1.5 流加甲醇補(bǔ)料策略對表達(dá)量的影響

        在誘導(dǎo)補(bǔ)加甲醇期間,分別采用不同的補(bǔ)料流加策略——甲醇: 甘油為4:0、5:0、5:1、5:2、6:0,其他條件一致的情況下,結(jié)果如圖5。由圖5可知,隨著甲醇和甘油的流加速度增大,菌體濃度OD600不斷升高,在甲醇流加速度高于5 ml/(L·h)后,菌體濃度開始下降,溶氧(DO)逐漸變大,說明此時甲醇在發(fā)酵液中開始積累,對細(xì)胞的生長產(chǎn)生抑制作用。在誘導(dǎo)階段混合流加碳源過程中,甘油流速超過1 ml/(L·h)時,酶活力開始下降,但菌體濃度還是持續(xù)上升,說明甘油在發(fā)酵液中作為第一碳源首先被利用,對甲醇的誘導(dǎo)作用形成抑制。因此,該結(jié)果表明,最佳的誘導(dǎo)補(bǔ)料策略是混合碳源補(bǔ)料,并且甲醇:甘油為5:1。

        2.1.6 誘導(dǎo)pH值對表達(dá)量的影響

        用氨水和磷酸調(diào)節(jié)誘導(dǎo)期的pH值,取不同水平為 5.5、5.0、4.5、4.0、3.5,其他條件一致。結(jié)果如圖 6。由圖6可知,隨著誘導(dǎo)期pH值的變小,菌體濃度OD600也不斷降低,但是酶活力的曲線呈先增大后變小的趨勢,說明在pH值為4.0~5.0之間,較低的pH值不適合細(xì)胞生長,但有利于植酸酶的表達(dá),原因是誘導(dǎo)劑甲醇對細(xì)胞有一定的毒性,不利于高密度的發(fā)酵,但是低pH值抑制了蛋白酶的活性,提高了單位酶活力。在pH值低于4.0的情況下,由于細(xì)胞總濃度的偏低,導(dǎo)致了單位酶活的降低,pH值為4.0時的植酸酶活性比pH值為4.5時的植酸酶活性提高了近20%,因此,既利于生長又利于植酸酶表達(dá)的pH值為4.0左右。

        圖5 甲醇補(bǔ)料策略對植酸酶表達(dá)及菌體生長的影響

        圖6 誘導(dǎo)pH值對植酸酶表達(dá)及菌體生長的影響

        2.2 植酸酶的酶學(xué)特性及制備

        2.2.1 植酸酶的最適pH值和溫度耐受性

        將產(chǎn)酶菌種誘導(dǎo)84 h后,取培養(yǎng)液離心,上清液進(jìn)行酶活性檢測。酶活檢測底物為植酸鈉,用一系列緩沖溶液配制,pH值范圍為3~10,結(jié)果如圖7所示,植酸酶在pH值3~6之間能保持55%以上的活力,pH值為5時,酶活力最高。植酸酶在最適pH值下,活性中心的各個氨基酸殘基側(cè)鏈質(zhì)子化或去質(zhì)子化解離較容易,使得催化反應(yīng)能迅速、高效進(jìn)行。過酸或過堿都會對酶活性中心氨基酸殘基側(cè)鏈的解離程度造成影響,阻礙反應(yīng)的順利進(jìn)行。

        分別將酶液在50~90℃條件下進(jìn)行10 min耐熱性處理后進(jìn)行酶活性檢測,如圖8。由圖8可以發(fā)現(xiàn),在50~70℃內(nèi)酶活力逐漸下降,而在70~90℃酶活力開始上升,并且在90℃時能保持75%的酶活力,具有良好的高溫耐熱性。飼料加工需經(jīng)過制粒工藝,在制粒過程中有一個短暫的高溫過程,一般的植酸酶活性在此高溫下大幅度地不可逆喪失,所以飼料中真正得到推廣利用的植酸酶必須具有良好的熱穩(wěn)定性。

        圖8 不同溫度下植酸酶的耐熱性能

        2.2.2 不同濃縮方法對植酸酶活力的影響

        硫酸銨沉淀法:取酶液,緩慢加入研磨的硫酸銨粉末,邊加邊攪拌,待硫酸銨全部溶解后繼續(xù)攪拌10~15 min,使硫酸銨的飽和度分別達(dá)到20%、30%、40%、50%、60%,10 000 r/min離心 20 min,沉淀用適量乙酸緩沖液溶解后,測其植酸酶酶活,酶活損失都在50%以上。

        超濾法:將發(fā)酵后的液體用水平離心機(jī),4℃、11 000~12 000 r/min離心10~15 min后,取上清液,經(jīng)過30 kD的膜包超濾濃縮,工藝流程如圖9。超濾后的酶液體積為超濾前的1/10,單位酶活提高了大約9倍,損失率小于10%。

        圖9 植酸酶后處理工藝流程

        2.2.3 不同穩(wěn)定劑對植酸酶穩(wěn)定性的影響

        將金屬離子、陰離子、多糖、多元醇和表面活性劑等復(fù)合穩(wěn)定劑處理濃縮后的植酸酶并進(jìn)行飼料加工。分別將未處理和處理后獲得的飼料放在編織袋中,取剛加工后、保存1個月及2個月后飼料中的樣品檢測植酸酶的活性,與加入飼料前測定的活性比為其在飼料中保存的活性存留率,結(jié)果如圖10所示,添加穩(wěn)定劑可增加植酸酶的穩(wěn)定性,保存2個月后酶活存留率仍有50%以上。鹽的添加能顯著改善酶的穩(wěn)定性,鹽類主要存在離子鍵作用,當(dāng)酶的活性中心含有離子作為配位體時,鹽離子就能穩(wěn)定酶的構(gòu)象并且可作為水分子的替代物占據(jù)水的位置,排除自由水對酶造成的不穩(wěn)定化影響。而多羥基化合物既可通過氫鍵與酶蛋白表面分子相連結(jié),也能通過氫鍵有效地與外部水分子相連結(jié),使酶蛋白分子穩(wěn)定。

        圖10 復(fù)合穩(wěn)定劑對植酸酶穩(wěn)定性的影響

        2.3 植酸酶在草魚養(yǎng)殖中的應(yīng)用

        酶液經(jīng)濃縮,添加穩(wěn)定劑后投入小規(guī)模養(yǎng)殖實驗。采用初始平均體重5.3 g的草魚作為實驗對象,平行實驗3組,每缸30尾,實驗時間56 d,根據(jù)表1的配方對比本實驗植酸酶的實際應(yīng)用價值,由圖11可知,本實驗室植酸酶添加量0.08%時,單尾平均增重率達(dá)到75%,添加磷酸二氫鈣1.5%,單尾平均增重率76%,基本可以完全替代磷酸二氫鈣,但需進(jìn)一步放大實驗確定。

        表1 飼料配方(%)

        圖11 不同配方對單尾平均增重率的影響

        3 結(jié)論

        發(fā)酵條件主要包括培養(yǎng)基、接種量、pH值、培養(yǎng)溫度、溶氧、甲醇濃度、誘導(dǎo)時間等,本研究以該菌株在搖瓶發(fā)酵條件優(yōu)化為前提的基礎(chǔ)上,在30 L發(fā)酵罐中進(jìn)行放大優(yōu)化實驗得到最佳發(fā)酵條件為:生長時間20h、甲醇流加速度 5 ml/(L·h)、誘導(dǎo)期甘油流速1 ml/(L·h)、誘導(dǎo)pH值4,誘導(dǎo)時間84 h、誘導(dǎo)溫度26℃,酶活力可達(dá)到454 U/ml,比未優(yōu)化前提高289%。初步對酶學(xué)性質(zhì)研究表明該酶的pH作用范圍為3~6,并且在90℃處理后,仍然可以保持75%的活性,具有一定的耐熱性。

        酶液經(jīng)過超濾濃縮損失率小于10%,加入復(fù)合穩(wěn)定劑投入飼料加工后酶活存留率大于60%,保存2個月仍有50%以上,投入到草魚養(yǎng)殖實際的應(yīng)用中,得到結(jié)果當(dāng)添加比率為0.08%時基本可以完全替代磷酸二氫鈣,說明本實驗室畢赤酵母工程菌具有大規(guī)模生產(chǎn)應(yīng)用的前景。

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