何長倫 王壽明 鄭紀山 張益紅 唐雨德
HBV是一種具有包膜的雙鏈DNA病毒,一般認為其非直接致細胞病變,HBV感染引發(fā)的急、慢性肝炎是人體免疫系統(tǒng)在清除HBV感染的過程中對肝細胞破壞的表現(xiàn)[1]。在免疫系統(tǒng)清除肝細胞中HBV時起核心作用的是HBV特異性細胞毒性T淋巴細胞(CTL,即為活化的CD8+T細胞)。在對慢性HBV感染者的一些研究中,由于樣本量和研究方法的不同,研究者發(fā)現(xiàn)HBV特異性CTL在抗病毒方面的作用的結(jié)果不盡相同[1~3],表明慢性乙型肝炎免疫發(fā)病機理的復(fù)雜性。由于HBV宿主范圍窄,難以建立合適的HBV感染動物模型,體外建立HBV抗原特異性CTL克隆成為研究病毒與宿主免疫反應(yīng)的重要方法之一。我們采用HLA-A限制性表位肽刺激和有限稀釋法,建立了慢性乙型肝炎患者外周血特異性T細胞克隆,并對所獲得的細胞克隆的特性進行了分析。
一、病人 男性慢性乙型肝炎患者,40歲。診斷依據(jù)中華醫(yī)學(xué)會傳染病與寄生蟲病學(xué)分會和肝病學(xué)分會2000年聯(lián)合修訂的《病毒性肝炎防治方案》。血清 HBsAg、抗-HBe、抗-HBc陽性以及HBV DNA陽性,抗-HAV-IgM、抗-HCV、抗-HEV以及抗-HIV均為陰性。未進行抗病毒治療。
二、主要試劑 RPMI-1640培養(yǎng)基(Gibco公司),HLA-A位點高分辨分型試劑盒(PEL-FREEZ公司),絲裂霉素C(MMC,Sigma公司),重組人白介素-2(rhIL-2,R&D公司),重組乙型肝炎核心抗原(rHBcAg,Prospec公司),乳酸脫氫酶(LDH)細胞毒檢測試劑盒(Promega公司),流式細胞儀(FACS Calibur,美國BD公司),鼠抗人CD8-PE和CD3-FITC(深圳晶美生物公司),鼠抗人CD4-FITC、抗IFN-γ-FITC/抗IL-4-FITC 單克隆抗體(Mabtech公司)。
三、人白細胞相關(guān)抗原A位點(HLA-A)高分辨檢測 采用序列特異性引物聚合酶鏈反應(yīng)(PCRSSP)分型技術(shù)。簡要步驟如下:取EDTA抗凝血2ml,過柱吸附法提取DNA,PCR擴增。擴增產(chǎn)物電泳后在紫外透射儀下觀察結(jié)果并照相。應(yīng)用PEL-FREEZ SSP分析軟件判斷結(jié)果。
四、抗原肽合成 經(jīng)上述方法測得該例患者的HLA-A等位基因為2402/—。選擇并合成HBV核心(HBc)117-125[4]作為 HLA-A*2402 限制的 CTL 表位肽,長度為9個氨基酸,序列為EYLVSFGVW,由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。經(jīng)高壓液相色譜儀純化后凍干,純度>98%。凍干肽以20mg/ml二甲亞砜溶解,再以1mg/ml用無血清RPMI 1640培養(yǎng)液稀釋,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
五、外周血單個核細胞(PBMC)的制備 取肝素抗凝外周靜脈血4ml,加等量無血清RPMI-1640培養(yǎng)液稀釋混勻,用人淋巴細胞分離液2000rpm/min離心20min,收集PBMC層。用無血清RPMI-1640培養(yǎng)液洗滌、離心3次,作細胞計數(shù)。
六、飼養(yǎng)細胞的制備 自體或異體PBMC用于制備飼養(yǎng)細胞。異體PBMC來自志愿者,未感染過乙型肝炎病毒,為HAL-A*24。調(diào)整細胞數(shù)至1×106/ml,按25μg/ml加 MMC,37℃水浴 40min,使細胞失去增殖能力,用無鈣、鎂Hanks液洗滌2次,去除MMC,備用。
七、抗原肽和rHBcAg刺激PBMC培養(yǎng) 取PBMC 2×106/ml懸于RPMI-1640完全培養(yǎng)液(含2mM L-谷氨酰胺,100U/ml青霉素,100μg/ml鏈霉素,0.1mM HEPES,10%AB型熱滅活人血清)中,加入抗原肽10μg/ml、rHBcAg 1μg/ml。加于 24 孔培養(yǎng)板,1ml/孔。實驗第3天和第10天補加1ml完全培養(yǎng)液,并加入rhIL-2(終濃度10U/ml);第7天換部分液體并加抗原肽、rhIL-2和自體飼養(yǎng)細胞(2×106/孔)。第21天測細胞毒活性并進行克隆化。
八、HBcAg特異性T細胞克隆的建立 采用有限稀釋法,在96孔培養(yǎng)板上分別按1、3個細胞/孔添加上述激活細胞,同時加入抗原肽(1μg/ml)、rhIL-2(100∪/ml)、PHA(1μg/ml) 和異體飼養(yǎng)細胞(2×105/孔)。間隔7天重復(fù)加刺激物和飼養(yǎng)細胞。根據(jù)克隆細胞生長情況擴大培養(yǎng),每3天換部分液體,每10天重復(fù)刺激1次。根據(jù)需要進行亞克隆。對照孔只加異體飼養(yǎng)細胞、rhIL-2和PHA。
九、細胞毒試驗
(1)靶細胞:采用經(jīng)EBV誘導(dǎo)建立的自體B淋巴母細胞系(B-LCL)(建系方法見文獻[5])2×106/ml,與合成的抗原肽10μg混合過夜,洗去游離抗原肽后,即為靶細胞;(2)細胞毒檢測:采用LDH釋放試驗,加靶細胞5000/管,效應(yīng)細胞與靶細胞各50μl混合,低速離心后,在5%CO237℃孵育4h,取上清 50μl加LDH基質(zhì)液50μl,室溫避光育30min,加中止液,在酶標儀測490nm 透光值(A);(3)計算公式:細胞毒活性(%)=(實驗孔A值-效應(yīng)細胞自發(fā)釋放孔A值-靶細胞自發(fā)釋放孔A值)/(靶細胞最大釋放孔A值-靶細胞自發(fā)釋放孔A)×100%
十、流式細胞儀分析
(1)細胞表面標記:克隆細胞經(jīng)PBS洗滌1次,分別與鼠抗人CD3-FITC/CD8-PE/CD4-FITC單克隆抗體室溫避光孵育30min,洗去游離抗體,經(jīng)流式細胞儀分析10000個細胞,分析克隆細胞的表面標記;(2)細胞內(nèi)細胞因子:培養(yǎng)細胞按2μg/ml加入rHBcAg,于 37℃ 5%CO2培養(yǎng) 1h,再按 10μg/1ml加入 BFA,繼續(xù)培養(yǎng)5h,收集細胞,洗滌后經(jīng)固定、破膜,并分別與FITC標記的抗IFN-γ/IL-4室溫避光放置30min,洗去游離抗體后,加2%多聚甲醛500μl,經(jīng)流式細胞儀分析10000個細胞,分析克隆細胞的細胞內(nèi)細胞因子。為避免飼養(yǎng)細胞產(chǎn)生細胞因子的影響,在最后一次添加飼養(yǎng)細胞后至少15天再進行檢測,并以單獨培養(yǎng)的飼養(yǎng)細胞和未染色的克隆細胞作本底對照。
一、HLA-A基因分型結(jié)果 應(yīng)用PCR-SSP分型技術(shù),該例慢性乙型肝炎患者的HLA-A等位基因組合為2402/—(圖1)。根據(jù)文獻報道[4],選擇相應(yīng)的CTL優(yōu)勢表位肽—HBc117-125作為乙型肝炎特異性T細胞株的抗原刺激物,長度為9個氨基酸,序列為EYLVSFGVW。
圖1 慢性乙型肝炎患者HLA-A*2402/—
二、HBc表位特異性CTL的誘生 新鮮分離的PBMC經(jīng)rHBcAg及抗原肽刺激3周后,測得的細胞毒活性為43.7%,提示PBMC中的表位特異性CD8+被激活。
三、T細胞克隆的建立及細胞表面標記分析 將抗原肽激活的PBMC通過有限稀釋法進行克隆化,獲得了11個細胞克?。▓D2),克隆形成率為11.4%(11/96),以飼養(yǎng)細胞作對照的20個孔中無細胞生長。經(jīng)熒光抗體染色和流式細胞儀分析,在11個克隆細胞株中9株為CD3+/CD4-/CD8+T細胞株,CD3表達率為90.2%~97.6%,CD8表達率為87.3%~92.2%,CD4表達率為1.4%~4.6%;另2株為CD3+/CD4+/CD8-T細胞株。
圖2 生長14天的細胞克隆
四、細胞內(nèi)細胞因子情況 在9株CD8+T細胞克隆株中有2株僅表達IFN-γ(Tc1),4株表達IFN-γ和IL-4(Tc0),3 株僅表達 IL-4(Tc2)。2 株 CD4+T 細胞克隆均同時表達IFN-γ和IL-4(Th0)。
五、CD8+T細胞克隆的特異性細胞毒活性 分別采用效靶比例為 1:1,2.5:1 和 5:1,結(jié)果見圖 3。
圖3 CD8+T細胞克隆的特異性細胞毒活性
在急性HBV感染者能檢出對HBV多種抗原強烈的特異性CTL反應(yīng),其特異性細胞毒反應(yīng)可達40%~80%,而在慢性乙型肝炎則不然,特異性細胞毒反應(yīng)往往低于20%[6]。但在某些能夠自然清除HBeAg或/和HBsAg的慢性感染者以及慢性乙型肝炎急性發(fā)作或稱為肝炎突發(fā)(hepatitis flares)狀態(tài)的患者,其HBV特異性CTL的數(shù)量增多,特異性細胞毒反應(yīng)也有升高[6,7]。本文在1例慢性乙型肝炎突發(fā)患者[8],就診時ALT達正常10倍以上,入院后病情趨于好轉(zhuǎn),ALT下降,但始終未達正常,HBV DNA表現(xiàn)為低水平復(fù)制(2×105copies/ml),HBsAg陽性,HBeAg陰性。取患者急性發(fā)作期的PBMC在經(jīng)表位肽刺激后,對結(jié)合有表位肽的靶細胞的細胞毒活性達到43.7%,與文獻報道相似[6],提示特異性CTL活性增高與慢性乙型肝炎急性發(fā)作有關(guān)。
特異性CD8+T細胞的激活及其生物學(xué)效應(yīng)的產(chǎn)生受到HLA-I,特別是HLA-A的限制。在近年來發(fā)現(xiàn)的HBV特異性CTL識別的諸多表位中,絕大部分是HLA-A2限制的,對HLA-A2陽性HBV感染者特異性 CTL 的研究報道也較多[6,9,10]。HLA-A*2402 是我國常見的等位基因型之一,但關(guān)于該基因型的HBV特異性 CTL 的報道較少[2,3,11]。本實驗中 HBV 感染者為HLA-A*2402/-,所選刺激抗原必須是HLA-A*2402限制的CTL表位。中國人群流行的乙型肝炎基因型(B型和C型)與歐美流行株不同,故以國外文獻報道的HBV的CTL表位氨基酸序列作參照序列,國內(nèi)李曉東等[12]發(fā)現(xiàn) HBV特異性CTL表位氨基酸序列變異發(fā)生頻率較高,其中作為HLA-A*2402限制性表位的HBc23-31在B型和C型的變異發(fā)生率分別達到31%和16%,而HBc117-125則未見變異發(fā)生。據(jù)此,我們選擇了HBc117-125作為本實驗研究中的CTL激活抗原。實驗中HBc117-125能夠激活PBMC中的CTL,并在隨后的細胞毒試驗中得以證實,該結(jié)果進一步表明HBc117-125是HLA-A*2402限制的CTL特異性優(yōu)勢表位。
有限稀釋法常被用于CTL前體細胞或記憶細胞的頻數(shù)分析(有限稀釋分析,LDA)[13],也用于目標細胞的克隆化[14],雖然操作繁瑣,耗時長,卻能有效地獲得高純度的目標細胞群。我們應(yīng)用該法獲得11株能持續(xù)培養(yǎng)的T細胞克隆,克隆率為11.4%。在9株CD8+T克隆均具有細胞毒活性,其中2個Tc1型克隆細胞株的細胞毒活性(85.4%,90.2%,效靶比例為2.5:1)高于Tc0/Tc2株(39.1%~60.4%)。該結(jié)果是Tc亞型的特點還是僅為所建克隆株的特點,由于細胞株較少,有待在今后的研究中進一步觀察。
與有些報道采用HLA-I部分匹配的異體B-LCL作靶細胞不同[6],本實驗采用自體B-LCL作靶細胞,因此是HLA-I完全匹配的。在實驗中我們也曾采用異體B-LCL作靶細胞,HLA-A基因組合為2403/2409,細胞溶破率低于用自體B-LCL作靶細胞的結(jié)果,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(資料未列出)。
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