【摘 要】目的:研究流式細(xì)胞術(shù)細(xì)胞珠陣列(cytometric bead array,CBA)法檢測膿毒癥患者人細(xì)胞因子譜表達(dá)水平,探討并比較各細(xì)胞因子在膿毒癥患者早期診斷及預(yù)測死亡風(fēng)險(xiǎn)中的臨床應(yīng)用價(jià)值。方法:納入256例ICU膿毒癥患者,99例健康體檢者和99例ICU非膿毒癥患者,流式細(xì)胞術(shù)CBA法檢測入組人群入院當(dāng)天血漿IL-2、IL-4、IL-6、IL-10、TNF-α和IFN-γ的水平。Spearman及R語言Mantel檢驗(yàn)分別用于常規(guī)相關(guān)性分析和指標(biāo)集合間的相關(guān)性分析,構(gòu)建受試者工作特征曲線(receiveroperating characteristic,ROC)曲線,評估并比較人細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子對膿毒癥患者早期診斷及預(yù)估死亡風(fēng)險(xiǎn)的應(yīng)用價(jià)值。結(jié)果:膿毒癥患者血漿人細(xì)胞因子譜中IL-6、IL-10水平明顯高于健康對照及ICU非膿毒癥患者。IL-6的早期膿毒癥診斷ROC曲線下面積(area under curve,AUC)為0.868(Plt;0.000 1,95%CI=0.835~0.901),IL-10為0.831(Plt;0.000 1,95%CI=0.793~0.869)。Mantel檢驗(yàn)指標(biāo)集合間的相關(guān)性分析顯示:在膿毒癥患者死亡組中,IL-6與CRP呈顯著相關(guān)性(r=0.101,P=0.001),IL-10與NEUT呈顯著相關(guān)性(r=0.132,P=0.001)。人細(xì)胞因子譜中的各細(xì)胞因子預(yù)測28 d死亡率的AUC均低于0.70。結(jié)論:使用流式細(xì)胞術(shù)CBA法檢測人細(xì)胞因子在膿毒癥早期診斷中表現(xiàn)出不同的效力。IL-6和IL-10能為膿毒癥的早期臨床診斷提供證據(jù),但在預(yù)估死亡風(fēng)險(xiǎn)方面與其他因子效力相當(dāng)。
【關(guān)鍵詞】細(xì)胞因子譜;膿毒癥預(yù)后;白介素-6;白介素-10;生物標(biāo)志物
【中圖分類號】R473.72 【文獻(xiàn)標(biāo)志碼】A 【收稿日期】2024-07-15
膿毒癥被定義為由宿主對抗感染反應(yīng)失衡引起的危及生命的器官功能障礙,可導(dǎo)致死亡[1-4]。它也是重癥監(jiān)護(hù)病房(intensive care unit,ICU)患者死亡的主要原因[5]。膿毒癥已成為全球面臨的嚴(yán)峻衛(wèi)生問題[6],WHO已將其列為影響全球健康的重要疾病[7]。2017年初步數(shù)據(jù)顯示全球約4 890萬例新發(fā)膿毒癥病例,報(bào)告死亡人數(shù)為110萬[6]。膿毒癥患者死亡率高達(dá)16.67%~33.33%[5,8-9]。2021年國際膿毒癥和膿毒癥休克管理指南再次修訂,以指導(dǎo)成年膿毒癥及膿毒性休克患者的管理,它特別強(qiáng)調(diào)早期診斷的重要性以及適當(dāng)使用抗生素和對器官功能支持治療的必要性[9]。盡早識別和適當(dāng)?shù)闹委煷胧τ诟纳颇摱景Y患者的預(yù)后至關(guān)重要[9-11]。
膿毒癥免疫機(jī)制是機(jī)體在抗感染過程中,過度炎癥與抗炎反應(yīng)在宿主體內(nèi)的平衡發(fā)生紊亂,形成以過度炎癥和免疫抑制為特征的綜合征。檢測炎性及抗炎細(xì)胞因子有助于早期識別膿毒癥,也有助于評估膿毒癥患者的預(yù)后。以往研究主要采用ELISA檢測各種炎性標(biāo)志物,包括抗炎細(xì)胞因子及趨化因子,如IL-2、IL-4、IL-6、TNF-α、IFN-γ和IL-10,用于膿毒癥的診斷或預(yù)后監(jiān)測[12-18]。然而,ELISA方法繁瑣、耗時(shí),且不適合膿毒癥患者的急診檢測。相比之下,流式細(xì)胞術(shù)在細(xì)胞因子檢測方面展現(xiàn)出顯著的靈敏度,其檢測結(jié)果與ELISA相關(guān)性超過90%[19]。目前,細(xì)胞珠陣列(cytometric bead array,CBA)、Luminex技術(shù)、電化學(xué)發(fā)光等廣泛用于細(xì)胞因子的多因素分析[19]。流式細(xì)胞術(shù)CBA 法已成為檢測人類細(xì)胞因子特征的有效方法,在各種疾病的臨床和輔助診斷中得到了很好應(yīng)用[20-22]。已有文獻(xiàn)報(bào)告,在感染革蘭陰性細(xì)菌的兒科血液患者中,IL-6、TNF-α和IL-10顯著升高[23]。也有研究表明細(xì)胞因子在識別兒童革蘭陰性細(xì)菌方面的優(yōu)缺點(diǎn)[20],然而,針對膿毒癥患者細(xì)胞因子譜中各因子對膿毒癥診斷的優(yōu)勢進(jìn)行比較的研究甚少,且利用流式細(xì)胞術(shù)CBA方法檢測細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子預(yù)測膿毒癥患者死亡風(fēng)險(xiǎn)的效力也尚未被深入研究。本研究旨在檢測膿毒癥患者人細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子的水平,并比較其在膿毒癥診斷及死亡風(fēng)險(xiǎn)預(yù)測中的應(yīng)用價(jià)值。
1 材料與方法
1.1 研究隊(duì)列
1.1.1 研究隊(duì)列和分組
根據(jù)Sepsis-3 的診斷標(biāo)準(zhǔn),納入2019年6月至2022年10月四川省人民醫(yī)院ICU、急診ICU和老年ICU住院成人膿毒癥患者256例,納入同期99例年齡及性別匹配的非膿毒癥ICU患者作為非膿毒癥對照組,并納入99例體檢人群作為健康對照組。99例非膿毒癥患者入住ICU的原因,見圖1。本研究遵循《赫爾辛基宣言》的原則進(jìn)行。所有受試者的研究均獲得四川省人民醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)(NO:2019-309,2021-521),并征得患者的知情同意。
1.1.2 納入標(biāo)準(zhǔn)和排除標(biāo)準(zhǔn)
納入標(biāo)準(zhǔn):按照膿毒癥-3診斷標(biāo)準(zhǔn)納入實(shí)驗(yàn)組。SEPSIS-3診斷標(biāo)準(zhǔn)定義為:入院時(shí)懷疑感染且SOFA評分≥2分。膿毒癥休克定義為:在符合膿毒癥診斷標(biāo)準(zhǔn)的患者,且SOFA評分≥3分,乳酸水平≥2 mmol/L,以及需要使用血管升壓藥物者。
排除標(biāo)準(zhǔn):年齡lt;18歲者;自身免疫性疾病、HIV感染、器官移植、惡性腫瘤或2周內(nèi)使用免疫抑制劑者。
1.2 流式細(xì)胞法檢測細(xì)胞因子
研究人群采集外周靜脈全血5 mL,肝素抗凝,低溫3 500 r/min離心20 min分離血漿,細(xì)胞因子檢測采用人TH1/TH2亞群檢測試劑盒(流式熒光法,試劑廠家:江西賽基)于貝克曼庫爾特NAVIOS 血液流式細(xì)胞分析儀上進(jìn)行IL-2、IL-4、IL-6、IL-10、TNF-α和IFN-γ含量檢測。操作過程嚴(yán)格依照試劑使用說明進(jìn)行。特別說明的是在測定開始前,準(zhǔn)備陰性對照品和相應(yīng)濃度稀釋的標(biāo)準(zhǔn)品,用于標(biāo)準(zhǔn)曲線的校準(zhǔn)和線性驗(yàn)證。將標(biāo)準(zhǔn)微球混合后重懸(去除上清后與血清增強(qiáng)緩沖液混合),并加入相應(yīng)檢測管,孵育150 min,1 mLPBS清洗后300 μL PBS重懸上機(jī)。對于細(xì)胞因子濃度高的(gt;5 000 pg/mL)樣品,用樣品稀釋液稀釋樣品以獲得所需的稀釋后濃度。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
非正態(tài)分布數(shù)據(jù)以中位數(shù)和四分位數(shù),即[Md(P25,P75)]表示。使用Mann-Whitney U 檢驗(yàn)分析組間差異,常規(guī)相關(guān)性分析及指標(biāo)集合間的相關(guān)性分析分別應(yīng)用Spearman及R語言中的Mantel檢驗(yàn)進(jìn)行。構(gòu)建受試者工作特征(receiveroperating characteristic,ROC)曲線,確定每個(gè)指標(biāo)的ROC曲線下面積,并計(jì)算最佳截?cái)帱c(diǎn)、靈敏度(SE)和特異性(SP),評估每個(gè)指標(biāo)在膿毒癥患者中的診斷和預(yù)測死亡的價(jià)值。使用Graph Pad Prism 7.0系統(tǒng)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析和圖表繪制。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。指標(biāo)集合之間的相關(guān)性分析通過R語言中的Mantel檢驗(yàn)繪圖,以Plt;0.05為有相關(guān)性。
2 結(jié)果
2.1 患者臨床基本特征
本研究共入組454例個(gè)體,其中包括256例成人膿毒癥患者、99例ICU非膿毒癥患者及99例健康體檢者。 研究隊(duì)列基本人口統(tǒng)計(jì)和臨床特征,見表1。
2.2 膿毒癥患者血漿人細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子水平
膿毒癥患者血漿IL-6、IL-10、IL-2、IL-4、TNF-α 和IFN-γ的中位水平分別為119.7(29.76,1402.00) pg/mL、11.2(3.11,55.94) pg/mL、0.520(0.01,1.34) pg/mL、0.245(0.01,1.55) pg/mL、0.355(0.01,1.94) pg/mL和1.0(0.01,3.02) pg/mL。非膿毒癥ICU組的中位水平分別為21.91(6.15,66.99) pg/mL、2.90(0.70,8.38) pg/mL、0.14(0.01,1.23) pg/mL、0.10(0.01,1.16) pg/mL、0.10(0.01,1.34) pg/mL和0.80(0.04,2.51) pg/mL。正常對照組中IL-6 和IL-10 的中位水平均為0.10 pg/mL、0.09 pg/mL。膿毒癥患者的IL-6和IL-10水平明顯高于健康對照組和非膿毒癥ICU患者。膿毒癥患者的TNF-α、IFN-γ、IL-2 和IL-4 水平明顯高于健康對照組(Plt;0.05),但與ICU非膿毒癥患者比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見圖2。
2.3 人細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子對膿毒癥患者早期診斷的應(yīng)用價(jià)值
執(zhí)行ROC曲線以探索膿毒癥患者人細(xì)胞因子譜中各參數(shù)的早期診斷價(jià)值,IL-2 的ROC 曲線下面積(area undercurve,AUC)為0.643 [Plt;0.000 1,95%置信區(qū)間(CI):0.593~0.694],IL-4為0.629(Plt;0.000 1,95%CI=0.578~0.680),IL-6為0.868(Plt;0.000 1,95%CI=0.835~0.901),IL-10為0.831(Plt;0.000 1,95%CI=0.793~0.869),TNF-α 為0.655(Plt;0.000 1,95%=CI=0.605~0.705),IFN-γ 為0.641(Plt;0.000 1,95%CI=0.591~0.692)(圖3)。在6種細(xì)胞因子中,僅IL-6和IL-10的AUC 值超過0.8。IL-6 和IL-10 的靈敏度和特異性分別為91.02%和87.5%,以及67.68%和66.67%,見表2。
2.4 膿毒癥患者血漿細(xì)胞因子譜中IL-6和IL-10的相關(guān)性分析
為了了解膿毒癥患者人細(xì)胞因子譜中IL-6與IL-10的相關(guān)性,對其進(jìn)行了Spearman 相關(guān)性分析,結(jié)果顯示膿毒癥患者的IL-6與IL-10呈正相關(guān)(rs=0.636 4,Plt;0.000 1),見圖4。
2.5 膿毒癥患者細(xì)胞因子譜中各因子與部分炎性指標(biāo)的相關(guān)性分析
Mantel檢驗(yàn)顯示膿毒癥患者細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子與部分炎性指標(biāo)之間的相關(guān)性(圖5,表3)。256例膿毒癥患者中,入院28 d 146例存活,110例死亡,膿毒癥患者28 d死亡率為42.97%(110/256)。在膿毒癥患者生存組中,IL-6與其他因素(IL-2、IL-4、TNF-α和IFN-γ)以及常規(guī)檢測指標(biāo)(WBC、NEUT、CRP 和PCT)之間未觀察到顯著相關(guān)性。然而,僅IL-10與PCT呈相關(guān)性(rs=0.087,P=0.024)。在膿毒癥患者死亡組中,IL-6與CRP(rs=0.101,P=0.001)呈顯著相關(guān);IL-10與NEUT%(rs =0.132,P=0.001)顯著相關(guān),并與PCT(rs=0.087,P=0.024)呈相關(guān),而其他指標(biāo)(IL-2、IL-4、TNF-α 和IFN-γ)與NEUT%的有相關(guān)性(rs=0.092,P=0.025),且與WBC、CRP和PCT僅微弱相關(guān)性。相比其他因子膿毒癥患者血漿人細(xì)胞因子譜中IL-6和IL-10與常規(guī)炎性因子顯示出更高的相關(guān)性。
2.6 膿毒癥患者人細(xì)胞因子譜中各參數(shù)預(yù)測28 d死亡風(fēng)險(xiǎn)的價(jià)值
構(gòu)建ROC曲線以探索人細(xì)胞因子譜中各因子對膿毒癥患者28 d 死亡風(fēng)險(xiǎn)的預(yù)測價(jià)值。IL-2 的ROC 曲線下面積(AUC)為0.611(P=0.002 5,95%CI=0.540~0.681),IL-4 為0.612(P=0.002 2,95%CI=0.542~0.682),IL-6 為0.636(P=0.000 2,95%CI=0.567~0.704),IL-10 為0.632(P=0.001,95%CI=0.562~0.701),TNF-α 為0.608(P=0.003,95%CI=0.538~0.679),IFN- γ 為0.595(P=0.009 2,95%CI=0.525~0.665)(圖6)。IL-6、IL-10、TNF-α、IFN-γ、IL-2 和IL-4 在預(yù)測膿毒癥患者28 d 死亡率的AUC均低于0.7(表4)。
3 討論
膿毒癥的免疫機(jī)制可被看作是炎癥與抗炎反應(yīng)在宿主體內(nèi)的平衡。維持免疫系統(tǒng)的穩(wěn)態(tài)依賴于固有免疫和適應(yīng)性免疫,主要由對某些刺激反應(yīng)的細(xì)胞因子級聯(lián)釋放所調(diào)節(jié)[24]。流式細(xì)胞術(shù)CBA法檢測人細(xì)胞因子譜中各細(xì)胞因子預(yù)測膿毒癥患者結(jié)局的文獻(xiàn)相對甚少。本研究明確了細(xì)胞因子譜中IL-6、IL-10、IL-2、IL-4、TNF-α和IFN-γ對膿毒癥患者診斷價(jià)值各不相同,其中僅IL-6和IL-10的AUC值超過0.8,顯示出顯著的診斷能力。TNF-α、IFN-γ、IL-2和IL-4的診斷有效性相對較低,然而,所有細(xì)胞因子,包括IL-6和IL-10在內(nèi)對膿毒癥患者28 d死亡風(fēng)險(xiǎn)預(yù)測能力均不足,AUC均低于0.70。
前期多項(xiàng)研究探討了細(xì)胞因子對膿毒癥的診斷作用[20-21,25],其中IL-6和IL-10被廣泛認(rèn)為是關(guān)鍵標(biāo)志物。關(guān)于這2種細(xì)胞因子對膿毒癥患者預(yù)后的預(yù)估能力結(jié)果并不一致。隨著流式細(xì)胞術(shù)在臨床的廣泛應(yīng)用,CBA技術(shù)已成為了一種快速且定量分析多種細(xì)胞因子的有效方法,結(jié)果約3 h內(nèi)得到,且所需樣本量小,適合于膿毒癥患者的急診檢測。本研究顯示,膿毒癥患者細(xì)胞因子譜中IL-6濃度顯著升高,這與炎癥、器官損傷以及免疫反應(yīng)相關(guān)。IL-6作為免疫機(jī)制的促進(jìn)因子,主要由巨噬細(xì)胞等免疫細(xì)胞釋放,其通過3種不同信號通路,即經(jīng)典信號、信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和呈遞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)參與免疫防御[26-27]。進(jìn)一步的結(jié)果表明,IL-6的ROC曲線下面積最高,提示其在早期膿毒癥診斷中的應(yīng)用價(jià)值。這些結(jié)果與以往ELISA檢測方法得到的結(jié)果相似[17,25]。有學(xué)者提出通過CBA技術(shù)檢測IL-6是診斷膿毒癥較經(jīng)濟(jì)的檢測方法[28]。此外IL-2、TNF-α、IFN-γ是固有免疫及適應(yīng)性免疫的調(diào)節(jié)因子[29-31]。以往研究表明,干擾素γ在CLP誘導(dǎo)的膿毒癥休克中促進(jìn)炎性反應(yīng),但中和干擾素γ并未改善生存率 [31]。本研究表明IL-2、TNF-α和IFN-γ在膿毒癥患者中的水平高于健康者,但在鑒別膿毒癥與ICU非膿毒癥患者方面能力有限。本研究顯示人細(xì)胞因子譜中IL-10水平明顯高于健康者和ICU非膿毒癥患者,其在膿毒癥診斷中的ROC 曲線位于第二,僅次于IL-6。IL-10作為關(guān)鍵的抗炎細(xì)胞因子,在保護(hù)宿主免受病原體和微生物的過度反應(yīng)中發(fā)揮關(guān)鍵作用[32]。過量釋放的IL-10與膿毒癥細(xì)菌感染相關(guān)的免疫抑制和患者死亡相關(guān)[33]。細(xì)胞因子譜中的抗炎因子還包括IL-4[34]。IL-4通過抑制NFκB活性,下調(diào)單核細(xì)胞分泌炎性因子如TNF-α和IFN-γ[15],減輕細(xì)胞和體液免疫中的炎性反應(yīng)[35]。本研究中IL-4雖在膿毒癥患者入院時(shí)濃度高于健康個(gè)體,但在鑒別膿毒癥與ICU非膿毒癥患者方面能力也有限。
相關(guān)性分析顯示,膿毒癥患者IL-6與部分炎性因子(如WBC、NEUT、CRP和PCT)相關(guān)性較弱,而在非存活組中,IL-6與CRP顯著相關(guān),IL-6和IL-10在人類細(xì)胞因子特征中比其他因素(IL-2、IL-4、TNF-α和IFN-γ)顯示出更強(qiáng)的相關(guān)性。提示死亡膿毒癥患者的炎性反應(yīng)更為嚴(yán)重。本研究證實(shí)了IL-6和IL-10在膿毒癥早期診斷中的重要性。為了進(jìn)一步探討這2種細(xì)胞因子在預(yù)測膿毒癥患者死亡風(fēng)險(xiǎn)中的潛在作用,本課題組構(gòu)建了ROC曲線,以評估人類細(xì)胞因子在該患者群體中對28 d 死亡風(fēng)險(xiǎn)的預(yù)測能力。值得注意的是,包括IL-6和IL-10在內(nèi)的細(xì)胞因子譜中所有因子的AUC 值均低于0.70。這表明,IL-6和IL-10在預(yù)估膿毒癥患者28 d死亡風(fēng)險(xiǎn)時(shí),其預(yù)測能力與其他因素相當(dāng)。這些結(jié)果與使用Luminex檢測方法獲得的早期研究結(jié)果相一致[33]。這些發(fā)現(xiàn)強(qiáng)調(diào)了細(xì)胞因子在預(yù)測膿毒癥患者死亡風(fēng)險(xiǎn)方面的局限性。因此,在臨床實(shí)踐中使用IL-6和IL-10作為預(yù)后指標(biāo)時(shí),應(yīng)保持謹(jǐn)慎,以避免對患者治療產(chǎn)生不準(zhǔn)確的預(yù)測影響。
然而本研究仍然存在局限性,首先,僅納入了6種細(xì)胞因子的進(jìn)行檢測且未對膿毒癥患者的進(jìn)行動態(tài)分析;其次,膿毒癥患者的結(jié)局受多種因素影響。本課題組選擇的研究時(shí)間點(diǎn)是膿毒癥患者入院當(dāng)天,即膿毒癥的早期階段,患者的生存結(jié)局可能會隨疾病進(jìn)展和藥物使用而變化。在未來的研究中仍需考慮更多的影響因素。
4 結(jié)論
本研究表明,流式細(xì)胞術(shù)CBA法檢測膿毒癥患者人細(xì)胞因子顯示出不同的診斷效能。特別是IL-6和IL-10在早期診斷中具有重要價(jià)值。然而,它們在死亡風(fēng)險(xiǎn)預(yù)測方面的能力相對有限,僅為膿毒癥患者的診斷和治療策略提供參考。
參考文獻(xiàn)
[1] Singer M,Deutschman CS,Seymour CW,et al. The third internationalconsensus definitions for sepsis and septic shock(sepsis-3)[J].JAMA,2016,315(8):801-810.
[2] Seymour CW,Liu VX,Iwashyna TJ,et al. Assessment of clinicalcriteria for sepsis:for the third international consensus definitions forsepsis and septic shock(sepsis-3)[J]. JAMA,2016,315(8):762-774.
[3] Hotchkiss RS,Moldawer LL,Opal SM,et al. Sepsis and septicshock[J]. Nat Rev Dis Primers,2016,2:16045.
[4] Cecconi M,Evans L,Levy M,et al. Sepsis and septic shock[J]. Lancet,2018,392(10141):75-87.
[5] Fleischmann-Struzek C,Mellhammar L,Rose N,et al. Incidenceand mortality of hospital- and ICU-treated sepsis:results from an updatedand expanded systematic review and meta-analysis[J]. IntensiveCare Med,2020,46(8):1552-1562.
[6] Rudd KE,Johnson SC,Agesa KM,et al. Global,regional,and nationalsepsis incidence and mortality,1990-2017:analysis for theglobal burden of disease study[J]. Lancet,2020,395(10219):200-211.
[7] Goodman CW,Brett AS. Gabapentin and pregabalin for pain - isincreased prescribing a cause for concern?[J]. N Engl J Med,2017,377(5):411-414.
[8] Chen Y,Ma XD,Kang XH,et al. Association of annual hospitalseptic shock case volume and hospital mortality[J]. Crit Care,2022,26(1):161.
[9] Evans L,Rhodes A,Alhazzani W,et al. Surviving sepsis campaign:international guidelines for management of sepsis and septicshock 2021[J]. Intensive Care Med,2021,47(11):1181-1247.
[10] Peri AM,Harris PNA,Paterson DL. Culture-independent detectionsystems for bloodstream infection[J]. Clin Microbiol Infect,2022,28(2):195-201.
[11] Ferrer R,Martin-Loeches I,Phillips G,et al. Empiric antibiotictreatment reduces mortality in severe sepsis and septic shock from thefirst hour:results from a guideline-based performance improvement program[J]. Crit Care Med,2014,42(8):1749-1755.
[12] Song J,Park DW,Moon S,et al. Diagnostic and prognostic valueof interleukin-6,pentraxin 3,and procalcitonin levels among sepsis andseptic shock patients:a prospective controlled study according to thesepsis-3 definitions[J]. BMC Infect Dis,2019,19(1):968.
[13] Romagnoli C,F(xiàn)rezza S,Cingolani A,et al. Plasma levels of interleukin-6 and interleukin-10 in preterm neonates evaluated for sepsis[J]. Eur J Pediatr,2001,160(6):345-350.
[14] Xie ZH,Lin B,Jia XJ,et al. Enhanced IL-10 inhibits prolifera‐tion and promotes apoptosis of HUVECs through STAT3 signaling pathwayin sepsis[J]. Histol Histopathol,2021,36(11):1179-1187.
[15] Li L,Chen L,Lin F,et al. Study of the expression of inflammatoryfactors IL-4,IL-6,IL-10,and IL-17 in liver failure complicated by coagulationdysfunction and sepsis[J]. J Inflamm Res,2021,14:1447-1453.
[16] Wu HP,Wu CL,Chen CK,et al. The interleukin-4 expression inpatients with severe sepsis[J]. J Crit Care,2008,23(4):519-524.
[17] Feng MC,Sun TT,Zhao YX,et al. Detection of serum interleukin-6/10/18 levels in sepsis and its clinical significance[J]. J Clin LabAnal,2016,30(6):1037-1043.
[18] Gogos CA,Drosou E,Bassaris HP,et al. Pro- versus antiinflammatorycytokine profile in patients with severe sepsis:a markerfor prognosis and future therapeutic options[J]. J Infect Dis,2000,181(1):176-180.
[19] Young SH,Antonini JM,Roberts JR,et al. Performance evaluationof cytometric bead assays for the measurement of lung cytokines intwo rodent models[J]. J Immunol Methods,2008,331(1/2):59-68.
[20] Zhang YY,Li BR,Ning BT. Evaluating IL-6 and IL-10 as rapiddiagnostic tools for Gram-negative bacteria and as disease severity predictorsin pediatric sepsis patients in the intensive care unit[J]. Front Immunol,2022,13:1043968.
[21] Mehra S,Tiwari AK,Aggarwal G,et al. Diagnostic value of differentinterleukins and procalcitonin in critically ill patients admitted withsuspected sepsis[J]. Indian J Pathol Microbiol,2022,65(1):111-116.
[22] Xiang WQ,Li L,Wang BH,et al. Profiles and predictive value ofcytokines in children with human metapneumovirus pneumonia[J]. VirolJ,2022,19(1):214.
[23] Tang YM,Liao C,Xu XJ,et al. Th1/Th2 cytokine profiles in G+/G- bacteremia in pediatric hematology/oncology patients[J]. PediatrBlood Cancer,2012,58(1):50-54
[24] Yang Y,Lundqvist A. Immunomodulatory effects of IL-2 and IL-15;implications for cancer immunotherapy[J]. Cancers,2020,12(12):3586.
[25] Molano Franco D,Arevalo-Rodriguez I,Roqué I Figuls M,et al.Plasma interleukin-6 concentration for the diagnosis of sepsis in criticallyill adults[J]. Cochrane Database Syst Rev,2019,4(4):CD011811.
[26] Kishimoto T. IL-6:from its discovery to clinical applications[J].Int Immunol,2010,22(5):347-352.
[27] Kang SJ,Kishimoto T. Interplay between interleukin-6 signalingand the vascular endothelium in cytokine storms[J]. Exp Mol Med,2021,53(7):1116-1123.
[28] Cook EB,Stahl JL,Lowe L,et al. Simultaneous measurement ofsix cytokines in a single sample of human tears using microparticlebasedflow cytometry:allergics vs. non-allergics[J]. J Immunol Methods,2001,254(1/2):109-118.
[29] Propper DJ,Balkwill FR. Harnessing cytokines and chemokinesfor cancer therapy[J]. Nat Rev Clin Oncol,2022,19(4):237-253.
[30] Alspach E,Lussier DM,Schreiber RD. Interferon γ and its importantroles in promoting and inhibiting spontaneous and therapeutic cancerimmunity[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol,2019,11(3):a028480.
[31] Romero CR,Herzig DS,Etogo A,et al. The role of interferon-γ inthe pathogenesis of acute intra-abdominal sepsis[J]. J Leukoc Biol,2010,88(4):725-735.
[32] Saraiva M,Vieira P,O’Garra A. Biology and therapeutic potentialof interleukin-10[J]. J Exp Med,2020,217(1):e20190418.
[33] Bozza FA,Salluh JI,Japiassu AM,et al. Cytokine profiles asmarkers of disease severity in sepsis:a multiplex analysis[J]. Crit Care,2007,11(2):R49.
[34] Liu D,Huang SY,Sun JH,et al. Sepsis-induced immunosuppression:mechanisms,diagnosis and current treatment options[J]. Mil MedRes,2022,9(1):56.
[35] Zhu JF. T helper 2(Th2) cell differentiation,type 2 innate lymphoidcell(ILC2) development and regulation of interleukin-4(IL-4)and IL-13 production[J]. Cytokine,2015,75(1):14-24.
(責(zé)任編輯:周一青)
基金項(xiàng)目:四川省科技計(jì)劃重點(diǎn)研發(fā)資助項(xiàng)目(編號:2022YFS0238)。