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        HPLC對檳榔鹵水原料飴糖中葡萄糖和麥芽糖的測定

        2024-01-09 11:58:58陳升劉朝來龔卓羅秋鵬尹興筍周春
        食品工業(yè) 2023年12期
        關(guān)鍵詞:飴糖超純水麥芽糖

        陳升,劉朝來 ,龔卓,羅秋鵬,尹興筍,周春

        1.湖南伍子醉實業(yè)集團(tuán)有限公司(湘潭 411228);2.常德市自來水有限責(zé)任公司(常德 415001)

        飴糖,性溫、味甘,為藥食同源之品,應(yīng)用較廣泛,具有非常重要的研究價值[1]。在我國早期飴糖的生產(chǎn)主要是人們利用發(fā)了芽的小麥、大麥或其他谷物,經(jīng)發(fā)酵、蒸煮、熬制而成[2],現(xiàn)在工藝主要是用酶法生產(chǎn)飴糖[3]。飴糖有補中緩急的功效,可以緩解腹中冷痛、食少嘔吐的癥狀。飴糖和石灰粉是食用檳榔鹵水[4]體系中最重要的組成部分,能直接賦予食用檳榔鹵水最基礎(chǔ)的組織結(jié)構(gòu)及特殊口感[5]。其在食用檳榔鹵水中的主要起到調(diào)味和中和石灰降低其堿性,減少燒口現(xiàn)象使其適口性變好,能保護(hù)咀嚼者口腔黏膜,其中與石灰發(fā)生反應(yīng)的主要為還原糖,而飴糖中的還原糖基本是葡萄糖和麥芽糖,因此控制好葡萄糖和麥芽糖的比例能對檳榔鹵水改良技術(shù)提供支持[6]。

        國內(nèi)檢測葡萄糖和麥芽糖的方法有多種,主要分三大類,分別是光譜法、色譜法和滴定法。其中,光譜法和滴定法都是將還原糖轉(zhuǎn)化為葡萄糖作為最終產(chǎn)物來測定含量的,過去常采用的色譜法是氣相色譜法和薄層色譜法,氣相色譜法中由于糖本身沒有足夠的揮發(fā)性,需將其轉(zhuǎn)化為揮發(fā)性衍生物進(jìn)行分析,制備過程操作繁瑣,耗時長,易產(chǎn)生多種衍生物的異構(gòu)體[7]。薄層色譜法的優(yōu)點是操作快捷有效、無需衍生化處理,但多種單糖的分離效果差,微量成分顯色不明顯而且重現(xiàn)性不好,適合簡單樣品的定性分析而不能滿足復(fù)雜的樣品的定性定量。而液相色譜法則可直接對葡萄糖和麥芽糖進(jìn)行定性定量分析[8-9]。其中,GB 5009.8—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖的測定》[10]和GB/T 20883—2017《實驗室質(zhì)量控制規(guī)范食品理化檢測》[11]都對糖類含量分析提供液相色譜分析的方法。

        試驗采用液相色譜儀法對同時測定飴糖樣品中葡萄糖和麥芽糖進(jìn)行研究,改進(jìn)色譜分離條件,以提高檢測靈敏度并延長色譜柱的使用壽命。

        1 材料與方法

        1.1 主要儀器、試劑與材料

        Agilent 1260高效液相色譜儀(配示差折光檢測器,美國Agilent公司);ME-204分析天平、MS105DU半微量天平(梅特勒儀器有限公司);超純水機(湖南中沃水務(wù)環(huán)??梢杂邢薰荆?;16D033超聲波清洗機(寧波新芝科技有限公司)。

        葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(純度≥99.9%,北京壇墨質(zhì)檢有限公司);麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(純度≥94.5%,德國Dr.Ehrenstorfer公司);乙腈(色譜純,TEDIA);氨水(色譜純,上海安譜科技有限公司);超純水為實驗室自制。

        1.2 色譜條件

        色譜柱Waters XBridge-Amide(3.5 μm×4.6 mm×150 mm);流動相A為乙腈,流動相B為0.1%氨水(體積比),流動相A與B按75∶25(V/V)預(yù)混合(約pH 9.5)后經(jīng)0.45 μm有機系濾膜過濾。流速0.5 mL/min;柱溫60 ℃;檢測器溫度40 ℃;進(jìn)樣量5 μL;檢測器RID(示差折光檢測器)。

        1.3 標(biāo)準(zhǔn)儲備液的配制

        用半微量天平精確稱取0.200 20 g葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),溶解后定容至100 mL容量瓶中,配制成2.00 mg/L的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)儲備液,儲存于4 ℃冰箱中;用半微量天平精確稱取0.211 64 g麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),溶解后定容至50 mL容量瓶中,配制成4.00 mg/L的麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)儲備液,儲存于4 ℃冰箱中。

        將葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)儲備液用超純水逐級稀釋成質(zhì)量濃度為2.00,1.50,1.00,0.50和0.25 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)使用液;將麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)儲備液用超純水逐級稀釋成質(zhì)量濃度為4.00,3.00,2.00,1.00和0.50 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)使用液。

        1.4 樣品的處理方法

        準(zhǔn)確稱取0.5 g(精確至0.000 1 g)飴糖,溶解后定容至100 mL容量瓶中,混勻,取2 mL經(jīng)0.45 μm水系濾膜過濾后上機檢測。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 色譜條件的優(yōu)化

        試驗初期分離柱選擇的是Hypersil NH2糖分析柱[12],以乙腈-水75∶25(V/V)作為流動相。雖然也能得到較好的分離度和線性關(guān)系,但由于飴糖呈弱酸性,酸性物質(zhì)的存在意味著質(zhì)子的存在,會使略帶負(fù)電荷的氨基官能團(tuán)質(zhì)子化,因此導(dǎo)致致使用一段時間后柱效下降較快,使用壽命短。

        在選擇Waters XBridge-Amide(3.5 μm×4.6 mm×150 mm)分離柱后此現(xiàn)象有所改觀,但沒過段時間仍需對分離柱進(jìn)行清洗或再生,對流動相的pH進(jìn)行調(diào)節(jié),將流動相改為乙腈-0.1%氨水75∶25(V/V)后此現(xiàn)象大為改觀。分離柱的使用壽命也大幅延長。

        2.2 線性范圍

        按2.1中色譜條件設(shè)置高效液相色譜儀參數(shù),注入葡萄糖和麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)使用液,分別測定其峰面積,以標(biāo)準(zhǔn)使用液質(zhì)量濃度X(mg/L)為橫坐標(biāo)、相應(yīng)峰面積Y為縱坐標(biāo)進(jìn)行線性擬合,得:葡萄糖線性回歸方程Y=88 327.9X+484.8,r=0.999 8;麥芽糖線性回歸方程Y=87 719.3X-362.2,r=0.999 8。結(jié)果表明,葡萄糖在0.25~2.00 mg/mL、麥芽糖在0.5~4.00 mg/mL的范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。飴糖葡萄糖、麥芽糖色譜分析圖見圖1,葡萄糖校正曲線圖見圖2,麥芽糖校正曲線圖見圖3。

        圖1 飴糖葡萄糖、麥芽糖色譜分析圖

        圖2 葡萄糖校正曲線圖

        圖3 麥芽糖校正曲線圖

        2.3 精密度與檢出限

        按2.1中色譜條件設(shè)置高效液相色譜儀參數(shù),將質(zhì)量濃度0.25 mg/L和2.00 mg/L的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)使用液和1個飴糖樣品連續(xù)進(jìn)樣6針,測得葡萄糖低、中、高三水平的SRSD,見表1。

        表1 葡萄糖三水平的SRSD結(jié)果

        將質(zhì)量濃度0.50 mg/L和4.00 mg/L的麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)使用液和1個飴糖樣品連續(xù)進(jìn)樣6針測得麥芽糖低、中、高三水平的RSD見表2。

        表2 麥芽糖三水平的SRSD結(jié)果

        由表1、表2可知,葡萄糖和麥芽糖的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為葡萄糖0.55%和0.40%,結(jié)果符合《實驗室質(zhì)量控制規(guī)范 食品理化檢測》(GB/T 27404—2008)[11]附錄F中實驗室內(nèi)變異系數(shù)≤2.0%,表明方法精密度良好。參考《合格評定 化學(xué)分析方法確認(rèn)和驗證指南》[13],考慮到分析物中的目標(biāo)物含量遠(yuǎn)超過檢出限(LOQ),因此并未對該方法的檢出限和定量限做過多的考慮,僅以低水平的3倍SD計算該方法檢出限,得該方法葡萄糖的檢出限為0.04 mg/mL;麥芽糖檢出限為0.015 mg/mL,已能滿足日常檢測需求。

        2.4 回收率

        參考GB/T 27404—2008《實驗室質(zhì)量控制規(guī)范 食品理化檢測》附錄F中的方法對飴糖進(jìn)行加標(biāo)回收率的測定,準(zhǔn)確稱取15份同一個飴糖樣品,每份0.500 0 g,分別對其1~15號進(jìn)行編號,1~3號樣品用超純水溶解并定容至100 mL,根據(jù)葡萄糖和麥芽糖的檢出限對第1組4~6號樣品加標(biāo)為:樣品用超純水溶解后分別加入2 mL的2.00 mg/mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液和1 mL的4.00 mg/mL麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)溶液并用超純水定容至100 mL。第2組7~9號樣品的加標(biāo)為:樣品用超純水溶解后分別加入25 mL的2.00 mg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液和25 mL的4.00 mg/mL的麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)溶液并用超純水定容至100 mL。第3組10~12號樣品的加標(biāo)為:樣品用超純水溶解后加入50 mL的2.00 mg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液并用超純水定容至100 mL。第4組13~15號樣品的加標(biāo)為:樣品用超純水溶解后加入50 mL的4.00 mg/mL的麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)溶液并用超純水定容至100 mL的方法進(jìn)行回收率測定試驗,計算回收率及SRSD值,具體結(jié)果見表3~表5。

        表3 飴糖樣品的葡萄糖和麥芽糖含量結(jié)果(n=3)

        由表3可知,作為底物的飴糖中葡萄糖含量和麥芽糖含量分別為17.2%和39.2%。由表4可知,在方法檢出限水平、常規(guī)樣品水平和方法曲線最高限度這三水平葡萄糖的加標(biāo)回收率分別為99.4%,100.0%和100.2%,SRSD為0.40%。由表5可知,在方法檢出限水平、常規(guī)樣品水平和方法曲線最高限度這三水平麥芽糖的加標(biāo)回收率分別為97.8%,98.3%和99.5%,SRSD為0.90%。所有加標(biāo)結(jié)果回收率均在95%~105%之間,符合GB/T 27404—2008所要求的加標(biāo)回收率的范圍,因此說明該方法的準(zhǔn)確度和重現(xiàn)性均為優(yōu)秀。

        表4 葡萄糖三水平回收率試驗結(jié)果(n=3)

        表5 麥芽糖三水平回收率試驗結(jié)果(n=3)

        2.5 樣品分析

        在鹵水房隨機抽取6桶飴糖,每桶取6個樣品,將其按1.4的樣品處理方法處理后注入高效液相色譜儀進(jìn)行測定,結(jié)果見表6。

        表6 樣品含量測定結(jié)果(n=6)單位:%

        3 結(jié)論

        建立高效液相色譜法同時測定檳榔鹵水一種重要原料——飴糖中葡萄糖和麥芽糖含量的方法,該法簡便快捷,靈敏度高,重現(xiàn)性好,檢出限低適用于食用檳榔鹵水的原料——飴糖中的葡萄糖和麥芽糖含量的測定,既可為廣大檳榔生產(chǎn)企業(yè)提供原料進(jìn)廠檢驗的依據(jù),也可作為控制鹵水反應(yīng)程度的指標(biāo),該方法對食用檳榔鹵水的改良提供技術(shù)支持。

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