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        基于雙菌耦合發(fā)酵策略的煙酰胺單核苷酸合成

        2024-01-03 15:31:28張洪濤柴文剛薛皓陽(yáng)譚淑引
        食品科學(xué) 2023年24期
        關(guān)鍵詞:菌體耦合菌株

        孫 婷,張洪濤, ,楊 峰,柴文剛,薛皓陽(yáng),譚淑引

        (1.江南大學(xué) 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,生物工程學(xué)院,江蘇 無(wú)錫 214122;2.海軍軍醫(yī)大學(xué)藥學(xué)系無(wú)機(jī)化學(xué)教研室,上海 200433;3.倫敦帝國(guó)理工學(xué)院醫(yī)學(xué)院,糖科學(xué)實(shí)驗(yàn)室,英國(guó) 倫敦 HA13UJ;4.江南大學(xué)化工學(xué)院,江蘇 無(wú)錫 214122)

        煙酰胺單核苷酸(nicotinamide mononucleotide,NMN)是一種自然存在的生物活性核苷酸[1],它廣泛分布在人體的所有細(xì)胞內(nèi),是細(xì)胞內(nèi)完成生命活動(dòng)必不可少的輔因子[2]。研究發(fā)現(xiàn)NMN在改善衰老血管的血流量[3]、減少腦出血后腦損傷[4]、提高胰島素敏感性、促進(jìn)肌肉重塑[5]等方面發(fā)揮著重要作用,值得一提的是NMN可以通過(guò)減少DNA損傷防治新冠、加速新冠患者的康復(fù)[6-7]。2020年,日本厚生勞動(dòng)省將NMN列入“非醫(yī)療清單”,允許其在食品生產(chǎn)中使用。NMN已成為食品、醫(yī)學(xué)、保健品領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)[8]。

        目前,NMN的合成方法主要有化學(xué)合成、酶法合成和生物合成3 種途徑[9]?;瘜W(xué)合成NMN需要先合成煙酰胺核苷,通常從核糖衍生物和煙酸衍生物開始,成本高、環(huán)境污染嚴(yán)重[10];酶法合成效率較高,但存在操作復(fù)雜、成本高等缺陷[11];生物發(fā)酵法是利用細(xì)胞將底物轉(zhuǎn)化為特定產(chǎn)物的過(guò)程[12],由于減少了傳統(tǒng)酶催化細(xì)胞裂解和蛋白質(zhì)濃縮等步驟[13],因此具有選擇性高、催化活性強(qiáng)、成本效益高等獨(dú)特優(yōu)勢(shì)[14]。據(jù)2021年研究報(bào)道,以煙酰胺和葡萄糖為底物,發(fā)酵法生產(chǎn)NMN最高產(chǎn)量為6.79 g/L[15]。目前發(fā)酵液中NMN產(chǎn)品濃度較低,嚴(yán)重阻礙了發(fā)酵法合成NMN技術(shù)的產(chǎn)業(yè)化。因此,亟需開發(fā)一種更高效的NMN生物合成工藝。

        細(xì)胞內(nèi)NMN的合成路線主要有兩條途徑:1)以煙酰胺核糖(nicotinamide riboside,NR)為底物,ATP作為輔因子,通過(guò)煙酰胺核苷激酶(nicotinamide riboside kinase,NRK)催化直接實(shí)現(xiàn)NMN合成[16];2)以核糖和ATP為底物,先在核糖磷酸焦磷酸激酶(phosphoribosylpyro phosphate,PRPP)催化下生成5-磷酸核糖-1α-焦磷酸,后者在煙酰胺磷酸核糖轉(zhuǎn)移酶(nicotinamide phosphoribosyltransferase,NAMPT)催化下與煙酰胺合成NMN[17]。第2條途徑為多酶催化體系,需要酶的種類較多,中間產(chǎn)物多,總體收率低[18],而第1條途徑只需要一步酶催化即可完成,且能夠避免使用價(jià)格較高、來(lái)源受限的PRPP[19]。因此,本研究建立以NR和ATP為底物,通過(guò)NRK一步法直接轉(zhuǎn)化為NMN的全細(xì)胞合成體系??紤]到該反應(yīng)需要由ATP提供一個(gè)磷酸基供體,而單純外源添加造成生產(chǎn)成本高[20-21],因此構(gòu)建ATP再生系統(tǒng)是提高生物合成反應(yīng)經(jīng)濟(jì)性的一個(gè)有效措施[22]。由于多聚磷酸酶(polyphosphate kinase,PPK)可催化無(wú)機(jī)多聚磷酸鹽(inorganic polyphosphate,Poly-P)和ATP之間的磷酸鹽可逆轉(zhuǎn)化,實(shí)現(xiàn)ATP的循環(huán)再生[23],故將該系統(tǒng)引入NMN的合成體系,用以實(shí)現(xiàn)ADP到ATP再生。

        本研究構(gòu)建基于大腸桿菌(Escherichia coli)BL21(DE3)-pET28a-NRK、E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的全細(xì)胞雙菌耦合發(fā)酵體系(圖1),實(shí)現(xiàn)基于工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的ATP再生系統(tǒng)在E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK合成NMN中的應(yīng)用。構(gòu)建的雙菌耦合發(fā)酵系統(tǒng)可以通過(guò)ATP再生實(shí)現(xiàn)ATP持續(xù)供給,降低整個(gè)發(fā)酵體系的生產(chǎn)成本,實(shí)現(xiàn)NR到NMN的連續(xù)化合成。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 菌株與質(zhì)粒

        E.coliBL21(DE3)天根生化科技(北京)有限公司;表達(dá)載體pET28a質(zhì)粒由本實(shí)驗(yàn)室保藏。

        1.1.2 培養(yǎng)基

        LB培養(yǎng)基:胰蛋白胨10.0 g/L,酵母粉5.0 g/L,氯化鈉10.0 g/L,調(diào)節(jié)pH 7.0,121 ℃滅菌20 min;固體培養(yǎng)基添加瓊脂粉2%。將工程菌接種到LB瓊脂平板上,37 ℃培養(yǎng)12 h。

        1.1.3 試劑

        卡那霉素(kanamycin,Kan)、DNA Marker及蛋白Marker 翌圣生物科技(上海)股份有限公司;質(zhì)粒提取試劑盒、限制性內(nèi)切酶、Taq酶、T4 DNA連接酶 生工生物工程(上海)股份有限公司;NMN標(biāo)準(zhǔn)品 海軍軍醫(yī)大學(xué)趙慶杰教授贈(zèng)送;NR、ADP、ATP標(biāo)準(zhǔn)品 杭州鎧朋生物技術(shù)有限公司;異丙基-β-D-硫代半乳糖吡喃糖苷(isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside,IPTG)北京伊諾凱科技有限公司;4-羥乙基哌嗪乙磺酸(4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonicaci,HEPES)北京百靈威科技有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        C1000 TouchTM聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀、Mini-PROTEAN Tetra蛋白電泳儀美國(guó)Bio-Rad公司;高效液相色譜儀 日本島津公司;高速冷凍離心機(jī) 美國(guó)Sigma公司;三重四極桿液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 賽默飛科技有限公司;超聲波破碎機(jī)寧波新芝生物科技有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 工程菌株的構(gòu)建

        將編碼NRK1基因序列(Gene ID:54981)、NRK2基因序列(Gene ID:6787)、PPK基因序列(Gene ID:VLKR01000001.1)進(jìn)行大腸桿菌偏好性密碼子優(yōu)化,由天霖生物公司合成,獲得重組質(zhì)粒pET28a-NRK1(圖2a)、pET28a-NRK2(圖2b)和pET28a-PPK(圖2c),然后分別轉(zhuǎn)化到E.coliBL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中,并利用Kan選擇性培養(yǎng)基,37 ℃培養(yǎng)12 h,篩選出陽(yáng)性克隆。設(shè)計(jì)引物NRK1-F、NRK1-R,NRK2-F、NRK2-R和PPK-F、PPK-R(表1),挑取單菌落進(jìn)行菌落PCR驗(yàn)證,由天霖生物公司對(duì)條帶大小正確的轉(zhuǎn)化子進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。

        表1 PCR引物序列Table 1 Primer sequences used for PCR in this study

        圖2 重組質(zhì)粒構(gòu)建Fig.2 Recombinant plasmid construction

        1.3.2 重組蛋白的表達(dá)

        分別挑取工程菌株E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1、E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2和E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的單菌落接入10 mL含有20 μg/mL Kan的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、200 r/min搖瓶培養(yǎng)12 h。再以2%接種量轉(zhuǎn)接到150 mL LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、200 r/min搖瓶培養(yǎng)至OD600nm約為0.7后加入終濃度0.1 mmol/L的IPTG,16 ℃、200 r/min條件下過(guò)夜誘導(dǎo)培養(yǎng)后,8 000 r/min離心5 min,收集菌體備用,并進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)檢測(cè)蛋白表達(dá)情況。

        1.3.3 NMN的生物合成及結(jié)構(gòu)鑒定

        NMN合成體系:20 mmol/L HEPES(pH 7.2)、5 mmol/Lβ-巰基乙醇、5 mmol/L MgCl2、100 mmol/L NaCl、20 mmol/L NR、40 mmol/L ATP、NRK菌體質(zhì)量濃度100 g/L,18 ℃、100 r/min反應(yīng)12 h。

        薄層色譜(thin-layer chromatography,TLC)檢測(cè):展開劑1,4-二氧環(huán)烷∶水∶氨水∶異丙醇=4∶2.5∶3∶2(V/V),254 nm波長(zhǎng)紫外照射顯色。

        液相色譜-質(zhì)譜檢測(cè)條件:大氣壓電噴霧電離源H-ESI II probe;色譜柱Waters ACQUITY UPLC HSS T3(100 mm×2.1 mm,1.8 μm);液相流速0.2 mL/min;柱溫35 ℃;吸收波長(zhǎng)254 nm。流動(dòng)相A為甲醇,流動(dòng)相B為0.1%甲酸,程序:0~2 min,0% A、100% B;2~6 min,0%~90% A、100%~10% B;6~7.5 mim,90% A、10% B;7.5~8 min,9 0%~0% A、10%~100% B;8~11 min,0% A、100% B。

        1.3.4 NMN的定量分析

        配制6 組NMN標(biāo)準(zhǔn)溶液1、2、3、4、5、6 mg/mL,通過(guò)高效液相色譜對(duì)NMN標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行定量分析,以NMN標(biāo)準(zhǔn)品的濃度為橫軸,色譜中相應(yīng)的峰面積為縱軸,對(duì)液相色譜結(jié)果進(jìn)行線性回歸分析,繪制NMN的標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算得到相應(yīng)樣品質(zhì)量濃度。

        高效液相色譜條件:色譜柱為Unitary C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相為0.1%高氯酸溶液;流速0.6 mL/min;進(jìn)樣量10 μL;紫外檢測(cè)波長(zhǎng)257 nm;柱溫30 ℃;洗脫時(shí)間20 min。

        1.3.5 ATP的生物合成及鑒定

        ATP的合成體系:20 mmol/L HEPES(pH 7.2)、5 mmol/Lβ-巰基乙醇、5 mmol/L MgCl2、100 mmol/L NaCl、20 mmol/L ADP、20 mmol/L Poly-P、PPK菌體質(zhì)量濃度100 g/L,18 ℃、100 r/min反應(yīng)12 h。

        基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜儀對(duì)合成的ATP進(jìn)行鑒定:采用反射陰離子模式,2,5-二羥基苯甲酸作為輔助基質(zhì),掃描分子質(zhì)量范圍為470~600 Da。

        1.3.6 單菌合成體系的優(yōu)化

        1.3.6.1E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1的誘導(dǎo)表達(dá)條件優(yōu)化

        在搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)過(guò)程中,設(shè)置不同接種量(1%、2%、3%、4%、5%、6%)、誘導(dǎo)時(shí)長(zhǎng)(8、10、12、14、16、18、20、22、24 h)、誘導(dǎo)溫度(16、20、25、28、30、37 ℃)和誘導(dǎo)劑IPTG終濃度(0.1、0.3、0.5、0.7、0.9、1 mmol/L)依次進(jìn)行梯度實(shí)驗(yàn),以期獲得更多的目的蛋白。

        1.3.6.2E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1生物合成NMN的條件優(yōu)化

        對(duì)單一工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1生物合成NMN過(guò)程中的菌體質(zhì)量濃度(25、50、75、100、125、150 g/L)、時(shí)長(zhǎng)(8、10、12、14、16、18、20 h)、溫度(18、30、37 ℃)、底物ATP(20 mmol/L)與NR濃度比(1∶0.5、1∶0.75、1∶1、1∶1.25、1∶1.5、1∶2)進(jìn)行優(yōu)化。

        1.3.7 雙菌耦合發(fā)酵體系的建立及優(yōu)化

        構(gòu)建工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1及工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的全細(xì)胞雙菌耦合發(fā)酵體系:20 mmol/L HEPES(pH 7.2)、5 mmol/Lβ-巰基乙醇、5 mmol/L MgCl2、100 mmol/L NaCl、30 mmol/L NR、20 mmol/L ATP、40 mmol/L Poly-P、100 g/LE.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1、100 g/LE.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK,18 ℃、100 r/min反應(yīng)12 h。

        對(duì)雙菌耦合發(fā)酵體系從ATP與NR濃度比(1∶1.5、1∶2.5、1∶3.5、1∶4.5、1∶5.5)、菌體質(zhì)量濃度比(1∶0、1∶2、1∶1、1∶0.67、1∶0.5)及發(fā)酵時(shí)長(zhǎng)(6、8、10、12、14、16、18、20、22、24 h)進(jìn)行優(yōu)化,獲得耦合發(fā)酵的最適條件。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 工程菌的構(gòu)建及誘導(dǎo)表達(dá)

        重組表達(dá)質(zhì)粒pET28a-NRK1經(jīng)過(guò)PCR驗(yàn)證結(jié)果見(jiàn)圖3a泳道1,得到的片段長(zhǎng)度與目的基因NRK1(610 bp)大小一致;重組質(zhì)粒pET28a-NRK2的PCR驗(yàn)證結(jié)果見(jiàn)圖3a泳道2,得到的片段長(zhǎng)度與目的基因NRK2(703 bp)大小相同;對(duì)重組質(zhì)粒pET28a-PPK進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果如見(jiàn)圖3a泳道3,得到的片段長(zhǎng)度與目的基因PPK(801 bp)大小一致。經(jīng)測(cè)序驗(yàn)證正確,得到重組質(zhì)粒pET28a-NRK1、pET28a-NRK2和pET28a-PPK。將重組質(zhì)粒分別導(dǎo)入E.coliBL21(DE3)中,對(duì)得到的工程菌株E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1、E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2、E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK進(jìn)行SDS-PAGE分析,結(jié)果如圖3b所示,誘導(dǎo)20 h的全細(xì)胞在25~35 kDa均有明顯的表達(dá)條帶,與NRK1目標(biāo)蛋白(26 kDa)[24]、NRK2目標(biāo)蛋白(26 kDa)[24]、PPK目標(biāo)蛋白(29.7 kDa)[25]大小一致,成功構(gòu)建工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1、E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2和E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK。

        圖3 重組質(zhì)粒電泳圖Fig.3 Electrophoretograms of recombinant plasmids

        2.2 單菌法合成產(chǎn)物NMN的鑒定

        2.2.1E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK生物合成產(chǎn)物NMN的分析鑒定

        人體細(xì)胞內(nèi)的NRK1和NRK2均具有催化NR和ATP合成NMN能力,構(gòu)建了E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1和E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2工程菌株,進(jìn)行NMN的全細(xì)胞合成。用TLC法對(duì)發(fā)酵液進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果見(jiàn)圖4a,發(fā)現(xiàn)樣品中有與NMN標(biāo)準(zhǔn)品相同Rf值的產(chǎn)物生成,初步判斷有產(chǎn)物NMN生成。

        圖4 NRK合成NMN的產(chǎn)物分析Fig.4 Product identification of NMN synthesis by NRK

        為進(jìn)一步驗(yàn)證產(chǎn)物,對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行刮板回收,進(jìn)行液相色譜-質(zhì)譜分析,從圖4c總離子流圖可以看出樣品只有一個(gè)離子化峰,出峰時(shí)間為1.95 min,進(jìn)一步分析該峰顯示m/z334.95,均與NMN標(biāo)準(zhǔn)品相同。通過(guò)液相色譜-質(zhì)譜分析可以判斷生成的產(chǎn)物為NMN,因此認(rèn)為E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK具有合成NMN的活性。

        2.2.2E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK再生產(chǎn)物ATP的分析鑒定

        以ADP、Poly-P為底物,在E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的作用下合成ATP,TLC檢測(cè)結(jié)果如圖5a所示,樣品的Rf值與ATP標(biāo)準(zhǔn)品相同。對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行刮板回收,進(jìn)行基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜檢測(cè),結(jié)果如圖5b、c所示,生成的ATP樣品與ATP標(biāo)準(zhǔn)品分子質(zhì)量相同,說(shuō)明E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK可以實(shí)現(xiàn)ATP的再生。

        圖5 PPK合成ATP的產(chǎn)物分析Fig.5 Product identification of ATP synthesis by PPK

        2.3 單菌誘導(dǎo)及生物合成NMN條件優(yōu)化

        2.3.1 NMN標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        NMN標(biāo)準(zhǔn)品溶液經(jīng)高效液相色譜檢測(cè)(圖6),以NMN濃度為橫坐標(biāo),液相色譜圖中對(duì)應(yīng)的峰面積為縱坐標(biāo),繪制NMN的標(biāo)準(zhǔn)曲線,經(jīng)線性回歸后得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程的R2=0.995 4,說(shuō)明NMN濃度和液相色譜圖中的峰面積有良好線性關(guān)系。

        圖6 NMN標(biāo)準(zhǔn)品液相出峰時(shí)間Fig.6 Chromatographic peak time of NMN standard

        2.3.2E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK高活性工程菌株的篩選

        在哺乳動(dòng)物體內(nèi)存在兩種NRK酶NRK1和NRK2,分別由Nmrk1和Nmrk2兩種基因編碼。NRK亞型的表達(dá)分析表明NRK1無(wú)所不在,而NRK2主要存在于骨骼肌中,兩種酶均具有催化NR反應(yīng)生成NMN的能力。為從兩者中篩選出高產(chǎn)NMN的工程菌株,進(jìn)行3 組NMN的全細(xì)胞合成。對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行高效液相色譜定量分析,如圖7所示,3 組均可以合成NMN,其中E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1反應(yīng)液中NMN產(chǎn)量最高為5.17 g/L,產(chǎn)率77.4%,E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2反應(yīng)液中僅為1.12 g/L,E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1與E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2菌株混合反應(yīng)液中產(chǎn)量為4.09 g/L。因此選取工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1為最優(yōu)合成NMN的工程菌株,用于后續(xù)雙菌耦合發(fā)酵系統(tǒng)的構(gòu)建與優(yōu)化探索。

        圖7 不同工程菌對(duì)NMN產(chǎn)量的影響Fig.7 Effects of different engineered bacteria on NMN yield

        2.3.3E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1誘導(dǎo)表達(dá)NRK1條件優(yōu)化

        相同細(xì)胞濃度下工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1的生物轉(zhuǎn)化效果明顯優(yōu)于E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2,但蛋白電泳圖比較發(fā)現(xiàn)(圖3),在同等誘導(dǎo)表達(dá)條件下,E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1的蛋白表達(dá)量明顯少于E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK2。因此為提高工程菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1誘導(dǎo)表達(dá)NRK1酶的蛋白表達(dá)量,從接種量、誘導(dǎo)時(shí)間、誘導(dǎo)溫度和誘導(dǎo)劑濃度等角度進(jìn)行NRK1誘導(dǎo)表達(dá)條件的優(yōu)化。

        接種量過(guò)大易產(chǎn)生代謝副產(chǎn)物,影響產(chǎn)物合成;接種量過(guò)小則會(huì)使細(xì)胞濃度增殖減緩,進(jìn)而造成目標(biāo)產(chǎn)物產(chǎn)量降低。因此,首先從接種量對(duì)蛋白表達(dá)的影響進(jìn)行探索,當(dāng)接種量為3%時(shí),NRK1的蛋白表達(dá)量明顯高于其他條件(圖8a)。為了選擇最佳誘導(dǎo)時(shí)間,研究了8 個(gè)不同誘導(dǎo)時(shí)間對(duì)蛋白表達(dá)的影響,隨著誘導(dǎo)時(shí)間的延長(zhǎng),蛋白的表達(dá)量逐漸增加,誘導(dǎo)時(shí)間22 h與誘導(dǎo)時(shí)間24 h的蛋白表達(dá)量相當(dāng),因此選擇22 h作為最佳的誘導(dǎo)表達(dá)時(shí)間(圖8b);由于溫度較高時(shí)會(huì)使表達(dá)蛋白形成包涵體,導(dǎo)致酶活性降低,當(dāng)誘導(dǎo)溫度為16 ℃時(shí),NRK1蛋白表達(dá)量最高(圖8c);誘導(dǎo)劑IPTG有細(xì)胞毒性,過(guò)高會(huì)造成細(xì)胞死亡導(dǎo)致酶表達(dá)終止,而IPTG過(guò)低則又會(huì)導(dǎo)致酶的誘導(dǎo)表達(dá)受阻,因此探索了IPTG對(duì)NRK1表達(dá)的影響,當(dāng)IPTG終濃度為0.7 mmol/L時(shí),NRK1的蛋白表達(dá)量最高(圖8d)。因此,確定E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1的最優(yōu)誘導(dǎo)表達(dá)條件為:接種量3%、誘導(dǎo)時(shí)間22 h、誘導(dǎo)溫度16 ℃、IPTG 0.7 mmol/L。

        圖8 不同誘導(dǎo)條件對(duì)誘導(dǎo)效果的影響Fig.8 Influence of different induction conditions on protein expression

        2.3.4E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1生物轉(zhuǎn)化NMN的條件優(yōu)化

        由于E.coli底盤細(xì)胞壁上沒(méi)有NMN由細(xì)胞內(nèi)向細(xì)胞外分泌的外排蛋白,為使細(xì)胞內(nèi)合成的NMN可以高效外排到細(xì)胞外,探索了細(xì)胞壁通透性處理對(duì)促進(jìn)NMN外排的影響。菌體細(xì)胞在反復(fù)凍融過(guò)程中細(xì)胞內(nèi)部會(huì)形成冰晶,導(dǎo)致剩余液體中鹽濃度的增高造成細(xì)胞被膜結(jié)構(gòu)的破壞,從而提高細(xì)胞膜通透性[12]。因此,在反應(yīng)前對(duì)細(xì)胞進(jìn)行反復(fù)凍融處理,NMN細(xì)胞外排結(jié)果如圖9所示,可以看出,未凍融細(xì)胞NMN產(chǎn)量?jī)H為0.79 g/L,與未凍融細(xì)胞相比,經(jīng)反復(fù)凍融的細(xì)胞NMN產(chǎn)量為5.33 g/L,產(chǎn)率80.19%。因此,在后續(xù)合成反應(yīng)中需要對(duì)細(xì)胞進(jìn)行反復(fù)凍融處理,使細(xì)胞膜通透性增加。

        圖9 通透性處理對(duì)NMN產(chǎn)量的影響Fig.9 Effect of permeability treatment on NMN yield

        為進(jìn)一步探索單菌E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1合成NMN的最優(yōu)體系,從單細(xì)胞菌體質(zhì)量濃度、反應(yīng)時(shí)長(zhǎng)、反應(yīng)溫度和底物ATP與NR比例進(jìn)行探索。由圖10a可知,當(dāng)菌體質(zhì)量濃度為100 g/L時(shí),NMN產(chǎn)量明顯高于其他菌體質(zhì)量濃度,因此選取菌體質(zhì)量濃度100 g/L為后續(xù)實(shí)驗(yàn)的最適菌體質(zhì)量濃度;圖10b說(shuō)明,當(dāng)時(shí)長(zhǎng)為10 h時(shí),NMN產(chǎn)量最高,選取10 h為合成體系的最適時(shí)長(zhǎng);溫度對(duì)產(chǎn)物得率的影響如圖10c所示,溫度越高,產(chǎn)量明顯減少,當(dāng)溫度為18 ℃時(shí),NMN產(chǎn)量最高,因此選取18 ℃為最佳的反應(yīng)溫度;在確定最佳菌體質(zhì)量濃度、時(shí)間、溫度的基礎(chǔ)上,研究ATP與NR比例對(duì)產(chǎn)物合成的影響,如圖10d所示,ATP與NR比例為1∶1.5時(shí)(20 mmol/L ATP、30 mmol/L NR),NMN產(chǎn)量最高為5.73 g/L,轉(zhuǎn)化率為85.78%。因此,單菌合成NMN的最優(yōu)體系為菌體質(zhì)量濃度100 g/L、反應(yīng)時(shí)長(zhǎng)10 h、反應(yīng)溫度18 ℃、ATP與NR比例1∶1.5。

        圖10 不同因素對(duì)NMN產(chǎn)量的影響Fig.10 Influence of culture conditions on NMN yield from E.coli BL21 (DE3)-pET28a-NRK1

        2.4 雙菌耦合發(fā)酵產(chǎn)NMN體系的建立及優(yōu)化

        2.4.1 雙菌耦合發(fā)酵體系的建立

        為降低合成NMN的成本,在以NR和ATP為底物,E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1單菌合成NMN優(yōu)化體系的基礎(chǔ)上,引入ADP到ATP的循環(huán)再生菌株E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK,用于實(shí)現(xiàn)以NR、ATP和Poly-P為底物,通過(guò)雙工程菌株耦合發(fā)酵來(lái)合成NMN,結(jié)果如圖11所示。雙菌株耦合發(fā)酵體系中當(dāng)ATP添加量為12 mmol/L(單菌體系的60%),NMN產(chǎn)量與單菌體系持平為5.7 g/L。隨著ATP的繼續(xù)添加,NMN的產(chǎn)量也逐漸增加,最終NMN產(chǎn)量為6.45 g/L。這表明,在發(fā)酵體系中添加E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK菌株可以實(shí)現(xiàn)ATP的循環(huán)再生,不僅減少了外源供應(yīng)ATP的需求,而且使NMN的產(chǎn)量增加。

        2.4.2 雙菌耦合發(fā)酵體系的優(yōu)化

        為進(jìn)一步提高雙菌耦合發(fā)酵生成NMN的產(chǎn)量,從最適ATP與NR濃度比、菌體質(zhì)量濃度比及發(fā)酵時(shí)間角度對(duì)發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化。在耦合發(fā)酵體系中,底物ATP與NR初始濃度比對(duì)NMN合成影響較大,由圖12a可知,在ATP與NR濃度比為1∶3.5時(shí),NMN的產(chǎn)量最高,因此,選取1∶3.5為耦合發(fā)酵的最佳底物濃度比;在此濃度比的基礎(chǔ)上,研究了菌體質(zhì)量濃度比對(duì)產(chǎn)物合成的影響,控制菌株E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1的菌體質(zhì)量濃度為100 g/L,改變E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的菌體質(zhì)量濃度,由圖12b發(fā)現(xiàn),當(dāng)菌體質(zhì)量濃度比為1∶2時(shí),NMN的產(chǎn)量最高;在最佳底物濃度比與菌體質(zhì)量濃度比的基礎(chǔ)上,又進(jìn)一步研究耦合發(fā)酵時(shí)間對(duì)反應(yīng)體系的影響,從圖12c可以看出,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),NMN產(chǎn)量逐漸上升,發(fā)酵時(shí)間為16 h,NMN產(chǎn)量最高為11.81 g/L,隨著時(shí)間的繼續(xù)增加,NMN產(chǎn)量逐漸趨于平緩下降,因此選取16 h為最佳發(fā)酵時(shí)間。綜上可得,雙菌株耦合發(fā)酵合成NMN最佳生產(chǎn)工藝為ATP與NR濃度比1∶3.5、菌體質(zhì)量濃度比1∶2、耦合發(fā)酵時(shí)長(zhǎng)16 h。

        圖12 不同因素對(duì)耦合發(fā)酵產(chǎn)NMN的影響Fig.12 Influence of culture conditions on NMN production by coupled fermentation

        3 討論

        近年來(lái),不僅NMN的生理活性及功能受到了廣泛的研究和關(guān)注,NMN的合成工藝也成為了合成生物學(xué)領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)。目前,NMN雖然可以通過(guò)不同途徑、不同原料轉(zhuǎn)化而成,但其產(chǎn)率和生產(chǎn)成本仍有改善的空間。在生物法合成NMN方面,廖一波等[26]經(jīng)過(guò)同源建模和底物煙酰胺(nicotinamide,NAM)分子對(duì)接等方式評(píng)估后,選擇在E.coli中過(guò)表達(dá)紅色稍棲熱菌(Meiothermus ruber)來(lái)源的Nampt,以PRPP和NAM為底物進(jìn)行酶催化反應(yīng)10 min,NMN產(chǎn)量可達(dá)34 mg/L,生產(chǎn)效率約為3 mg/(L·min);吳旻暉等[27]建立了細(xì)胞外酶法合成技術(shù)體系:在E.coli系統(tǒng)成功實(shí)現(xiàn)了NMN合成途徑酶的分泌表達(dá),但表達(dá)所得酶量較低,NMN產(chǎn)量為5.50 μmol/L,且合成NMN所需要的ATP完全依賴于外源ATP添加量,使得成本較高。在本研究中,通過(guò)引入基于PPK的ATP再生系統(tǒng),構(gòu)建了全細(xì)胞雙菌耦合發(fā)酵體系,不僅減少了傳統(tǒng)酶催化過(guò)程破碎、提取、純化等步驟所需要的成本,而且用更便宜的材料Poly-P將ADP磷酸化為ATP,實(shí)現(xiàn)ATP的循環(huán),減少了對(duì)外源ATP的需求量,使生產(chǎn)成本大大降低,且雙菌株優(yōu)化后的NMN發(fā)酵產(chǎn)量達(dá)11.81 g/L,這是目前耦合發(fā)酵法合成NMN的最高產(chǎn)量報(bào)道。與2021年日本報(bào)道的6.79 g/L高出了73.93%[15]。

        本研究構(gòu)建了基于E.coliBL21(DE3)-pET28a-NRK1、E.coliBL21(DE3)-pET28a-PPK的全細(xì)胞雙菌耦合發(fā)酵體系,不僅具有即插即用的優(yōu)點(diǎn),而且可以根據(jù)每個(gè)批次全細(xì)胞的酶活性不同,針對(duì)性地對(duì)細(xì)胞添加量進(jìn)行調(diào)整,從而實(shí)現(xiàn)整個(gè)發(fā)酵體系的最優(yōu),對(duì)NMN的高效、低成本合成具有重要意義。目前雙菌耦合發(fā)酵體系屬于高密度發(fā)酵,與酶法相比,產(chǎn)量仍相對(duì)較低,這可能與產(chǎn)物在細(xì)胞壁的分泌受阻相關(guān)。另外,細(xì)胞內(nèi)NMN的一小部分將被消耗以合成NAD+用于細(xì)菌生長(zhǎng),這對(duì)NMN的積累不利[28]。Shoji等[15]發(fā)現(xiàn)pnuC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白可以有效地將NMN從細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)移到細(xì)胞外。因此,在后續(xù)完善NMN合成時(shí)將從以下3 個(gè)方面進(jìn)行優(yōu)化:1)從菌株構(gòu)建角度進(jìn)行,通過(guò)引入產(chǎn)物NMN外排出細(xì)胞的“膜蛋白(pnuC)”,構(gòu)建出產(chǎn)物可以快速外排的“細(xì)胞門通道蛋白”工程菌;2)阻斷NMN生成NAD+的合成通路,實(shí)現(xiàn)NMN的積累[29];3)從發(fā)酵工藝優(yōu)化角度,探索分批發(fā)酵和連續(xù)流加模式對(duì)NMN產(chǎn)量的影響。

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