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        低磷脅迫下番茄轉(zhuǎn)錄因子WRKY6功能分析

        2023-11-23 09:11:22陳浩婷張玉靜劉潔代澤敏劉偉石玉張毅李天來
        生物技術(shù)通報 2023年10期
        關(guān)鍵詞:磷素株系磷酸酶

        陳浩婷 張玉靜 劉潔 代澤敏 劉偉 石玉 張毅 李天來,2

        (1. 山西農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,太谷 030801;2. 沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,沈陽 110866)

        磷是植物生長發(fā)育必需的大量元素之一,在遺傳信息的傳遞和細(xì)胞結(jié)構(gòu)的維持中起重要作用。磷的供應(yīng)減少,會使細(xì)胞分裂和增殖受到限制,植物新器官不能形成,代謝停滯,生長發(fā)育受阻[1]。研究表明,低磷脅迫能使大多數(shù)植物的根冠比增大、根直徑變細(xì)、側(cè)根和根毛密度增大,大多數(shù)植物根系還可改變生長角度,在表層土壤富集,形成“傘狀”根系構(gòu)型,以便于吸收表層土壤中的磷[2]。低磷脅迫下,植物自身還能產(chǎn)生一系列適應(yīng)性反應(yīng),通過增強(qiáng)根系酸性磷酸酶活性等,增加根系對外界磷的獲取和內(nèi)部磷的循環(huán)再利用,通過根系釋放的低分子量有機(jī)酸活化土壤中的無機(jī)、有機(jī)磷,通過誘導(dǎo)響應(yīng)磷饑餓基因表達(dá)量變化等提高植物對磷的吸收,進(jìn)而維持植物體內(nèi)的磷穩(wěn)態(tài)[3-5]。然而,設(shè)施番茄(Solanum lycopersicum L.)生產(chǎn)中普遍存在土壤磷總量高但磷肥利用率嚴(yán)重偏低的問題,每年仍需大量增施磷肥才能滿足番茄生產(chǎn)的養(yǎng)分需求(磷肥用量達(dá)需求量的28.7倍),阻礙產(chǎn)業(yè)發(fā)展[6]。因此,采用有效的生物技術(shù)手段,解析磷素營養(yǎng)調(diào)控的分子通路,挖掘提高番茄低磷耐受性和磷素利用率的種質(zhì)資源,具有重要的理論價值和現(xiàn)實意義。

        大量研究表明,WRKY轉(zhuǎn)錄因子家族成員廣泛參與應(yīng)答各種生物和非生物脅迫反應(yīng)[7]。WRKY轉(zhuǎn)錄因子作為應(yīng)答逆境脅迫的主要成分,通過與啟動子區(qū)域中的順式作用元件W?box結(jié)合調(diào)控與抗逆有關(guān)靶標(biāo)基因的表達(dá),最終賦予植物抗逆性[8]。依據(jù)結(jié)構(gòu)域數(shù)量和鋅指結(jié)構(gòu)特征,WRKY主要分為3類:第I類含2個WRKY結(jié)構(gòu)域,又可分為2個亞類(Ia和Ib,鋅指結(jié)構(gòu)分別為C2H2型和C2HC型);第II、III類含1個WRKY結(jié)構(gòu)域,其中第II類鋅指結(jié)構(gòu)為C2H2型(IIa-IIe,5個亞類),第III類鋅指結(jié)構(gòu)為C2HC型[9]。近年來,WRKY通過結(jié)合靶基因啟動子調(diào)控磷脅迫信號通路中相關(guān)基因表達(dá)的作用引起了廣泛關(guān)注[10]。AtWRKY75是WRKY家族中首次被報道參與磷轉(zhuǎn)運(yùn)、分配和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄因子,AtWRKY75 RNAi株系中磷轉(zhuǎn)運(yùn)體基因的表達(dá)量顯著下降,表明該基因可正向調(diào)控磷轉(zhuǎn)運(yùn)體應(yīng)對低磷脅迫[11]。過表達(dá)WRKY42促進(jìn)了擬南芥(Arabidopsis thaliana)對磷的吸收,導(dǎo)致根部磷含量的增加;而在WRKY42突變體中磷的吸收能力下降,導(dǎo)致根中磷含量降低,使植株對低磷脅迫敏感。AtWRKY6和AtWRKY42都可直接結(jié)合在PHO1的啟動子上抑制其表達(dá),降低植株對低磷脅迫的耐受性[12]。過表達(dá)OsWRKY21或OsWRKY108通過增強(qiáng)PHT1;1基因的表達(dá)而促進(jìn)磷的積累,而OsWRKY21和OsWRKY108雙突變體中PHT1;1基因表達(dá)水平和磷積累量均降低[13]??傊?,WRKY對下游缺磷響應(yīng)基因有正向或負(fù)向的調(diào)控,并對植物的磷素信號和磷素穩(wěn)態(tài)產(chǎn)生影響。

        本研究前期轉(zhuǎn)錄組結(jié)果顯示,低磷脅迫下大量WRKY家族基因表達(dá)出現(xiàn)顯著變化,尤其是SlWRKY6基因表達(dá)量降低了67.14%[14]。為發(fā)掘番茄中應(yīng)答低磷脅迫的WRKY轉(zhuǎn)錄因子,利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)獲得SlWRKY6的干擾和超表達(dá)轉(zhuǎn)基因番茄材料,解析SlWRKY6的功能,為揭示設(shè)施番茄磷高效利用的分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò)提供新觀點(diǎn),同時為利用WRKY轉(zhuǎn)錄因子改良茄科作物的低磷耐受性和提高磷利用效率提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 試驗材料 試驗于2022年4-12月在山西農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝實驗中心人工氣候室進(jìn)行,以實驗室自存的Ailsa Craig野生型番茄為試驗材料。

        1.1.2 主要試劑 RNAiso Plus(Trizol)購自寶生物(TaKaRa)工程(大連)有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量試劑盒均購于南京諾唯贊生物科技股份有限公司;在上海生工生物工程股份有限公司(https://www.sangon. com/)進(jìn)行引物合成。

        1.2 方法

        1.2.1 材料培養(yǎng)及試驗處理 將番茄種子清洗、浸種、催芽,播種;待“三葉一心”時選取長勢良好、大小一致的幼苗,將其根系表面洗凈,定植于1/2倍Hoagland營養(yǎng)液中進(jìn)行不同磷水平處理。其中正常磷處理的KH2PO4濃度為0.66 mmol/L,低磷處理的KH2PO4濃度為0.066 mmol/L。待緩苗5 d后換1倍營養(yǎng)液開始處理,在脅迫處理0 d和18 d后取番茄幼苗根系和葉片組織,液氮速凍后置于?80℃保存,用于各生理生化指標(biāo)的測定。

        1.2.2 番茄SlWRKY6基因的克隆及農(nóng)桿菌介導(dǎo)的番茄遺傳轉(zhuǎn)化 根據(jù)NCBI中SlWRKY6的Gene ID(101247683),從Sol Genomics Network網(wǎng)站下載CDS序列。利用Primer5設(shè)計特異性引物,參照周濤等[15]和王茹等[16]的方法構(gòu)建SlWRKY6基因的過表達(dá)和干擾載體。將測序正確的菌液提取質(zhì)粒,通過凍融法轉(zhuǎn)入根癌農(nóng)桿菌中,篩選單克隆陽性菌株進(jìn)行后續(xù)侵染。將成熟的番茄種子溫湯浸種消毒后,均勻地播在MS固體培養(yǎng)基上。待番茄子葉完全展開時,在超凈臺中將葉片兩端切去開始預(yù)培養(yǎng)3-4 d,獲得番茄野生型植株的外植體。將含有過表達(dá)和RNAi重組質(zhì)粒的農(nóng)桿菌菌液培養(yǎng)至OD600值為0.6,5 000 r/min離心10 min,將收集菌體用MS液體培養(yǎng)基重懸至OD600=0.4。將外植體置于重懸好的菌液中侵染,暗培養(yǎng)2 d后,進(jìn)行正常光下培養(yǎng),開始芽誘導(dǎo)分化、生根以及抗性植株篩選等步驟。

        1.2.3 RNAi?SlWRKY6和OE?SlWRKY6陽性轉(zhuǎn)基因植株的鑒定 隨機(jī)稱取0.2 g已形成完整幼小植株的組織,進(jìn)行DNA的提??;選取載體上一段序列和基因上一段序列設(shè)計引物進(jìn)行PCR檢測,將最終獲得的陽性植株即T0代轉(zhuǎn)基因番茄移栽到田間留種。其中PCR反應(yīng)體系為20 μL:DNA 4 μL,F(xiàn)orword Prim?er(10 μmol/L)1 μL,Reverse Primer(10 μmol/L)1 μL,2×Rapid Taq Mastermix 10 μL,ddH2O 4 μL。PCR反應(yīng)程序為:預(yù)變性 95℃ 3 min;變性 95℃ 15 s,退火 55℃ 15 s,延伸 72℃ 30 s,35次循環(huán);終止延伸 72℃ 5 min。檢測過表達(dá)轉(zhuǎn)基因植株引物為表1中JC?WRKY6?F和JC?WRKY6?R;檢測干擾轉(zhuǎn)基因植株引物為表1中JC?RNAiWRKY6?F和JC?RNAi?WRKY6?R。將收獲的T0代種子浸種催芽播于穴盤中,待三葉一心轉(zhuǎn)移至溫室中培養(yǎng),獲得T1代轉(zhuǎn)基因植株。按照該步驟繼續(xù)傳代培養(yǎng)至T2代,對T2代轉(zhuǎn)基因番茄幼苗再次進(jìn)行PCR檢測(PCR體系和擴(kuò)增體系同上)和RT?qPCR檢測(RT?qPCR體系和擴(kuò)增體系見1.2.4),挑選過表達(dá)株系中表達(dá)量較高的兩個株系OE?SlWRKY6?1、OE?SlWRKY6?2,以及干擾株系中表達(dá)量較低的兩個株系RNAi?SlWRKY6?1、RNAi?SlWRKY6?2,用于后續(xù)生理生化指標(biāo)的測定。選取OE?SlWRKY6?1和RNAi?SlWRKY6?1兩個株系的地下部進(jìn)行磷轉(zhuǎn)運(yùn)體家族基因相對表達(dá)量的測定。

        1.2.4 總RNA提取、cDNA合成及實時熒光定量檢測 利用RNAisoPlus(TaKaRa,大連,中國)提取樣品中的RNA,將所得RNA按照金沙生物反轉(zhuǎn)錄試劑盒的說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。使用諾唯贊公司試劑盒合成第一鏈cDNA,反應(yīng)體系為:UnionScript First?strand cDNA Synthesis Mix 4 μL、總RNA 1 μL、dsDNase 1 μL、ddH2O 14 μL?;靹蚝?2℃15 min,95℃ 3 min,在PCR儀上進(jìn)行。采用RT?qPCR方法檢測不同基因的表達(dá)水平,番茄庫中Solyc03g078400被用作Actin內(nèi)參基因,用3次技術(shù)重復(fù)進(jìn)行RT?qPCR擴(kuò)增。其中RT?qPCR反應(yīng)體系為20 μL:cDNA 4 μL,F(xiàn)orword Primer(10 μmol/L)0.4 μL,Reverse Primer(10 μmol/L)0.4 μL,2×ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix 10 μL,ddH2O 5.2 μL。RT?qPCR反應(yīng)程序為:預(yù)變性95℃ 30 s;95℃10 s,60℃ 30 s,40個循環(huán);溶解曲線95℃ 15 s;60℃ 60 s;95℃ 15 s。計算基因相對表達(dá)量的方法采用2-ΔΔCt,本研究中使用的所有熒光定量引物序列均見表1。

        1.2.5 根系與葉片無機(jī)磷含量和酸性磷酸酶活性的測定 隨機(jī)稱取約0.2 g凍樣,加提取液2 mL(0.4 mL TCA+1.6 mL蒸餾水)充分研磨,離心提取上清液。將0.1 mL樣品上清液與1.5 mL試劑(6 mol/L硫酸∶蒸餾水∶2.5%鉬酸銨水溶液∶1%抗壞血酸=1∶4∶2∶2配置)混勻置于45℃水浴保溫30 min,室溫冷卻10 min后于660 nm測定吸光度。由于鉬藍(lán)與磷酸根生成660 nm有特征吸收峰的物質(zhì),即可計算無機(jī)磷含量。隨機(jī)稱取約0.3 g凍樣,加提取液8 mL醋酸-醋酸鈉緩沖溶液(pH 5.8)冰浴充分磨樣,高速冷凍離心提取上清液。將0.2 mL樣品上清液與5 mL 5 mmol/L對硝基苯磷酸二鈉,37℃水浴30 min后加入1 mL 1 mol/L的NaOH溶液結(jié)束反應(yīng)。酸性磷酸酶(ACP)活性通過測量對硝基苯酚在405 nm下的吸光值來評估,一個單位的ACP活性即每克組織在405 nm處每分鐘吸光度單位的變化量[17]。

        1.2.6 根系有機(jī)酸含量的測定 隨機(jī)選取同一處理下3株幼苗的根系用蒸餾水沖洗干凈,加適量液氮研磨成粉末,加入適量的超純水定容到5 mL,室溫水浴超聲提取30 min,離心提上清液,用0.45 μm微孔濾膜,每個處理重復(fù)3次,采用高效液相色譜(HPLC)測定根系中的有機(jī)酸含量。高效液相色譜條件:安捷倫C18柱(XDB?C18,5 μm,4.6 mm ×250 mm);流動相為0.01 mol/L KH2PO4,pH為2.5(磷酸調(diào)節(jié));流速0.5 mL/min;柱溫40℃;進(jìn)樣量10 μL;檢測波長215 nm[18]。

        1.2.7 根系與葉片總磷含量的測定 隨機(jī)選取同一處理下4株幼苗的根系和葉片,用蒸餾水沖洗干凈稱其鮮重記錄,105℃殺青2 h,75℃烘干至恒重后先稱其干重記錄,再磨成粉末過0.25 mm篩。每個處理3個重復(fù),每個重復(fù)稱取0.1-0.2 g樣品。參照梁穎等[19]的方法,采用H2SO4?H2O2消煮。首先將已稱取干樣用5 mL濃H2SO4過夜酸解,第2天將其在消煮爐上先120℃加熱30 min,再380℃加熱1 h后加4-5滴H2O2過氧化氫,重復(fù)此操作直至溶液清澈透明,最后380℃煮20 min以上消除多余H2O2,消解完成。參照梁穎等[19]的方法,采用鉬銻抗比色法測總磷含量。吸取消煮液0.2 mL定容至10 mL,加入兩滴2,4?二硝基苯酚指示劑,滴加4 mol/L NaOH溶液至液體變?yōu)辄S色,再加2 mol/L H2SO4溶液使黃色剛剛褪去,加鉬銻抗顯色劑2 mL后定容至50 mL,室溫?fù)u勻30 min后于700 nm測定吸光度。

        1.2.8 數(shù)據(jù)處理分析 為了獲得可重復(fù)性的結(jié)果,每個處理進(jìn)行3個生物重復(fù)。數(shù)據(jù)采用方差分析(ANOVA)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,均數(shù)比較采用Duncan’s在SPSS 20.0(SPSS Inc., Chicago, IL, USA)中P<0.05水平下進(jìn)行。圖表繪制采用GraphPad prism8.0繪制(GraphPad Software, San Diego,California USA, www. graphpad. Com)。

        2 結(jié)果

        2.1 農(nóng)桿菌介導(dǎo)的番茄遺傳轉(zhuǎn)化以及陽性植株的鑒定

        獲得T0代番茄的過程如圖1?A-C和 E-F所示,經(jīng)傳代培養(yǎng)后獲得T2代轉(zhuǎn)基因植株,在三葉一心時對部分T2代番茄運(yùn)用PCR和qPCR技術(shù)進(jìn)行檢測,結(jié)果如圖1?D, H和圖2所示,共獲得T2代轉(zhuǎn)基因番茄過表達(dá)7株、干擾8株,最終選擇其中表達(dá)量最高的過表達(dá)株系和表達(dá)量最低的干擾株系用于后續(xù)研究。

        圖1 番茄的遺傳轉(zhuǎn)化和T2代番茄的 PCR 驗證Fig. 1 Genetic transformation in tomato and PCR validation in the tomato with the T2 generation

        圖2 RT-qPCR檢測T2代轉(zhuǎn)基因番茄植株RNAi-WRKY6和OE-WRKY6中WRKY6的表達(dá)量Fig. 2 Expressions of WRKY6 in RNAi-WRKY6 and OEWRKY6 in T2 generation transgenic tomato plants detected by RT-qPCR

        2.2 在低磷脅迫下轉(zhuǎn)基因番茄的表型觀察和生理生化指標(biāo)的測定

        2.2.1 在低磷脅迫下轉(zhuǎn)基因番茄的表型變化 低磷處理18 d后,過表達(dá)株系莖稈粗壯、葉片伸展且色澤鮮艷、生長趨勢良好;而干擾株系莖稈細(xì)弱、葉片卷曲枯黃、生長勢較弱(圖3)。從表型觀察可得,SlWRKY6過表達(dá)顯著提高了番茄植株的耐低磷性。在低磷條件下,與WT相比,OE?WRKY6的各項生長指標(biāo)都有顯著變化,其中莖粗、地上鮮重、地下鮮重、地上干重、地下干重、總鮮重、總干重均顯著增加,OE?WRKY6?1分別提高了35.29%、79.75%、104.47%、112.82%、66.82%、88.04%、100.12%;OE?WRKY6?2分別提高了80.58%、102.74%、110.27%、67.13%、88.01%、98.35%。與OE?WRKY6相比,RNAi?WRKY6的各項生長指標(biāo)除株高顯著提高外,莖粗、地上鮮重、地下鮮重、地上干重、地下干重、總鮮重和總干重等均顯著降低(表2)。

        圖3 低磷條件下轉(zhuǎn)基因番茄植株RNAi-WRKY6和OE-WRKY6的表型觀察Fig. 3 Phenotypes of transgenic tomato plant RNAi-WRKY6 and OE-WRKY6 under low phosphorus conditions

        2.2.2 低磷脅迫下不同轉(zhuǎn)基因番茄植株無機(jī)磷含量和酸性磷酸酶活性的測定 在處理0 d時,WT和RNAi?WRKY6葉片的無機(jī)磷含量顯著低于OE?WRKY6;而WT和OE?WRKY6根系的無機(jī)磷含量顯著高于RNAi?WRKY6。低磷脅迫處理后,不同基因型番茄植株葉片和根系的無機(jī)磷含量均呈下降趨勢,其與處理時間呈負(fù)相關(guān)關(guān)系。在處理18 d時,OE?WRKY6葉片和根系的無機(jī)磷含量仍然顯著高于WT和RNAi?WRKY6,與WT相比,RNAi?WRKY6葉片的無機(jī)磷含量較少但未形成顯著差異,但根系無機(jī)磷顯著增高。低磷脅迫下,OE?WRKY6?1和OE?WRKY6?2葉片和根系的無機(jī)磷含量較WT分別顯著增加了13.25%、13.39%和46.65%、38.79%(圖4)。

        圖4 低磷條件下轉(zhuǎn)基因番茄植株RNAi-WRKY6和OEWRKY6無機(jī)磷含量的測定Fig. 4 Determination of inorganic phosphorus content in transgenic tomato plants RNAi-WRKY6 and OEWRKY6 under low phosphorus condition

        在未處理時,WT和RNAi?WRKY6葉片與根系的酸性磷酸酶活性顯著低于OE?WRKY6,其中RNAi?WRKY6?2根系的酸性磷酸酶活性顯著低于OE?WRKY6?1,且降低了28.75%。低磷脅迫后,不同基因型番茄幼苗葉片與根系的酸性磷酸酶活性均顯著提高,其與處理時間呈正相關(guān)關(guān)系。在低磷處理18 d時,WT和RNAi?WRKY6葉片的酸性磷酸酶活性顯著高于OE?WRKY6,而WT和RNAi?WRKY6根系的酸性磷酸酶活性顯著低于OE?WRKY6。其中與RNAi?WRKY6?2相比,OE?WRKY6?1葉片的酸性磷酸酶活性顯著降低了27.23%;與RNAi?WRKY6?1相比,OE?WRKY6?1根系的酸性磷酸酶活性顯著提高了17.53%(圖5)。

        圖5 低磷條件下轉(zhuǎn)基因番茄植株RNAi-WRKY6和OEWRKY6酸性磷酸酶活性的測定Fig 5 Determination of acid phosphatase activity in transgenic tomato plant RNAi-WRKY6 and OEWRKY6 under low phosphorus condition

        2.2.3 低磷脅迫下不同轉(zhuǎn)基因番茄植株全磷含量的測定 處理0 d時,WT、RNAi?WRKY6和OE?WRKY6的葉片全磷含量均無顯著差異;處理18 d后,3種基因型番茄植株葉片的全磷含量均呈下降趨勢。低磷脅迫下,與RNAi?WRKY6?2相比,OE?WRKY6?1葉片的全磷含量顯著提高了18.50%。處理0 d時,與OE?WRKY6相比,RNAi?WRKY6根系的全磷含量均顯著提高;在處理18 d后,3種基因型番茄植株的根系全磷含量均呈下降趨勢。與WT相比,OE?WRKY6根系的全磷含量顯著提高,OE?WRKY?1和OE?WRKY?2分別提高了21.23%、23.80%;而RNAi?WRKY6根系的全磷含量卻顯著下降,RNAi?WRKY6?1和RNAi?WRKY6?2分別下降了25.82%、26.71%。在處理18 d后,RNAi?WRKY6?2相較于OE?WRKY6?2的根系全磷含量降低更為顯著,降低了40.80%(圖6)。

        圖6 低磷條件下轉(zhuǎn)基因番茄植株RNAi-WRKY6和OEWRKY6全磷含量的測定Fig. 6 Determination of total phosphorus content of RNAi-WRKY6 and OE-WRKY6 transgenic tomato plants under low phosphorus condition

        2.2.4 低磷脅迫下不同轉(zhuǎn)基因番茄植株根系有機(jī)酸含量的測定 處理0 d時,與WT相比,OE?WRKY6根系中4種有機(jī)酸含量無顯著差異,而RNAi?WRKY6根系中檸檬酸和琥珀酸顯著降低,RNAi?WRKY6?1和RNAi?WRKY6?2分別降低了31.58%、25.34%和34.23%、27.46%。低磷脅迫后,不同基因型番茄幼苗根系中4種有機(jī)酸含量大部分都呈下降趨勢,只有OE?WRKY6根系中的琥珀酸含量處理后較未處理前顯著增加,其中OE?WRKY6?1和OE?WRKY6?2分別提高了27.95%和25.23%。在處理18 d時,草酸和琥珀酸的含量在WT和OE?WRKY6根系中有顯著差異。低磷條件下,與WT相比,OE?WRKY6?1和OE?WRKY6?2根系中草酸、琥珀酸的含量分別顯著提高了23.43%、81.77%和23.83%、81.04%。與低磷脅迫后的WT相比,RNAi?WRKY6?1中的草酸、蘋果酸、檸檬酸和琥珀酸含量分別顯著降低了57.56%、57.99%、30.96%、51.59%,RNAi?WRKY6?2中的含量分別顯著降低了58.90%、63.91%、37.62%、56.56%(表3)。

        表3 低磷條件下轉(zhuǎn)基因番茄植株RNAi-WRKY6和OE-WRKY6根系有機(jī)酸含量的測定Table 3 Determination of organic acid content in the roots of transgenic tomato plant RNAi-WRKY6 and OE-WRKY6 under low phosphorus condition

        2.2.5 低磷脅迫下不同轉(zhuǎn)基因番茄植株根系磷轉(zhuǎn)運(yùn)體表達(dá)量的測定 在未處理時,LePT1、LePT2和LePT3在WT、RNAi?WRKY6和OE?WRKY6植株中的相對表達(dá)量均呈現(xiàn):OE?WRKY6>W(wǎng)T>RNAi?WRKY6;在低磷處理18 d后,LePT2在WT、RNAi?WRKY6和OE?WRKY6植株中的表達(dá)量相較于0 d時均有大幅度的提高,而LePT3在3種基因型植株中的表達(dá)量卻均呈下降趨勢。與LePT2、LePT3不同,低磷處理18 d后,LePT1的表達(dá)量在WT和RNAi?WRKY6植株中顯著增加,呈上升趨勢,而在OE?WRKY6中卻顯著降低,呈下降趨勢(圖7)。

        圖7 RNAi-WRKY6和OE-WRKY6轉(zhuǎn)基因番茄根系中磷轉(zhuǎn)運(yùn)體表達(dá)量的測定Fig. 7 Determination of phosphorus transporter expressions in the roots of transgenic tomato plant RNAi-WRKY6 and OE-WRKY6

        3 討論

        3.1 低磷脅迫下SlWRKY6影響番茄幼苗表型變化和生物量分配

        植株表型和生長特性的變化是植株主動適應(yīng)逆境脅迫最顯著的表現(xiàn)。低磷脅迫下,植株會根據(jù)外界環(huán)境缺磷的程度調(diào)節(jié)地上部、地下部生物積累量,而根系是最先受到脅迫影響的器官[20]。研究表明,在適應(yīng)低磷脅迫的過程中,小麥(Triticum aestivum L.)、玉米(Zea mays L.)等作物可通過增強(qiáng)根部能量物質(zhì)代謝和促進(jìn)地上部光合產(chǎn)物的轉(zhuǎn)移來維持地上部的生長發(fā)育[21]。本研究中,低磷脅迫下過表達(dá)植株長勢較為粗壯,干擾植株較為細(xì)弱;生物量方面更是差異顯著,過表達(dá)植株的地下部、地上部生物量均顯著高于野生型和干擾株系。這說明過表達(dá)WRKY6植株具有較強(qiáng)適應(yīng)低磷環(huán)境的能力,可將較多能量物質(zhì)優(yōu)先分配到根系,促使根系生長發(fā)育,改善根冠結(jié)構(gòu),從而吸收更多的磷素供地上部正常生長發(fā)育[20]。然而當(dāng)植株體內(nèi)磷積累較多時,會造成幼苗生長遲緩,部分出現(xiàn)矮化現(xiàn)象。例如,在敲除FvPHO2基因后草莓(Fragaria×ananassa Duch.)葉片中磷含量升高且株高降低,在擬南芥和水稻(Oryza sativa L.)等模式植物中也有此類現(xiàn)象發(fā)生。本研究中,低磷脅迫下OE?SlWRKY6植株葉片與根系的全磷含量顯著高于RNAi?SlWRKY6,導(dǎo)致OE?SlWRKY6植株矮小粗壯,具有較強(qiáng)適應(yīng)低磷環(huán)境的能力[22]。

        3.2 低磷脅迫下SlWRKY6增強(qiáng)番茄幼苗酸性磷酸酶活性和無機(jī)磷含量

        低磷脅迫下植物為了提高對磷吸收利用的能力,不僅在根系形態(tài)結(jié)構(gòu)上產(chǎn)生變化,而且在生理代謝中也會主動提高獲得介質(zhì)中磷素的能力,以緩解低磷脅迫造成的損傷[23]。其中,酸性磷酸酶活性的增加被認(rèn)為是植物適應(yīng)低磷脅迫的普遍反應(yīng),酸性磷酸酶能將復(fù)雜的有機(jī)磷化合物水解為可被吸收利用的無機(jī)磷,促進(jìn)有機(jī)磷源的再利用,進(jìn)而提高磷素的利用率[24]。本研究結(jié)果顯示,番茄植株中酸性磷酸酶活性變化與其他植株類似,受低磷信號誘導(dǎo)而升高,低磷脅迫下野生型、過表達(dá)、干擾植株中根系與葉片酸性磷酸酶活性均逐漸增加,表明低磷環(huán)境下植物體內(nèi)的酸性磷酸酶直接參與了植物體內(nèi)各種磷化合物的再利用。由于基因型不同,低磷誘導(dǎo)的酸性磷酸酶活性也存在較大差異[25]。當(dāng)磷正常培養(yǎng)時,不同基因型植株體內(nèi)均積累了較多的無機(jī)磷,其中OE?SlWRKY6植株中無機(jī)磷含量最高且酸性磷酸酶活性最強(qiáng),而在轉(zhuǎn)移至低磷處理18 d后,由于OE?SlWRKY6植株前期未脅迫時自身儲備較多無機(jī)磷且葉片有較強(qiáng)的磷儲存能力,因此過表達(dá)株系中葉片的酸性磷酸酶活性較低、變化幅度較小。但隨著植株體內(nèi)積累無機(jī)磷的逐漸消耗和外界環(huán)境中較少的磷素供應(yīng),強(qiáng)烈的低磷信號觸發(fā)了根系適應(yīng)低磷脅迫的機(jī)制,最終引起根系酸性磷酸酶活性的升高。其中,在低磷脅迫下OE?SlWRKY6植株根系的酸性磷酸酶活性最高,表明OE?SlWRKY6植株根系能有效促進(jìn)有機(jī)磷化合物水解,將水解得到的無機(jī)磷轉(zhuǎn)運(yùn)到地上部分,從而提高磷的吸收利用率。綜上可得,低磷脅迫下過表達(dá)株系酶活的增加幅度、活性以及無機(jī)磷含量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于野生型和干擾株系,表明SlWRKY6超量表達(dá)能提高體內(nèi)酸性磷酸酶活性,有機(jī)磷庫中磷脂等有機(jī)物的磷素會被高活性的酸性磷酸酶高效水解活化,產(chǎn)生更多的無機(jī)磷應(yīng)對低磷脅迫,有效提高植株磷的再利用效率,緩解植株缺磷的狀況,保證其正常生長發(fā)育。因此,過表達(dá)SlWRKY6在低磷脅迫下,對磷的循環(huán)利用具有明顯的優(yōu)勢,是其有效應(yīng)對低磷脅迫中的一個重要機(jī)制。

        3.3 低磷脅迫下SlWRKY6增強(qiáng)番茄幼苗根系的有機(jī)酸含量

        外界不利的環(huán)境因素和植物體內(nèi)養(yǎng)分的豐缺,都能一定程度上影響有機(jī)酸的合成和積累[26]。有機(jī)酸作為三羧酸循環(huán)的主要產(chǎn)物,也是植物體物質(zhì)和能量代謝的重要中間產(chǎn)物,不僅可以反映植物的磷素吸收、運(yùn)輸、積累等代謝過程,而且在應(yīng)對營養(yǎng)脅迫中扮演著重要角色[27]。本研究中,低磷下番茄根系除琥珀酸外,其余3種有機(jī)酸含量均顯著下降,這是由于已適應(yīng)低磷環(huán)境的番茄根系對有機(jī)酸的合成和積累表現(xiàn)出明顯的抑制作用[28]。OE?SlWRKY6植株根系的4種有機(jī)酸含量均顯著高于RNAi?WRKY6株系,說明低磷脅迫下,OE?SlWRKY6植株通過提高根系有機(jī)酸的合成能力以適應(yīng)低磷脅迫。有研究表明,酸性磷酸酶活性與有機(jī)酸含量呈正相關(guān)關(guān)系[29],本研究中低磷脅迫下OE?SlWRKY6植株根系的酸性磷酸酶活性和有機(jī)酸含量均最高,更加充分驗證SlWRKY6超表達(dá)后可提高植株對低磷脅迫的適應(yīng)性。蘋果酸是過表達(dá)株系與干擾株系中含量差異較為懸殊的有機(jī)酸之一,其不僅能活化難溶性磷酸鹽釋放無機(jī)磷,還能作為滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)提高細(xì)胞液濃度,在增強(qiáng)植株抗逆性方面發(fā)揮作用;這也充分印證了OE?SlWRKY6植株在應(yīng)對低磷脅迫時自身具有較高的適應(yīng)性[30]。TCA循環(huán)中琥珀酸主要是由琥珀酰CoA受琥珀酰CoA合成酶催化生成的,這一過程中同時還生成了GTP或ATP,因此其也是TCA循環(huán)中唯一一次底物水平磷酸化[31]。OE?SlWRKY6植株根系在低磷脅迫后琥珀酸含量顯著增加,而野生型與RNAi?WRKY6的含量顯著降低,與此同時,OE?SlWRKY6植株細(xì)胞能量狀態(tài)指示劑ATP也會隨之增加。植物體代謝過程中的細(xì)胞高能狀態(tài)指示劑除ATP外還有NADH和檸檬酸等,他們能反映出植物體在應(yīng)對不良外界環(huán)境時自身能量充足或匱乏的狀態(tài)[32]。低磷脅迫下,過表達(dá)SlWRKY6植株根系中檸檬酸的含量也是3種基因型中最高的,表明OE?SlWRKY6株系在外界磷供給不足時,自身具有強(qiáng)大的能量代謝循環(huán)系統(tǒng)和適應(yīng)低磷脅迫機(jī)制,通過協(xié)同調(diào)控根系有機(jī)酸的合成來保證植物體正常的能量供給,進(jìn)而適應(yīng)低磷脅迫。

        3.4 低磷脅迫下SlWRKY6影響番茄幼苗根系磷轉(zhuǎn)運(yùn)體的表達(dá)

        研究表明,外界磷素供應(yīng)濃度可直接影響植株體內(nèi)的磷素水平,進(jìn)而誘導(dǎo)磷轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的表達(dá),而磷轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的轉(zhuǎn)錄調(diào)控直接或間接地調(diào)控著磷的獲得,對植株在低磷條件下生理代謝平衡起著重要作用[33]。當(dāng)外界磷素供應(yīng)不足時,植株自身進(jìn)化出一系列生理生化機(jī)制實現(xiàn)磷的活化、轉(zhuǎn)運(yùn)以及再利用,例如大分子物質(zhì)核酸、磷脂中的有機(jī)磷被酸性磷酸酶等水解活化、液泡中暫儲多余的無機(jī)磷被轉(zhuǎn)運(yùn)以及營養(yǎng)器官中活化的無機(jī)磷被轉(zhuǎn)運(yùn)到新生長中心再利用[34]。高親和磷轉(zhuǎn)運(yùn)體在介導(dǎo)這些植株磷素吸收運(yùn)輸過程中發(fā)揮著重要的作用,研究表明低磷下,番茄植株中負(fù)責(zé)體內(nèi)磷素轉(zhuǎn)運(yùn)分配的LePT1和負(fù)責(zé)根系吸收磷素的LePT2表達(dá)量均顯著增加[35],與本研究結(jié)果一致,低磷脅迫后,野生型和RNAi?SlWRKY6根系的LePT1、LePT2表達(dá)量顯著升高進(jìn)而提高磷的吸收利用率,但過表達(dá)植株根系中的LePT1、LePT3的表達(dá)量卻在低磷脅迫后顯著降低。這是由于過表達(dá)植株在正常條件下,根系磷轉(zhuǎn)運(yùn)體表達(dá)量和酸性磷酸酶活性較高,能水解出較多的無機(jī)磷供利用,且自身有較充足的無機(jī)磷儲備。因此,OE?SlWRKY6植株在面臨低磷脅迫時體內(nèi)的磷素水平所受影響較小,其根系與葉片的全磷含量顯著高于野生型和RNAi?WRKY6植株,同時也表明過表達(dá)植株內(nèi)部具有高效調(diào)節(jié)利用磷素機(jī)制可有效應(yīng)對低磷脅迫的發(fā)生。有研究證實,WRKY21和WRKY108可作為磷饑餓條件下植株自身的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)器,與OsPht1;1的W?box區(qū)域結(jié)合,正向調(diào)控植株耐低磷性[13]。這與本研究中WRKY6基因相對表達(dá)量較高的植株具有較強(qiáng)吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)和再利用磷酸鹽能力的表現(xiàn)一致,但WRKY6是否直接調(diào)控PHT家族基因的表達(dá),進(jìn)而對番茄植株磷素穩(wěn)態(tài)產(chǎn)生影響仍有待進(jìn)一步試驗驗證。最終可得,低磷條件下過表達(dá)SlWRKY6基因能增強(qiáng)番茄植株的耐低磷性,提高磷的再活化、再轉(zhuǎn)運(yùn)和再利用,緩解外界磷素供應(yīng)不足造成的損傷。該研究也為進(jìn)一步揭示番茄根系適應(yīng)低磷脅迫的分子機(jī)制提供了重要理論依據(jù)。

        4 結(jié)論

        番茄中WRKY6基因在響應(yīng)低磷脅迫過程中起著重要作用,其可通過增強(qiáng)酸性磷酸酶活性、提高有機(jī)酸合成量和改善根系與葉片磷素轉(zhuǎn)運(yùn)分配等途徑,增強(qiáng)番茄植株對外界磷素的吸收和體內(nèi)磷營養(yǎng)的重分配再利用,最終實現(xiàn)磷的高效吸收利用。

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