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        番木瓜兩性株高溫條件下花性轉(zhuǎn)變的轉(zhuǎn)錄組分析

        2023-09-10 09:49:58周陳平楊敏郭金菊鄺瑞彬李慶萌楊護(hù)黃炳雄魏岳榮
        果樹(shù)學(xué)報(bào) 2023年3期
        關(guān)鍵詞:番木瓜高溫

        周陳平 楊敏 郭金菊 鄺瑞彬 李慶萌 楊護(hù) 黃炳雄 魏岳榮

        摘要:【目的】探索番木瓜兩性株高溫條件下花性轉(zhuǎn)變的分子機(jī)制,篩選花性調(diào)控相關(guān)基因,為培育耐高溫番木瓜新品種提供理論依據(jù)?!痉椒ā恳栽诟邷丨h(huán)境(39~40 ℃)下采集的番木瓜兩性株的雄花(雌蕊退化)和兩性花(完全花)為試驗(yàn)材料,利用高效液相色譜法測(cè)定兩者內(nèi)源激素含量,利用RNA-seq 技術(shù)分析兩者間的差異表達(dá)基因,并通過(guò)qRTPCR進(jìn)行驗(yàn)證,用Plant CARE在線軟件分析花發(fā)育相關(guān)基因啟動(dòng)子順式元件?!窘Y(jié)果】?jī)尚曰ㄒ蚁┖铣汕绑w1-氨基環(huán)丙烷羧酸(ACC)、吲哚-3-乙酸(IAA)、反式玉米素(tZ)、水楊酸(SA)、茉莉酸(JA)含量顯著高于雄花,兩者脫落酸(ABA)和赤霉素A3(GA3)含量無(wú)顯著差異。從轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中共獲得27 793 個(gè)表達(dá)基因,篩選到517 個(gè)差異表達(dá)基因(DEG),其中214 個(gè)基因在雄花中上調(diào)表達(dá),303 個(gè)基因下調(diào)表達(dá)。這些差異表達(dá)基因主要富集到轉(zhuǎn)錄與調(diào)控、植物激素響應(yīng)與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、細(xì)胞分化與器官生長(zhǎng)調(diào)控、質(zhì)膜組分、氧化應(yīng)激等GO條目和植物激素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、植物-病原體相互作用、促絲裂原活化蛋白激酶信號(hào)通路等KEGG通路上。通過(guò)基因功能注釋?zhuān)Y選到70 個(gè)植物激素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、響應(yīng)、生物合成及代謝相關(guān)差異表達(dá)基因,其中52 個(gè)基因在雄花中下調(diào)表達(dá),18 個(gè)基因上調(diào)表達(dá)。鑒定到ANT、ANT2、CIB1、HHO5、ZIP21、SAP 等6 個(gè)花發(fā)育相關(guān)差異表達(dá)基因,均在雄花中下調(diào)表達(dá),其中SAP 基因在兩性花中特異表達(dá)。除ANT2未查找到相應(yīng)啟動(dòng)子序列外,ANT、CIB1、HHO5、SAP、ZIP21啟動(dòng)子含植物激素和逆境相關(guān)順式作用元件。

        選取17個(gè)花發(fā)育和植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因進(jìn)行qRT-PCR分析,結(jié)果與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)一致?!窘Y(jié)論】番木瓜兩性株在高溫條件下花性轉(zhuǎn)變可能與花芽ACC、IAA、tZ、SA、JA含量下降及ANT、ANT2、CIB1、HHO5、SAP基因下調(diào)表達(dá)有關(guān)。

        關(guān)鍵詞:番木瓜;兩性株;高溫;性別轉(zhuǎn)變;基因差異表達(dá);植物激素

        中圖分類(lèi)號(hào):S667.9 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1009-9980(2023)03-0457-14

        番木瓜(Carica papaya L.)植株性別分為雄株、雌株和兩性株3 種類(lèi)型,其中兩性株果肉厚、品質(zhì)優(yōu),與雌果相比,具有更高的商品價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值[1-4]。番木瓜的性別由一對(duì)性染色體控制,即:雌株基因型為XX,雄株基因型為XY,兩性株基因型為XYh[5-6]。與遺傳性較穩(wěn)定的X染色體相比,雄性特異的Y 染色體(MSY)和兩性特異的Yh 染色體(HSY)被高度甲基化或異染色質(zhì)化,核酸多態(tài)性較高[7-8]。HSY 和MSY 染色體大約8.1 Mb,是番木瓜最大的1 號(hào)染色體,98.9%~99.6%的序列具有相似性,在非同源區(qū)段有1887 個(gè)插入缺失和21 088 個(gè)SNP,包含27 個(gè)差異基因,但大部分都不是性別決定基因[9-12]。其中,SVP-like 被認(rèn)為是雌性抑制基因,在MSY染色體上含MADS-box 和K-box,而在HSY染色體上只含K-box,但至今尚無(wú)足夠證據(jù)表明SVP-like參與番木瓜性別分化[3,13-14]。

        植物性別決定存在兩種機(jī)制,第一是遺傳型性別決定,第二是環(huán)境型性別決定[15]。遺傳因子主導(dǎo)番木瓜株性,外界環(huán)境影響花性轉(zhuǎn)變,而花性轉(zhuǎn)變主要決定于溫度[16-17]。番木瓜的花性分化是在性別決定遺傳因子的基礎(chǔ)上進(jìn)行雄性、雌性或兩性性狀的分化和發(fā)育,與外界因素有關(guān),當(dāng)內(nèi)外因素有利于某一性別的發(fā)育時(shí),就有可能產(chǎn)生跟性別決定遺傳物質(zhì)不一致的結(jié)果,在高溫、干旱和缺氮等外界壓力下,會(huì)導(dǎo)致番木瓜雌性不育[18]。番木瓜最適生長(zhǎng)溫度為26~32 ℃,當(dāng)外界環(huán)境溫度高于最適生長(zhǎng)溫度5 ℃以上時(shí),就會(huì)對(duì)植物生長(zhǎng)形成高溫脅迫[1]。隨外界環(huán)境由低溫到高溫,番木瓜兩性株的花型從雌型兩性花(雄蕊心皮化)轉(zhuǎn)變?yōu)殚L(zhǎng)圓形兩性花(完全花),再轉(zhuǎn)變?yōu)樾坌蛢尚曰ǎù迫锇l(fā)育不全)和雄花(雌蕊完全退化),當(dāng)環(huán)境溫度過(guò)低時(shí),番木瓜雄株也會(huì)形成兩性花[2-3,19]。這可能與番木瓜花芽分化過(guò)程中植物激素濃度變化及穩(wěn)態(tài)有關(guān)[20-21]。

        中國(guó)番木瓜主產(chǎn)區(qū)屬熱帶、南亞熱帶地區(qū),高溫季節(jié)時(shí)間長(zhǎng)。番木瓜兩性株在高溫條件下性別轉(zhuǎn)變導(dǎo)致間斷結(jié)果和產(chǎn)量下降是制約番木瓜高效生產(chǎn)的主要因素之一。目前,有關(guān)高溫導(dǎo)致番木瓜兩性株性別轉(zhuǎn)變的分子機(jī)制尚未完全闡明。筆者在本研究中基于番木瓜轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),篩選番木瓜兩性株雄花和兩性花的差異表達(dá)基因,并分析兩者的內(nèi)源激素含量差異,為探索番木瓜兩性株在高溫條件下花性轉(zhuǎn)變的分子調(diào)控機(jī)制提供新視角,為培育耐高溫番木瓜新品種奠定理論依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 材料及取樣

        以廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹(shù)研究所自主選育的番木瓜品種GZY3-6 兩性株為研究對(duì)象。選取25 株長(zhǎng)勢(shì)相近的組培苗,2019 年3 月15 日定植于廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹(shù)研究所番木瓜資源圃,常規(guī)栽培管理,生長(zhǎng)狀態(tài)良好。2019 年7 月16 日11:00—13:00(氣溫39~40 ℃)采集長(zhǎng)度<5 mm的主花芽,利用體視鏡區(qū)分雌蕊退化的雄花和有功能性雌蕊的兩性花(圖1),用液氮速凍后貯存于-80 ℃超低溫冰箱備用。樣品委托杭州聯(lián)川生物技術(shù)股份有限公司進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序與分析。

        1.2 內(nèi)源激素含量測(cè)定

        取25 mg 樣品,加入1 mL 在-40 ℃下預(yù)冷的50%乙腈水溶液,勻漿4 min,冰水浴超聲5 min,勻漿超聲步驟重復(fù)3 次,4 ℃下12 000 r · min-1 離心15 min,取上清液,氮?dú)獯蹈桑尤?0 μL 10%乙腈水溶液復(fù)溶,移至帶濾膜的EP管中,4 ℃下12 000 r·min-1離心15 min,取上清液,利用EXIONLC System 超高效液相色譜儀和SCIEX 6500 QTRAP+三重四極桿質(zhì)譜儀測(cè)定內(nèi)源激素含量。設(shè)4 個(gè)生物學(xué)重復(fù),每個(gè)生物學(xué)重復(fù)5~10個(gè)花芽。

        色譜柱:Waters ACQUITY UPLC CSH C18(150 mm × 2.1 mm,1.7 μm)。流動(dòng)相A:0.01%甲酸水溶液;流動(dòng)相B:0.01%甲酸乙腈溶液。柱溫40 ℃,樣品盤(pán)4 ℃,進(jìn)樣量5 μL。離子源參數(shù):溫度475 ℃,離子噴霧電壓4 500 V(正離子模式)/-4 500 V(負(fù)離子模式),離子源氣體1、氣體2 和簾氣分別設(shè)置為30、30 和40 psi。通過(guò)SCIEX Analyst Work StationSoftware 1.6.3 和Sciex MultiQuant 3.0.3 軟件采集質(zhì)譜數(shù)據(jù)和定量分析。

        1.3 轉(zhuǎn)錄組測(cè)序與分析

        用TRIzol 提取番木瓜花芽總RNA,NanoDROPND-1000 對(duì)總RNA的濃度與純度進(jìn)行質(zhì)控。使用Oligo(dT)磁珠富集帶多聚腺苷酸mRNA,NEBFragmentation Module對(duì)mRNA隨機(jī)打斷,將片段化的mRNA 合成cDNA 第一條鏈,隨后加入RNaseH和DNA polymerase Ⅰ合成cDNA 第二條鏈。加入dUTP Solution,將雙鏈cDNA末端補(bǔ)齊為平末端,加A尾、連接測(cè)序接頭。cDNA經(jīng)消化后,在95 ℃預(yù)變性3 min,98 ℃變性15 s,共8個(gè)循環(huán),60 ℃退火15 s,72 ℃延伸30 s,最后72 ℃延伸5 min,形成300 bp 左右的cDNA 文庫(kù)。使用Illumina Novaseq 6000 進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序模式為PE150。設(shè)3 個(gè)生物學(xué)重復(fù),每個(gè)生物學(xué)重復(fù)5~10 個(gè)花芽。

        測(cè)序后獲得原始序列(raw reads),通過(guò)cutadapt軟件去除接頭、重復(fù)序列、低質(zhì)量序列,獲得過(guò)濾序列(clean reads)。使用HISAT2 v2.0.4 將得到的過(guò)濾序列比對(duì)到番木瓜參考基因組(https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html#!bulk?org=Org_Cpapaya)上,用String Tie 軟件對(duì)基因或轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行初組裝,用gffcompare 軟件對(duì)轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行檢測(cè)和組裝注釋。

        利用FPKM(指每百萬(wàn)堿基對(duì)測(cè)序的轉(zhuǎn)錄本序列片段的每千堿基片段的預(yù)期數(shù)量)計(jì)算基因表達(dá)水平。通過(guò)p 值< 0.05 且|log2(fold change)| ≥ 1 為閾值篩選差異表達(dá)基因(DEG)。

        1.4 差異表達(dá)基因的功能注釋與富集分析

        利用R包GOseq 軟件進(jìn)行GO(Gene Ontology)富集分析,獲得生物學(xué)過(guò)程、細(xì)胞組成和分子功能的GO注釋結(jié)果。利用KOBAS 軟件對(duì)差異表達(dá)基因進(jìn)行KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)通路富集分析。以p 值<0.05 定義為GO項(xiàng)或KEGG通路顯著富集。

        1.5 花發(fā)育相關(guān)基因啟動(dòng)子順式作用元件分析

        從番木瓜參考基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中下載花發(fā)育相關(guān)基因的啟動(dòng)子序列(ATG 上游2000 bp 序列),用PlantCARE (http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)網(wǎng)站預(yù)測(cè)啟動(dòng)子序列的順式作用元件,利用TBtools 軟件對(duì)預(yù)測(cè)結(jié)果進(jìn)行可視化繪圖[22]。

        1.6 實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)分析

        選取17 個(gè)花發(fā)育和植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因,用Primer Premier 5 軟件設(shè)計(jì)特異引物(表1)。

        參照周陳平等[23]的方法,使用天根RNAprep Pure 多糖多酚植物總RNA提取試劑盒提取總RNA,用EvoM-MLV RT Mix Kit with gDNA Clean for qPCR 試劑盒合成cDNA 作為PCR 模板,使用Bio-Rad CFX96儀進(jìn)行擴(kuò)增,反應(yīng)體系和程序參照SYBR Green ProTaq HS實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒方法進(jìn)行,以番木瓜肌動(dòng)蛋白基因(CpActin)為內(nèi)參基因。用2- ΔΔCt方法計(jì)算基因相對(duì)表達(dá)量。設(shè)3 個(gè)生物學(xué)重復(fù),每個(gè)生物學(xué)重復(fù)5~10 個(gè)花芽。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 雄花和兩性花中ACC和內(nèi)源激素含量分析

        在番木瓜兩性花中,乙烯合成前體1-氨基環(huán)丙烷羧酸(ACC)、吲哚-3-乙酸(IAA)、反式玉米素(tZ)、水楊酸(SA)、茉莉酸(JA)含量分別是雄花的2.08、1.40、1.81、4.07、1.93 倍,兩者的脫落酸(ABA)和赤霉素A3(GA3)含量無(wú)顯著差異(圖2)。

        2.2 雄花和兩性花轉(zhuǎn)錄組分析

        對(duì)番木瓜兩性株雄花和兩性花樣品進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,共獲得45.17 Gb 原始數(shù)據(jù),過(guò)濾后,樣品的平均序列數(shù)量為7.41 Gb,Q20>99.9%,Q30>98.7%,與參考基因組比對(duì)率超過(guò)88.9%,其中約78.2%比對(duì)到基因組唯一序列(表2)。說(shuō)明轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果可靠性和精準(zhǔn)性較好,可進(jìn)一步分析。

        為分析雄花和兩性花不同表達(dá)水平基因數(shù)量的分布情況,將基因表達(dá)水平劃分為4 個(gè)等級(jí),2 組樣品在4 個(gè)等級(jí)中的基因數(shù)量分布情況相近(圖3-A)。在2 組樣品轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中,共組裝拼接得到27 793 個(gè)基因,不表達(dá)(FPKM<1)的基因數(shù)量約占33.9%,在100>FPKM ≥ 10 區(qū)間的基因數(shù)量最多,占比為39.2%,其次是10>FPKM ≥ 1 區(qū)間,占比為20.3%,F(xiàn)PKM ≥ 100 占比最少。在p 值<0.05 且|log2(fold change)| ≥ 1 的閾值條件下,在雄花和兩性花中共鑒定得到517 個(gè)差異表達(dá)基因,其中214 個(gè)基因上調(diào)表達(dá),303 個(gè)基因下調(diào)表達(dá)(圖3-B)。

        2.3 雄花和兩性花中差異表達(dá)基因GO 注釋與KEGG功能富集分析

        對(duì)番木瓜兩性株雄花和兩性花中517 個(gè)差異表達(dá)基因進(jìn)行GO功能富集分析,主要涉及生物學(xué)過(guò)程、細(xì)胞組成、分子功能。顯著富集(p 值<0.05)在生物學(xué)過(guò)程的有85 項(xiàng)、細(xì)胞組成有11 項(xiàng)、分子功能有49 項(xiàng)。選擇富集最顯著的前50 項(xiàng)條目進(jìn)行展示(表3)。在生物學(xué)過(guò)程中,大多數(shù)基因主要富集到轉(zhuǎn)錄與轉(zhuǎn)錄調(diào)控、植物激素響應(yīng)與信號(hào)調(diào)控、細(xì)胞分化與器官生長(zhǎng)調(diào)控、脅迫響應(yīng)與調(diào)控等相關(guān)的GO條目中。在細(xì)胞組分中,以質(zhì)膜、胞外區(qū)為主。在分子功能中,以轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)域DNA 結(jié)合轉(zhuǎn)錄調(diào)控、DNA 結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子活性、DNA特異序列結(jié)合為主。

        將番木瓜兩性株雄花和兩性花中差異表達(dá)基因比對(duì)到KEGG 數(shù)據(jù)庫(kù)中,共富集到66 個(gè)KEGG 通路。以p 值<0.05 為標(biāo)準(zhǔn),篩選差異表達(dá)基因顯著富集的通路,包括植物激素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、α-亞麻酸代謝、單萜類(lèi)生物合成、亞麻酸代謝、ABC 轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白、植物-病原體相互作用、谷胱甘肽代謝和促絲裂原活化蛋白激酶信號(hào)通路等8 個(gè)KEGG 通路(表4)。顯著富集基因最多的是植物激素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),其次是植物-病原體相互作用、促絲裂原活化蛋白激酶信號(hào)通路等。

        2.4 雄花和兩性花中植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因分析

        植物激素在花器官發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮重要作用。

        為分析番木瓜雄花和兩性花中植物激素相關(guān)基因的表達(dá)情況,通過(guò)差異表達(dá)基因的功能注釋?zhuān)茶b定到70 個(gè)植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因(表5)。在這些基因中,有13 個(gè)基因參與脫落酸信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和響應(yīng)生物學(xué)過(guò)程,其中10 個(gè)基因在雄花中下調(diào)表達(dá),包括脫落酸受體基因PYL4;3 個(gè)基因上調(diào)表達(dá),包括在雄花中特異表達(dá)基因RGGA。

        有20 個(gè)差異表達(dá)基因參與生長(zhǎng)素運(yùn)輸、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、代謝、響應(yīng)等生物學(xué)過(guò)程,除生長(zhǎng)素轉(zhuǎn)運(yùn)基因WAG1 和生長(zhǎng)素響應(yīng)基因SUR48 外,其余18 個(gè)基因在雄花中均下調(diào)表達(dá)。在兩性花中,生長(zhǎng)素合成基因ILL3、GH3.1 和GH3.9 表達(dá)量分別是雄花的9.32、2.17、3.36 倍,4 個(gè)參與生長(zhǎng)素轉(zhuǎn)運(yùn)的SAUR家族基因表達(dá)量是雄花的2.27~5.78倍。

        細(xì)胞分裂素是細(xì)胞分化的重要植物激素。有9個(gè)差異表達(dá)基因參與細(xì)胞分裂素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、代謝、響應(yīng)和生物合成等生物學(xué)過(guò)程。在兩性花中,細(xì)胞分裂素生物合成基因LOG3、LOG5、LOG5.1 表達(dá)量分別是雄花的2.39、2.06、34.06倍。

        另外,參與乙烯、赤霉素、茉莉酸、水楊酸相關(guān)差異表達(dá)基因分別有8、4、13、3 個(gè)。在雄花中,赤霉素生物合成基因GA20OX1 和水楊酸代謝基因SAMT1的表達(dá)量分別是兩性花的2.33 和5.78 倍。而在兩性花中,茉莉酸生物合成基因LOX2、OPR3 和乙烯生物合成基因ACO1 表達(dá)量分別是雄花的4.17、5.54、2.20 倍。

        2.5 雄花和兩性花中花發(fā)育相關(guān)差異表達(dá)基因分析

        在番木瓜雄花和兩性花中,共鑒定到6 個(gè)參與花發(fā)育相關(guān)基因。在兩性花中,ANT、ANT2、CIB1、HHO5、ZIP21 基因表達(dá)量分別是雄花的2.27、2.08、2.17、2.22、2.08 倍,而參與花和胚珠發(fā)育的SAP基因在兩性花中特異表達(dá)(表6)。

        2.6 qRT-PCR驗(yàn)證差異表達(dá)基因

        為驗(yàn)證番木瓜雄花和兩性花轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性和有效性,選取17 個(gè)花發(fā)育和植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因進(jìn)行qRT-PCR 分析,其中4 個(gè)花發(fā)育相關(guān)基因(SAP、ANT、HHO5、ZIP21)、5 個(gè)植物激素生物合成基因(ILL3、LOG5、LOX2、OPPR3、ACO1)、2 個(gè)生長(zhǎng)素運(yùn)輸基因(SAUR66、SAUR67)、5 個(gè)植物激素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)與響應(yīng)基因(JAZ6、JAZ8、JAZ10、bHLH13、WOX9)在雄花中下調(diào)表達(dá),1 個(gè)水楊酸代謝基因(SAMT1)上調(diào)表達(dá)(圖4)。將所得的基因相對(duì)表達(dá)量值轉(zhuǎn)化為log2(fold change),與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的log2(fold change)進(jìn)行比較,兩者上、下調(diào)表達(dá)趨勢(shì)一致,表明轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)真實(shí)、可靠。

        2.7 雄花和兩性花中花發(fā)育相關(guān)基因啟動(dòng)子順式作用元件預(yù)測(cè)

        為了分析花發(fā)育相關(guān)基因ANT、ANT2、CIB1、HHO5、SAP、ZIP21(表6)的啟動(dòng)子元件的組成及可能的調(diào)控作用。除ANT2 基因未查找到相應(yīng)啟動(dòng)子序列外,從番木瓜參考基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中下載其余5個(gè)基因啟動(dòng)子序列,采用PlantCARE 預(yù)測(cè)基因啟動(dòng)子順式作用元件(圖5)。這5 個(gè)基因啟動(dòng)子均含脫落酸響應(yīng)和脅迫響應(yīng)元件,此外,ANT 和CIB1 啟動(dòng)子含生長(zhǎng)素響應(yīng)、無(wú)氧誘導(dǎo)、茉莉酸甲酯響應(yīng)、水楊酸誘導(dǎo)及響應(yīng)元件,HHO5 啟動(dòng)子含茉莉酸甲酯響應(yīng)、水楊酸響應(yīng)與誘導(dǎo)元件,SAP啟動(dòng)子含無(wú)氧誘導(dǎo)、低溫響應(yīng)和赤霉素響應(yīng)元件,ZIP21啟動(dòng)子含無(wú)氧誘導(dǎo)、生長(zhǎng)素響應(yīng)、茉莉酸甲酯響應(yīng)和赤霉素響應(yīng)元件。

        3 討論

        性別分化除受遺傳物質(zhì)的調(diào)控外,環(huán)境條件也可以影響性別轉(zhuǎn)變。高溫是導(dǎo)致番木瓜兩性株的花性向雄花轉(zhuǎn)變的重要環(huán)境因素之一,但其分子調(diào)控機(jī)制尚不清楚。筆者在本研究中對(duì)在高溫環(huán)境下采集的番木瓜兩性株雄花和兩性花進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)組裝拼接得到27 793 個(gè)基因,共鑒定到517 個(gè)差異表達(dá)基因。KEGG 富集分析表明,植物激素響應(yīng)及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路富集最顯著,說(shuō)明植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因可能在番木瓜兩性株高溫趨雄過(guò)程中起到關(guān)鍵作用。

        植物激素通過(guò)相互作用和串?dāng)_,直接或間接參與性別分化和組織形態(tài)發(fā)生,生長(zhǎng)素、乙烯、細(xì)胞分裂素在植物性別分化中起到促進(jìn)雌性化的作用,而赤霉素起到促雄作用[24-27]。孫思瓊等[28]研究表明,外施赤霉素會(huì)增加甜瓜雄花兩性株的雄花數(shù)量。然而,Han 等[29]對(duì)番木瓜兩性株和雌株的花芽外施GA3,并未觀察到花性轉(zhuǎn)雄,反而增加花梗長(zhǎng)度和花序分枝數(shù)量。在本研究中,番木瓜雄花和兩性花GA3含量無(wú)顯著差異,與前人的研究結(jié)果一致。說(shuō)明赤霉素對(duì)不同物種間花性轉(zhuǎn)變的作用存在差異。

        而外施生長(zhǎng)素(萘乙酸)[21]或乙烯利[30]可促進(jìn)番木瓜雄株雌蕊的形成。在本研究中,生長(zhǎng)素-氨基酸水解酶基因(ILL3)、吲哚乙酸氨基化合成酶基因(GH3.1、GH3.9)和1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸氧化酶基因(ACO1)在雄花中下調(diào)表達(dá),導(dǎo)致雄花中生長(zhǎng)素和乙烯的合成量減少。在擬南芥中,ANT是調(diào)控胚珠生長(zhǎng)發(fā)育的關(guān)鍵基因,受生長(zhǎng)素調(diào)控,同時(shí)介導(dǎo)生長(zhǎng)素信號(hào)通路相關(guān)基因參與花器官形成[31-32];CIB1 基因編碼蛋白則直接調(diào)控FT 基因表達(dá),調(diào)節(jié)植物成花[33]。對(duì)ANT 和CIB1 基因啟動(dòng)子的順式元件進(jìn)行分析,結(jié)果表明,這兩個(gè)基因的啟動(dòng)子含生長(zhǎng)素響應(yīng)元件,番木瓜兩性株雄花中生長(zhǎng)素積累量的減少,可能降低ANT、CIB1 基因表達(dá)量,導(dǎo)致雄花雌蕊發(fā)育不全。也有研究報(bào)道,外施細(xì)胞分裂素(氯吡苯脲)可促進(jìn)獼猴桃雄株雌蕊的形成[34]。本研究中,雄花細(xì)胞分裂素核苷5-單磷酸鹽磷酸核糖水解酶基因(LOG3、LOG5、LOG5.1)的下調(diào)表達(dá),降低了雄花細(xì)胞分裂素的積累量,減緩雌蕊的分化。說(shuō)明在高溫環(huán)境下番木瓜兩性株雌性不育的加劇與花芽生長(zhǎng)素、乙烯和細(xì)胞分裂素合成量下降有關(guān)。

        茉莉酸和水楊酸在植物生長(zhǎng)發(fā)育及對(duì)高溫、干旱、過(guò)量光、機(jī)械損傷等非生物脅迫響應(yīng)中發(fā)揮重要作用[35-37]。在番茄中,JAI-1 基因功能缺失,導(dǎo)致雌性不育,防御反應(yīng)能力下降[38]。在小麥和擬南芥中,opr3 突變體幼苗受高溫脅迫后,成活率顯著低于野生型[39]。外施水楊酸可明顯提高番茄、馬鈴薯、小麥、水稻、葡萄等作物的耐高溫能力[40-41]。在本研究中,參與茉莉酸合成的脂氧合酶2 基因(LOX2)、12-氧代植二烯酸還原酶3 基因(OPR3)在雄花中下調(diào)表達(dá),而參與水楊酸代謝的水楊酸羧基甲基轉(zhuǎn)移酶基因(SAMT1)在雄花中上調(diào)表達(dá),導(dǎo)致雄花中茉莉酸和水楊酸積累的減少,從而降低雄花對(duì)高溫耐受能力。番木瓜HHO5 基因啟動(dòng)子含茉莉酸甲酯響應(yīng)、水楊酸響應(yīng)元件,雄花中茉莉酸和水楊酸含量下降,可能減弱HHO5 基因的表達(dá),影響雌蕊的發(fā)育。

        SAP 轉(zhuǎn)錄因子屬于F-box 蛋白,是E3 泛素連接酶復(fù)合物SKP1/Cullin/F-box 的組成部分,通過(guò)降解PPD蛋白來(lái)調(diào)節(jié)胚珠、花和花序發(fā)育[42]。SAP功能缺失會(huì)導(dǎo)致擬南芥胚珠、花和花序嚴(yán)重畸變[43]。干旱、高鹽、低溫等逆境脅迫會(huì)促使菠蘿SAP 基因高效表達(dá),影響花器官的大小[44]。龍眼SAP可能參與生長(zhǎng)素和赤霉素等激素應(yīng)答及非生物脅迫響應(yīng)[45]。在本研究中,番木瓜SAP 基因在雄花中不表達(dá)(FPKM <1)。啟動(dòng)子順式元件分析結(jié)果表明,SAP基因啟動(dòng)子含低溫響應(yīng)元件,說(shuō)明SAP基因的表達(dá)受低溫誘導(dǎo),而在高溫脅迫下,SAP基因轉(zhuǎn)錄活性可能被抑制,可能導(dǎo)致番木瓜雌蕊敗育,促進(jìn)雄花形成。

        4 結(jié)論

        對(duì)番木瓜兩性株雄花和兩性花進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序和分析,篩選到70 個(gè)植物激素相關(guān)差異表達(dá)基因和6 個(gè)花發(fā)育相關(guān)差異表達(dá)基因。番木瓜兩性株在高溫條件下的花性轉(zhuǎn)變可能與花芽中植物激素生物合成、代謝和轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因表達(dá)量的改變,導(dǎo)致ACC、IAA、tZ、SA、JA 積累的減少,從而降低花發(fā)育相關(guān)基因ANT、CIB1、HHO5 的表達(dá)量,以及高溫抑制SAP基因的表達(dá)有關(guān)。

        參考文獻(xiàn)References:

        [1] 熊月明,郭林榕,黃雄峰,張麗梅,林旗華. 不同栽培技術(shù)措施

        對(duì)番木瓜兩性株高溫變性的抑制效應(yīng)[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),

        2011,26(6):981-984.

        XIONG Yueming,GUO Linrong,HUANG Xiongfeng,ZHANG

        Limei,LIN Qihua. Effect of cultivation conditions on high temperature

        gender alteration of hermaphroditic papaya (Carica papaya

        L.) [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2011,26

        (6):981-984.

        [2] 李亞麗,沈文濤,言譜,周鵬. 番木瓜性別決定的研究進(jìn)展[J].

        廣西農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,40(2):198-202.

        LI Yali,SHEN Wentao,YAN Pu,ZHOU Peng. Advance of sex

        determination in papaya[J]. Guangxi Agricultural Sciences,

        2009,40(2):198-202.

        [3] ARYAL R,JAGADEESWARAN G,ZHENG Y,YU Q,SUNKAR

        R,MING R. Sex specific expression and distribution of

        small RNAs in papaya[J]. BMC Genomics,2014,15(1):20.

        [4] ARYAL R,MING R. Sex determination in flowering plants:papaya

        as a model system[J]. Plant Science,2014,217/218:56-62.

        [5] LIU Z Y,MOOR P H,MA H,ACKERMAN C M,RAGIBA M,

        YU Q Y,PEARL H M,KIM M S,CHARLTON J W,STILES J

        L,ZEE F T,PATERSON A H,MING R. A primitive Y chromosome

        in papaya marks incipient sex chromosome evolution[J].

        Nature,2004,427(6972):348-352.

        [6] MING R,YU Q Y,MOORE P H. Sex determination in papaya[J].

        Seminars in Cell & Developmental Biology,2007,18(3):401-

        408.

        [7] ZHANG W L,WANG X,YU Q Y,MING R,JIANG J M. DNA

        methylation and heterochromatinization in the male-specific region

        of the primitive Y chromosome of papaya[J]. Genome Research,

        2008,18(12):1938-1943.

        [8] BERGERO R,CHARLESWORTH D. Preservation of the Y

        transcriptome in a 10- million- year- old plant sex chromosome

        system[J]. Current Biology,2011,21(17):1470-1474.

        [9] VANBUREN R,WAI C M,ZHANG J S,HAN J,ARRO J,LIN

        Z C,LIAO Z Y,YU Q Y,WANG M L,ZEE F,MOORE R C,

        CHARLESWORTH D,MING R. Extremely low nucleotide diversity

        in the X-linked region of papaya caused by a strong selective

        sweep[J]. Genome Biology,2016,17(1):230.

        [10] VANBUREN R,ZENG F C,CHEN C X,ZHANG J S,WAI C

        M,HAN J,ARYAL R,GSCHWEND A R,WANG J P,NA J K,

        HUANG L X,ZHANG L M,MIAO W J,GOU J Q,ARRO J,

        GUYOT R,MOORE R C,WANG M L,ZEE F,CHARLESWORTH

        D,MOORE P H,YU Q Y,MING R. Origin and domestication

        of papaya Yh chromosome[J]. Genome Research,

        2015,25(4):524-533.

        [11] WANG J P,NA J K,YU Q Y,GSCHWEND A R,HAN J,ZENG

        F C,ARYAL R,VANBUREN R,MURRAY J E,ZHANG W L,

        NAVAJAS- P?REZ R,F(xiàn)ELTUS F A,LEMKE C,TONG E J,

        CHEN C X,WAI C M,SINGH R,WANG M L,MIN X J,

        ALAM M,CHARLESWORTH D,MOORE P H,JIANG J M,

        PATERSON A H,MING R. Sequencing papaya X and Yh chromosomes

        reveals molecular basis of incipient sex chromosome

        evolution[J]. Proceedings of the National Academy of Siences

        of the United States of America,2012,109(34):13710-13715.

        [12] YU Q Y,NAVAJAS- P?REZ R,TONG E,ROBERTSON J,

        MOORE P H,PATERSON A H,MING R. Recent origin of dioecious

        and gynodioecious Y chromosomes in papaya[J]. Tropical

        Plant Biology,2008,1(1):49-57.

        [13] LIAO Z Y,YU Q Y,MING R. Development of male- specific

        markers and identification of sex reversal mutants in papaya[J].

        Euphytica,2017,213(2):53.

        [14] UENO H,URASAKI N,NATSUME S,YOSHIDA K,TARORA

        K,SHUDO A,TERAUCHI R,MATSUMURA H. Genome

        sequence comparison reveals a candidate gene involved in

        male- hermaphrodite differentiation in papaya (Carica papaya)

        trees[J]. Molecular Genetics and Genomics,2015,290(2):661-

        670.

        [15] PIFERRER F. Epigenetics of sex determination and gonadogenesis[

        J]. Developmental Dynamics,2013,242(4):360-370.

        [16] BARNAB?S B,J?GER K,F(xiàn)EH?R A. The effect of drought

        and heat stress on reproductive processes in cereals[J]. Plant,

        Cell and Environment,2008,31(1):11-38.

        [17] REZAEI E E,WEBBER H,GAISER T,NAAB J,EWERT F.

        Heat stress in cereals:Mechanisms and modelling[J]. European

        Journal of Agronomy,2015,64:98-113.

        [18] 李惠華,何健,蘇明華,賴(lài)瑞云. 番木瓜性別分化研究進(jìn)展(綜

        述)[J]. 亞熱帶植物科學(xué),2008,37(4):64-68.

        LI Huihua,HE Jian,SU Minghua,LAI Ruiyun. Review of studies

        on sex differentiation in Carica papaya[J]. Subtropical Plant

        Science,2008,37(4):64-68.

        [19] LIN H,LIAO Z Y,ZHANG L M,YU Q Y. Transcriptome analysis

        of the male- to- hermaphrodite sex reversal induced by low

        temperature in papaya[J]. Tree Genetics & Genomes,2016,12

        (5):94.

        [20] 廖芬,唐文忠,周主貴,黃茂康,崔素芬,何全光. 番木瓜株性轉(zhuǎn)

        變與葉片內(nèi)源激素平衡關(guān)系[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013,26(2):

        713-717.

        LIAO Fen,TANG Wenzhong,ZHOU Zhugui,HUANG Maokang,

        CUI Sufen,HE Quanguang. Endogenous hormonal balance

        in papaya leaf during sex conversion of hermaphrodite papaya

        (Carica papaya L.)[J]. Southwest China Journal of Agricultural

        Scieneces,2013,26(2):713-717.

        [21] ZHOU P,F(xiàn)ATIMA M,MA X Y,LIU J,MING R. Auxin regulation

        involved in gynoecium morphogenesis of papaya flowers[J].

        Horticulture Research,2019,6(1):119.

        [22] CHEN C J,CHEN H,ZHANG Y,THOMAS H R,F(xiàn)RANK M

        H,HE Y H,XIA R. TBtools:An integrative toolkit developed

        for interactive analyses of big biological data[J]. Molecular

        Plant,2020,13(8):1194-1202.

        [23] 周陳平,楊敏,郭金菊,鄺瑞彬,楊護(hù),黃炳雄,魏岳榮. 番木瓜

        成熟過(guò)程中全基因組DNA 甲基化和轉(zhuǎn)錄組變化分析[J]. 園

        藝學(xué)報(bào),2022,49(3):519-532.

        ZHOU Chenping,YANG Min,GUO Jinju,KUANG Ruibin,

        YANG Hu,HUANG Bingxiong,WEI Yuerong. Dynamic changes

        in DNA methylome and transcriptome patterns during papaya

        fruit ripening[J]. Acta Horticulturae Sinica,2022,49(3):519-532.

        [24] 周賡,陳宸,劉曉虹,盧向陽(yáng),田云,陳惠明. 黃瓜性別決定研究

        進(jìn)展[J]. 植物生理學(xué)報(bào),2019,55(7):902-914.

        ZHOU Geng,CHEN Chen,LIU Xiaohong,LU Xiangyang,

        TIAN Yun,CHEN Huiming. Research progress of sex determination

        in cucumber[J]. Plant Physiology Journal,2019,55(7):

        902-914.

        [25] HAMAD H,GEWAILY E,GHONEIM A,SHEHAB M,ELKHOLLY

        N. Improvement ability of male parent by gibberellic

        acid application to enhancing the outcrossing of cytoplasmic

        male sterility rice lines[J]. Acta agriculturae Slovenica,2021,

        117(3):1-11.

        [26] LIU J,CHEN L Y,ZHOU P,LIAO Z Y,LIN H,YU Q Y,

        MING R. Sex biased expression of hormone related genes at early

        stage of sex differentiation in papaya flowers[J]. Horticulture

        Research,2021,8(1):147.

        [27] SHIRLEY N J,AUBERT M K,WILKINSON L G,BIRD D C,

        LORA J,YANG X,TUCKER M R. Translating auxin responses

        into ovules,seeds and yield:Insight from Arabidopsis and the

        cereals[J]. Journal of Integrative Plant Biology,2019,61(3):

        310-336.

        [28] 孫思瓊,王惠林,王志文,徐寶林. 赤霉素和乙烯利對(duì)甜瓜4

        種性型分化的影響[J]. 中國(guó)瓜菜,2021,34(11):68-73.

        SUN Siqiong,WANG Huilin,WANG Zhiwen,XU Baolin. Effects

        of gibberellin and ethephon on sex differentiation in four

        sex types of melon[J]. Chinese Cucurbits and Vegetables,2021,

        34(11):68-73.

        [29] HAN J,MURRAY J E,YU Q Y,MOORE P H,MING R. The

        effects of gibberellic acid on sex expression and secondary sexual

        characteristics in papaya[J]. HortScience,2014,49(3):378-

        383.

        [30] KUMAR A,JAISWAL V S. Sex reversal and fruit formation on

        male plants of Carica Papaya L. by ethrel and chlorflurenol[J].

        Proceedings Plant Sciences,1984,93(6):635-641.

        [31] YAMAGUCHI N,JEONG C W,NOLE-WILSON S,KRIZEK B

        A,WAGNER D. AINTEGUMENTA and AINTEGUMENTALIKE6/

        PLETHORA3 induce LEAFY expression in response to

        auxin to promote the onset of flower formation in Arabidopsis[J].

        Plant Physiology,2016,170(1):283-293.

        [32] KRIZEK B A,BLAKLEY I C,HO Y Y,F(xiàn)REESE N,LORAINE

        A. The Arabidopsis transcription factor AINTEGUMENTA orchestrates

        patterning genes and auxin signaling in the establishment

        of floral growth and form[J]. Plant Journal,2020,103(2):

        752-768.

        [33] LIU Y W,LI X,MA D B,CHEN Z R,WANG J W,LIU H T.

        CIB1 and CO interact to mediate CRY2-dependent regulation of

        flowering[J]. EMBO Reports,2018,19(10):e45762.

        [34] AKAGI T,HENRY I M,OHTANI H,MORIMOTO T,BEPPU

        K,KATAOKA I,TAO R. A Y- encoded suppressor of feminization

        arose via lineage- specific duplication of a cytokinin response

        regulator in kiwifruit[J]. Plant Cell,2018,30(4):780-795.

        [35] 陳金煥,田玉如,李艾佳,夏新莉,尹偉倫. 茉莉酸信號(hào)及其在

        木本植物中的研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)科學(xué)(生命科學(xué)),2020,50

        (2):215-226.

        CHEN Jinhuan,TIAN Yuru,LI Aijia,XIA Xinli,YIN Weilun.

        Jasmonic acid signaling and its research progress in woody

        plants[J]. Scientia Sinnica Vitae,2020,50(2):215-226.

        [36] BALFAG?N D,SENGUPTA S,G?MEZ-CADENAS A,F(xiàn)RITSCHI

        F B,AZAD R K,MITTLER R,ZANDALINAS S I. Jasmonic

        acid is required for plant acclimation to a combination of

        high light and heat stress[J]. Plant Physiology,2019,181 (4):

        1668-1682.

        [37] KHAN F S,GAN Z M,LI E Q,REN M K,HU C G,ZHANG J

        Z. Transcriptomic and physiological analysis reveals interplay

        between salicylic acid and drought stress in citrus tree floral initiation[

        J]. Planta,2021,255(1):24.

        [38] LI L,LI C Y,HOWE G A. Genetic analysis of wound signaling

        in tomato. Evidence for a dual role of jasmonic acid in defense

        and female fertility[J]. Plant Physiology,2001,127(4):1414-

        1417.

        [39] TIAN X J,WANG F,ZHAO Y,LAN T Y,YU K Y,ZHANG L

        Y,QIN Z,HU Z R,YAO Y Y,NI Z F,SUN Q X,ROSSI V,

        PENG H R,XIN M M. Heat shock transcription factor A1b regulates

        heat tolerance in wheat and Arabidopsis through OPR3 and

        jasmonate signalling pathway[J]. Plant Biotechnology Journal,

        2020,18(5):1109-1111.

        [40] 孫軍利,趙寶龍,郁松林. 外源水楊酸對(duì)高溫脅迫下葡萄幾種

        抗氧化酶活性和抗氧化物含量的影響[J]. 植物生理學(xué)報(bào),

        2014,50(7):1014-1018.

        SUN Junli,ZHAO Baolong,YU Songlin. Effect of exogenous

        salicylic acid on antioxidant enzymes activities and antioxidants

        contents in grape seedlings under high temperature stress[J].

        Plant Physiology Journal,2014,50(7):1014-1018.

        [41] JHA U C,NAYYAR H,SIDDIQUE K H M. Role of phytohormones

        in regulating heat stress acclimation in agricultural

        crops[J]. Journal of Plant Growth Regulation,2022,41(3):1041-

        1064.

        [42] WANG Z B,LI N,JIANG S,GONZALWZ N,HUANG X H,

        WANG Y C,INZ? D,LI Y H. SCFSAP controls organ size by targeting

        PPD proteins for degradation in Arabidopsis thaliana[J].

        Nature Communications,2016,7(1):11192.

        [43] BYZOVA M V,F(xiàn)RANKEN J,AARTS M G,DE ALMEIDAENGLER

        J,ENGLER G,MARIANI C,VAN LOOKEREN C

        M M,ANGENENT G C. Arabidopsis STERILE APETALA,a

        multifunctional gene regulating inflorescence,flower,and ovule

        development[J]. Genes & Development,1999,13(8):1002-1014

        [44] 夏楊,周佳煒,蘇初連,葉子,蒲金基,陳華蕊,張賀. 菠蘿Ac-

        SAP 轉(zhuǎn)錄因子對(duì)非生物脅迫和生物脅迫的應(yīng)答響應(yīng)[J]. 分子

        植物育種,2019,17(3):739-745.

        XIA Yang,ZHOU Jiawei,SU Chulian,YE Zi,PU Jinji,CHEN

        Huarui,ZHANG He. Response of SAP transcription factor to

        abiotic and biotic stress in Ananas comosus[J]. Molecular Plant

        Breeding,2019,17(3):739-745.

        [45] 韓婕,陳曉慧,申序,李曉斐,林玉玲,吳鵬飛,賴(lài)鐘雄. 龍眼

        SAP-PPD-KIX-TPL 信號(hào)途徑基因家族的全基因組鑒定與表

        達(dá)模式[J]. 應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2022,28(2):440-450.

        HAN Jie,CHEN Xiaohui,SHEN Xu,LI Xiaofei,LIN Yuling,

        WU Pengfei,LAI Zhongxiong. Genome-wide identification and

        expression pattern of gene family of SAP-PPD-KIX-TPL signal

        pathway in Dimocarpus longan Lour.[J]. Chinese Journal of Applied

        and Environmental Biology,2022,28(2):440-450.

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