黃昱剛，譚伶娟，陳廣

非小細(xì)胞肺癌（NSCLC）是最常見(jiàn)的肺癌類(lèi)型，多數(shù)患者在初診時(shí)已發(fā)生轉(zhuǎn)移，目前針對(duì)NSCLC的化療藥物多存在不良反應(yīng)和多藥耐藥。羽扇豆醇是存在于多種蔬菜、水果、藥用植物中的五環(huán)三萜，具有抗氧化、抗腫瘤、抗炎等藥理活性［1］。羽扇豆醇對(duì)骨肉瘤［2］、乳腺癌［3］、肝癌［4］的影響已被證實(shí)。近期研究顯示，羽扇豆醇具有抗肺癌轉(zhuǎn)移的作用［5］，還可抑制NSCLC細(xì)胞增殖，改變細(xì)胞形態(tài)，誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡［6］。然而，羽扇豆醇對(duì)NSCLC轉(zhuǎn)移的影響及其機(jī)制鮮有報(bào)道。微小RNA（miRNA）是短鏈非編碼RNA，其可與靶mRNA結(jié)合參與腫瘤細(xì)胞的惡性進(jìn)展過(guò)程。在不同類(lèi)型的癌癥中均可以觀察到異常表達(dá)的miRNAs，這些miRNAs在促進(jìn)或抑制惡性腫瘤的進(jìn)展中起著至關(guān)重要的作用［7-8］。已發(fā)現(xiàn)多種miRNA表達(dá)失調(diào)參與NSCLC進(jìn)展［9-10］。NSCLC組織中miR-100-5p表達(dá)降低，其可通過(guò)靶向成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子受體3（FGFR3）抑制NSCLC細(xì)胞遷移、侵襲和糖酵解［11］。既往研究顯示，藥物可通過(guò)調(diào)控miRNA影響NSCLC細(xì)胞發(fā)生發(fā)展［12］，可見(jiàn)miRNA可作為藥物作用的靶點(diǎn)。而miR-100-5p是NSCLC細(xì)胞的潛在靶點(diǎn)，由此推測(cè)miR-100-5p也可能是羽扇豆醇影響NSCLC細(xì)胞惡性進(jìn)展的作用靶點(diǎn)。本研究旨在探討羽扇豆醇對(duì)NSCLC細(xì)胞增殖、遷移和侵襲的影響，并以miR-100-5p為切入點(diǎn)探討其在NSCLC進(jìn)展中的調(diào)控機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 材料 miR-100-5p模擬物（miR-100-5p mimic，5′-AACCCGUAGAUCCGAACUUGUG-3′）及 其 陰 性 對(duì) 照miRNC（5′-UUUGUACUACACAAAAGUACUG-3′）、miR-100-5p抑 制 物（anti-miR-100-5p，5′-CACAAGUUCGGAUCUAC?GGGUU-3′）及其陰性對(duì)照anti-miR-NC（5′-CAGUACUUUU?GUGUAGUACAA-3′）購(gòu)自廣州銳博生物公司。人NSCLC細(xì)胞NCI-H1299、胎牛血清（FBS）、青/鏈霉素混合液（P/S）、RPMI-1640培養(yǎng)液（武漢普諾賽生物公司）；Lipofectamine 2000購(gòu)自Invitrogen；羽扇豆醇（貨號(hào)B21602，純度大于98%，上海源葉生物公司）；CCK-8試劑盒、ECL發(fā)光液、RIPA緩沖液（北京索萊寶生物公司）；miRNA cDNA合成試劑盒、SYBR Premix Ex Taq、TRIzol試劑（大連Takara公司）；兔單克隆抗體細(xì)胞周期蛋白D1（CyclinD1，貨號(hào)bs-20596R）、MMP2（貨號(hào)bs-0412R）和MMP9（貨號(hào)bs-4593R）、β-actin（貨號(hào)bs-0061R）及辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記羊抗兔IgG二抗（貨號(hào)bs-0295P-HRP）購(gòu)自北京博奧森生物公司。Transwell小室（貨號(hào)3450）購(gòu)自科站生物科技有限公司；實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀MA-6000購(gòu)自山東高芯生物傳感器研究院有限公司。

1.2 方法

1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)和分組 NCI-H1299細(xì)胞接種于含10%FBS、1%P/S的RPMI-1640培養(yǎng)基，置于37℃，含95%空氣、5%CO2培養(yǎng)箱孵育。細(xì)胞80%融合時(shí)，加入胰蛋白酶消化，1∶4傳代。每周換液2~3次。將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期NCI-H1299細(xì)胞以2×104個(gè)/孔接種于24孔板中，用含0、12.5、25、50μmol/L羽扇豆醇［4］的培養(yǎng)液孵育NCI-H1299細(xì)胞48 h，分別記為正常對(duì)照（NC）組、低劑量組、中劑量組、高劑量組。使用Lipofectamine 2000將miR-NC、miR-100-5p mimic轉(zhuǎn)染細(xì)胞，記為miR-NC組、miR-100-5p組；細(xì)胞轉(zhuǎn)染anti-miR-NC、anti-miR-100-5p后用含50μmol/L羽扇豆醇培養(yǎng)，記為anti-miR-NC+高劑量組、anti-miR-100-5p+高劑量組。每組3個(gè)復(fù)孔。

1.2.2 CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞活力 將各組細(xì)胞以5×103個(gè)/孔接種于96孔板中，按照實(shí)驗(yàn)分組分別給予對(duì)應(yīng)濃度的羽扇豆醇處理48 h。更換為100μL新鮮培養(yǎng)液，加入10μL CCK-8試劑，繼續(xù)孵育2 h。酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm處光密度（OD）值。

1.2.3 克隆形成實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞增殖能力 胰酶消化各組NCI-H1299，按照5×102個(gè)/孔接種于6孔板中，輕旋平板使細(xì)胞均勻分散，于37℃培養(yǎng)箱孵育，直至出現(xiàn)細(xì)胞集落。棄去培養(yǎng)液，PBS沖洗2次，4%多聚甲醛固定后，用1%結(jié)晶紫染色。顯微鏡下拍照計(jì)數(shù)大于50個(gè)細(xì)胞的集落數(shù)。

1.2.4 Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞遷移和侵襲 胰酶消化各組NCI-H1299細(xì)胞，用無(wú)血清培養(yǎng)基調(diào)整為1×106個(gè)/mL單細(xì)胞懸液。向Transwell上室、24孔板下室分別加入100μL細(xì)胞懸液、500μL含血清培養(yǎng)基。于37℃孵育24 h后，用濕棉簽去除Transwell上室殘留細(xì)胞，用4%多聚甲醛固定穿膜細(xì)胞，1%結(jié)晶紫染色。顯微鏡下隨機(jī)讀取3個(gè)視野計(jì)數(shù)，取其均值作為細(xì)胞遷移數(shù)。侵襲測(cè)定時(shí)采用包被基質(zhì)膠的小室，其余步驟和遷移測(cè)定一致。

1.2.5 qPCR檢測(cè)miR-100-5p表達(dá) 采用TRIzol試劑從NCI-H1299細(xì)胞中分離總RNA。用miRNA cDNA合成試劑盒進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，再以其產(chǎn)物為模板用SYBR Premix Ex Taq進(jìn)行熒光定量PCR（qPCR）。miR-100-5p和U6的引物序列由廣州銳博生物公司合成。miR-100-5p引物序列：上游5′-GAACCCGTAGATCCGAACT-3′，下 游5′-CAGTGCGTGTC?GTGGAGT-3′，產(chǎn)物大小168 bp；U6引物序列：上游5′-CTC?GCTTCGGCAGCACA-3′，下游5′-AACGCTTCACGAATTTGC?GT-3′，產(chǎn)物大小185 bp。擴(kuò)增條件為95℃10 min；95℃10 s，60℃30 s，40次循環(huán)。miR-100-5p表達(dá)值以U6為內(nèi)參基因，用2-ΔΔCt法進(jìn)行相對(duì)定量分析。

1.2.6 Western blot檢測(cè)CyclinD1、MMP2和MMP9蛋白的表達(dá) RIPA緩沖液裂解各組NCI-H1299細(xì)胞，收集蛋白-80℃暫時(shí)保存。蛋白定量后，等量的蛋白通過(guò)SDS-PAGE分離，并轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。在25℃下5%脫脂奶粉封閉1 h；在4℃下用CyclinD1、MMP2、MMP9和β-actin一抗（均1∶2 000稀釋?zhuān)┓跤^(guò)夜；第2天，在25℃下用二抗孵育1 h。將ECL發(fā)光液滴加至膜正面，暗室顯色5 min。顯影、定影。用Image J軟件定量蛋白表達(dá)。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 21.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析，計(jì)量數(shù)據(jù)以表示，2組間比較用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)，多組間比較用單因素方差分析，組間多重比較用LSD-t檢驗(yàn)。P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 羽扇豆醇對(duì)NCI-H1299細(xì)胞活力、增殖及CyclinD1蛋白表達(dá)的影響 與NC組比較，低、中、高劑量組NCI-H1299細(xì)胞CyclinD1蛋白表達(dá)、細(xì)胞活力、細(xì)胞克隆數(shù)逐漸降低，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（均P＜0.05），見(jiàn)圖1、2，表1。

Fig.1 Effects of lupeol on NCI-H1299 cell clone圖1 羽扇豆醇對(duì)NCI-H1299細(xì)胞克隆的影響

Fig.2 The expression of CyclinD1 protein detected by Western blot assay圖2 Western blot檢測(cè)CyclinD1蛋白的表達(dá)

2.2 羽扇豆醇對(duì)NCI-H1299遷移和侵襲及MMP2、MMP9蛋白表達(dá)的影響 與NC組比較，低、中、高劑量組NCI-H1299細(xì)胞遷移數(shù)、侵襲數(shù)、MMP2和MMP9蛋白表達(dá)逐漸降低，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P＜0.05），見(jiàn)圖3、4，表2。

Tab.1 Comparison of proliferation and expression level of CyclinD1 protein in NCI-H1299 cells between four groups表1 各組NCI-H1299細(xì)胞增殖和CyclinD1蛋白表達(dá)水平比較 （n=9）

Tab.1 Comparison of proliferation and expression level of CyclinD1 protein in NCI-H1299 cells between four groups表1 各組NCI-H1299細(xì)胞增殖和CyclinD1蛋白表達(dá)水平比較 （n=9）

＊＊P＜0.01；a與NC組比較，b與低劑量組比較，c與中劑量組比較，P＜0.05。

組別NC組低劑量組中劑量組高劑量組F OD450 1.01±0.10 0.90±0.09a 0.73±0.07ab 0.51±0.05abc 67.047＊＊細(xì)胞克隆數(shù)（個(gè)）113.00±8.26 84.00±7.15a 61.00±5.13ab 50.00±4.02abc 172.777＊＊CyclinD1 0.85±0.09 0.73±0.07a 0.53±0.05ab 0.41±0.04abc 81.965＊＊

Fig.4 Expressions of MMP2 and MMP9 proteins detected by Western blot assay圖4 Western blot檢測(cè)MMP2和MMP9蛋白的表達(dá)

Tab.2 Comparison of migration and invasion of NCIH1299 cells and the expression levels of MMP2 and MMP9 proteins between four groups表2各組NCI-H1299細(xì)胞遷移、侵襲及MMP2、MMP9蛋白表達(dá)水平比較 （n=9，）

Tab.2 Comparison of migration and invasion of NCIH1299 cells and the expression levels of MMP2 and MMP9 proteins between four groups表2各組NCI-H1299細(xì)胞遷移、侵襲及MMP2、MMP9蛋白表達(dá)水平比較 （n=9，）

＊＊P＜0.01；a與NC組比較，b與低劑量組比較，c與中劑量組比較，P＜0.05。

組別NC組低劑量組中劑量組高劑量組F細(xì)胞遷移數(shù)（個(gè)）154.00±12.25 127.00±10.13a 100.00±9.24ab 62.00±5.16abc 152.245＊＊細(xì)胞侵襲數(shù)（個(gè)）136.00±13.32 101.00±10.03a 88.00±8.02ab 51.00±4.01abc 123.809＊＊MMP2 0.83±0.08 0.70±0.07a 0.57±0.05ab 0.42±0.04abc 72.156＊＊MMP9 0.75±0.06 0.62±0.06a 0.48±0.04ab 0.37±0.03abc 101.567＊＊

Fig.3 Effects of lupeol on migration and invasion of NCI-H1299 cells detected by Transwell assay圖3 Transwell檢測(cè)羽扇豆醇對(duì)NCI-H1299細(xì)胞遷移、侵襲的影響

2.3 羽扇豆醇對(duì)miR-100-5p基因表達(dá)的影響 與NC組（1.00±0.09）比較，低（1.36±0.11）、中（1.83±0.15）、高（2.31±0.21）劑量組NCI-H1299細(xì)胞miR-100-5p表達(dá)水平逐漸升高，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（F=134.392，P＜0.05）。

2.4 過(guò)表達(dá)miR-100-5p對(duì)NCI-H1299細(xì)胞增殖、遷移和侵襲及CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)的影響 與miR-NC組比較，miR-100-5p組NCI-H1299細(xì)胞中miR-100-5p表達(dá)水平增加，細(xì)胞活力降低，細(xì)胞克隆數(shù)、遷移數(shù)、侵襲數(shù)減少，CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)降低（P＜0.05），見(jiàn)圖5~7，表3。

Fig.5 Effects of miR-100-5p on NCI-H1299 cell clone圖5 miR-100-5p對(duì)NCI-H1299細(xì)胞克隆的影響

Fig.6 Effects of miR-100-5p on migration and invasion of NCIH1299 cells detected by Transwell assay圖6 Transwell檢測(cè)miR-100-5p對(duì)NCI-H1299細(xì)胞遷移、侵襲的影響

2.5 抑制miR-100-5p表達(dá)可逆轉(zhuǎn)羽扇豆醇對(duì)NCIH1299細(xì)胞增殖、遷移和侵襲及CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)的影響 與anti-miR-NC+高劑量組比較，anti-miR-100-5p+高劑量組NCI-H1299細(xì)胞miR-100-5p表達(dá)水平降低，細(xì)胞活力升高，細(xì)胞克隆數(shù)、遷移數(shù)、侵襲數(shù)增多，CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)增加（P＜0.05），見(jiàn)圖8~10，表4。

Fig.7 Expression of CyclinD1,MMP2 and MMP9 proteins detected by Western blot assay圖7 Western blot檢測(cè)CyclinD1、MMP2和MMP9蛋白的表達(dá)

Fig.8 Inhibition of miR-100-5p expression reversed the effect of lupeol on NCI-H1299 cell clone圖8 抑制miR-100-5p表達(dá)可逆轉(zhuǎn)羽扇豆醇對(duì)NCI-H1299細(xì)胞克隆的影響

Fig.9 Effects of inhibition of miR-100-5p expression on migration and invasion of NCI-H1299 cells after lupeol intervention detected by Transwell圖9 Transwell檢測(cè)抑制miR-100-5p表達(dá)對(duì)羽扇豆醇干預(yù)后NCI-H1299細(xì)胞遷移、侵襲的影響

Tab.3 Comparison of proliferation,migration,invasion and the expression levels of CyclinD1,MMP2 and MMP9 proteins in NCI-H1299 cells between two groups after overexpression of miR-100-5p表3 過(guò)表達(dá)miR-100-5p后2組NCI-H1299細(xì)胞增殖、遷移和侵襲及CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)水平比較（n=9，）

Tab.3 Comparison of proliferation,migration,invasion and the expression levels of CyclinD1,MMP2 and MMP9 proteins in NCI-H1299 cells between two groups after overexpression of miR-100-5p表3 過(guò)表達(dá)miR-100-5p后2組NCI-H1299細(xì)胞增殖、遷移和侵襲及CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)水平比較（n=9，）

＊＊P＜0.01。

組別miR-NC組miR-100-5p組t miR-100-5p 1.01±0.11 2.68±0.34 14.020＊＊OD值1.09±0.08 0.69±0.08 10.607＊＊細(xì)胞克隆數(shù)（個(gè)）109.00±11.21 56.00±4.12 13.313＊＊細(xì)胞遷移數(shù)（個(gè)）152.00±13.01 85.00±6.33 13.893＊＊細(xì)胞侵襲數(shù)（個(gè)）145.00±13.12 68.00±5.11 16.406＊＊CyclinD1 0.79±0.04 0.52±0.06 11.233＊＊MMP2 0.82±0.07 0.56±0.07 7.879＊＊MMP9 0.72±0.08 0.45±0.06 8.100＊＊

Tab.4 Comparison of proliferation,migration and invasion of NCI-H1299 cells and the expression levels of CyclinD1,MMP2,MMP9 proteins between two groups after inhibition of miR-100-5p表4 抑制miR-100-5p表達(dá)后2組NCI-H1299細(xì)胞增殖、遷移和侵襲及CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)水平比較（n=9，）

Tab.4 Comparison of proliferation,migration and invasion of NCI-H1299 cells and the expression levels of CyclinD1,MMP2,MMP9 proteins between two groups after inhibition of miR-100-5p表4 抑制miR-100-5p表達(dá)后2組NCI-H1299細(xì)胞增殖、遷移和侵襲及CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)水平比較（n=9，）

＊＊P＜0.01。

組別anti-miR-NC+高劑量組anti-miR-100-5p+高劑量組t miR-100-5p 1.00±0.09 0.45±0.04 16.753＊＊OD值0.58±0.05 1.12±0.10 14.490＊＊細(xì)胞克隆數(shù)（個(gè)）64.00±5.34 132.00±9.14 19.271＊＊細(xì)胞遷移數(shù)（個(gè)）47.00±4.34 77.00±6.54 11.466＊＊細(xì)胞侵襲數(shù)（個(gè)）44.00±3.83 70.00±5.28 11.958＊＊CyclinD1 0.42±0.04 0.87±0.07 16.745＊＊MMP2 0.40±0.03 0.82±0.07 16.545＊＊MMP9 0.35±0.03 0.76±0.07 16.151＊＊

Fig.10 Expression of CyclinD1,MMP2 and MMP9 proteins detected by Western blot Assay圖10 Western blot檢測(cè)CyclinD1、MMP2和MMP9蛋白的表達(dá)

3 討論

植物來(lái)源化合物可通過(guò)誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡、阻滯細(xì)胞周期、抑制細(xì)胞增殖等途徑發(fā)揮抗腫瘤活性，是潛在的抗腫瘤藥物。研究證實(shí)羽扇豆醇通過(guò)誘導(dǎo)S期周期阻滯和細(xì)胞凋亡來(lái)抑制宮頸癌細(xì)胞生長(zhǎng)［13］。羽扇豆醇還可增強(qiáng)沉默ST3GalⅢ對(duì)乳腺癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移的抑制作用［14］。本研究表明，羽扇豆醇以劑量依賴(lài)方式降低NCI-H1299細(xì)胞活力，抑制其克隆形成，這表明羽扇豆醇可抑制NSCLC細(xì)胞增殖。CyclinD1與細(xì)胞增殖相關(guān)，其通過(guò)激活G1期特有的細(xì)胞周期蛋白依賴(lài)性激酶4（CDK4），推動(dòng)細(xì)胞由G1期進(jìn)入S期，進(jìn)而促進(jìn)增殖。本研究發(fā)現(xiàn)羽扇豆醇干預(yù)后NCI-H1299細(xì)胞中的CyclinD1蛋白水平明顯下調(diào)，與CCK-8和克隆形成實(shí)驗(yàn)的結(jié)果一致，說(shuō)明羽扇豆醇可能通過(guò)抑制CyclinD1表達(dá)阻滯細(xì)胞周期進(jìn)展從而抑制增殖。MMP2和MMP9是MMP家族中被廣泛研究的成員，其在肺癌的侵襲和轉(zhuǎn)移中起主導(dǎo)作用［15］。MMP2和MMP9上調(diào)，細(xì)胞遷移和侵襲能力增強(qiáng)。羽扇豆醇以劑量依賴(lài)方式下調(diào)NCI-H1299細(xì)胞中MMP2、MMP9表達(dá)水平，影響細(xì)胞外基質(zhì)降解，進(jìn)而抑制NCI-H1299細(xì)胞遷移和侵襲能力。

miRNA作為生物標(biāo)志物和治療靶點(diǎn)在癌癥研究中引起了廣泛關(guān)注，其通過(guò)調(diào)節(jié)CyclinD1、MMP2和MMP9表達(dá)影響腫瘤增殖和遷移、侵襲［16-17］。另有研究表明miRNA還可能是植物來(lái)源化合物抗腫瘤的潛在靶標(biāo)［18］。Zhong等［2］發(fā)現(xiàn)羽扇豆醇通過(guò)上調(diào)miR-212-3p的表達(dá)來(lái)抑制骨肉瘤細(xì)胞活力和侵襲。張小鷹等［19］證實(shí)羽扇豆醇可增強(qiáng)miR-145-5p對(duì)前列腺癌細(xì)胞的抗增殖和促凋亡作用。以上研究證實(shí)miRNA可作為羽扇豆醇抗腫瘤進(jìn)展的靶點(diǎn)。miR-100-5p的抑瘤功能已有多項(xiàng)研究報(bào)道，miR-100-5p在脊索瘤組織中表達(dá)下調(diào)，過(guò)表達(dá)miR-100-5p在體內(nèi)外均能抑制脊索瘤的生長(zhǎng)，并通過(guò)抑制上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化進(jìn)而抑制脊索瘤細(xì)胞的遷移和侵襲［20］；miR-100-5p可下調(diào)mTOR基因表達(dá)進(jìn)而抑制前列腺癌細(xì)胞的增殖、遷移及侵襲能力［21］。本研究顯示，隨著羽扇豆醇濃度的增加，NCI-H1299細(xì)胞miR-100-5p表達(dá)水平顯著上調(diào)，提示miR-100-5p表達(dá)升高可能介導(dǎo)羽扇豆醇的抗癌作用。過(guò)表達(dá)miR-100-5p抑制NSCLC細(xì)胞增殖、遷移和侵襲，并降低CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白表達(dá)，說(shuō)明miR-100-5p通過(guò)下調(diào)相關(guān)蛋白表達(dá)抑制細(xì)胞的增殖和轉(zhuǎn)移。本研究發(fā)現(xiàn)，在羽扇豆醇處理的基礎(chǔ)上抑制miR-100-5p表達(dá)，細(xì)胞增殖、遷移及侵襲能力增強(qiáng)，CyclinD1、MMP2、MMP9蛋白上調(diào)，提示抑制miR-100-5p表達(dá)可部分減弱羽扇豆醇對(duì)NCI-H1299細(xì)胞的抑制作用，進(jìn)一步表明羽扇豆醇通過(guò)上調(diào)miR-100-5p表達(dá)抑制NSCLC細(xì)胞惡性生物學(xué)行為。

綜上所述，羽扇豆醇具有抑制NSCLC細(xì)胞增殖、遷移和侵襲活力，其機(jī)制可能是通過(guò)上調(diào)miR-100-5p實(shí)現(xiàn)的。本研究初步揭示了羽扇豆醇的抗NSCLC機(jī)制，為羽扇豆醇用于防治NSCLC提供了依據(jù)。由于本研究?jī)H為細(xì)胞水平研究，未進(jìn)行動(dòng)物模型實(shí)驗(yàn)，故有待后續(xù)通過(guò)體內(nèi)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證本研究結(jié)果，為羽扇豆醇用于臨床治療NSCLC奠定基礎(chǔ)。