張盈銖，李文博，李艷*，周航

（1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院，湖北武漢 430070）（2.遼寧科海食品化學(xué)工程有限公司，遼寧丹東 118000）

α-亞麻酸，為ω-3 系不飽和脂肪酸，是維持人體生命活動(dòng)必不可少，但自身不能合成，必須通過食物來提供的必需脂肪酸之一，在體內(nèi)可轉(zhuǎn)化為二十碳五烯酸（EPA）和二十二碳六烯酸（DHA），對(duì)人體有諸多生理功能，如降血脂、降血壓，預(yù)防心腦血管疾病，抑制腫瘤的生長(zhǎng)等[1-4]。α-亞麻酸最常見的食物來源是植物油，如亞麻籽油、紫蘇油和牡丹籽油，其中亞麻籽油的α-亞麻酸含量最高，是補(bǔ)充α-亞麻酸的極佳來源[5]。然而甘油三酯的過多攝入會(huì)導(dǎo)致肥胖的發(fā)生，有研究證明不同形式的油脂在人體內(nèi)具有不同的新陳代謝率[6]，因此在關(guān)注脂質(zhì)攝入量的同時(shí)，還需要關(guān)注脂質(zhì)的攝入形式。

單、雙脂肪酸甘油酯是單甘酯與甘油二酯的混合物，由于甘油二酯獨(dú)特的代謝方式，使其具有多種生理功能，如降低血脂、抑制肝臟脂肪積累、預(yù)防心血管疾病等[7-9]。與甘油三酯相比，單、雙脂肪酸甘油酯與其結(jié)構(gòu)差異較小，化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定，營(yíng)養(yǎng)價(jià)值較高，常被用作甘油三酯的替代品[7,10]，因此，可以將富含α-亞麻酸的甘油二酯作為補(bǔ)充α-亞麻酸的極佳來源，而不會(huì)造成脂肪堆積的負(fù)擔(dān)[11]。在日本和美國(guó)，甘油二酯已經(jīng)被允許作為烹調(diào)用油進(jìn)行食用[10]。此外，由于單、雙脂肪酸甘油酯的兩親性和表面活性，使其具有更高的溶解能力和更好的分散性[12]。有研究表明單、雙脂肪酸甘油酯有利于提高疏水性營(yíng)養(yǎng)素的溶解度和口服生物利用率[13,14]。然而，單、雙脂肪酸甘油酯在替代相應(yīng)油脂的潛力方面還有待深入研究。

由于食用油脂具有極強(qiáng)的疏水性，且在空氣中容易氧化，產(chǎn)生不良的風(fēng)味和有害物質(zhì)，限制了其在食品領(lǐng)域的應(yīng)用。為了解決油脂極易氧化和水溶性差的問題，開發(fā)有效的遞送系統(tǒng)具有重要的意義。水包油乳液已被證明是用于遞送功能性油脂的有效載體，許多研究表明水包油乳液能夠延緩油脂的氧化，并提高其穩(wěn)定性[15-18]，還能提高不飽和脂肪酸的生物利用率[19,20]。

為此，本文選用常見的天然蛋白乳化劑（乳清蛋白Whey Protein Concentrate-WPC，大豆分離蛋白Soybean Protein Isolate-SPI，酪蛋白酸鈉 Sodium Caseinate-SC）及非離子型乳化劑（吐溫80-T80），以生物發(fā)酵來源的單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）為油相制備乳液，通過粒徑電位、微觀形態(tài)等乳液表征方法探究乳化劑類型對(duì)乳液形成的影響，對(duì)比不同乳液的物理穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性，并利用體外消化模型研究不同乳化劑對(duì)乳液脂質(zhì)消化速率和消化程度的影響，及亞麻籽油和單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）水解程度的差異，為單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）用于替代亞麻籽油的應(yīng)用提供參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 原料

乳清濃縮蛋白：約為85%，Hilmar 8010，美國(guó)希爾瑪配料公司；大豆分離蛋白：≥90%，西寶生物科技（上海）股份有限公司；酪蛋白酸鈉：90%，上海源葉生物技術(shù)有限公司；吐溫80：國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；單、雙甘油脂肪酸酯（亞麻酸）：?jiǎn)熙ズ?1.5%，雙酯含量24%，亞麻酸含量60.2%，遼寧科海食品化學(xué)工程有限公司；亞麻籽油：益海嘉里食品營(yíng)銷有限公司；其他所用試劑均為分析純。

1.2 主要儀器設(shè)備

Ultra-TurraxT25 型高速剪切機(jī)，德國(guó)IKA 公司；M-110L 型高壓微射流均質(zhì)機(jī)，美國(guó)Microfluidics 公司；TI-S 倒置熒光顯微鏡，日本尼康公司；UV-1700 型紫外-可見分光光度計(jì)，日本島津公司；902 Titrando 全自動(dòng)電位滴定儀，瑞士萬(wàn)通公司；Malvern 2000 型激光粒度分析儀，英國(guó)Malvern 公司；Zetasizer Nano ZS 型納米粒度測(cè)定儀，英國(guó)Malvern 公司。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 乳液制備

將1%（m/m）WPC、SPI、SC 和T80 分別溶解在緩沖溶液（5 mmol/L 磷酸鹽緩沖液PBS，pH 值7.0）中制備水相，其中WPC、SPI 和SC 溶液置于4 ℃冰箱中冷藏過夜以充分水合。以單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）為油相，將油相（5%，m/m）與水相（95%，m/m）攪拌混合，用高速分散均質(zhì)機(jī)以12 000 r/min 的速度持續(xù)剪切1.5 min 形成粗乳液，粗乳液在62 MPa的壓力下通過高壓均質(zhì)機(jī)進(jìn)行5 次循環(huán)，制得的乳液于4 ℃保存?zhèn)溆?。由T80、SC、SPI 和WPC 制得的乳液分別標(biāo)記為：T-GLE、C-GLE、S-GLE、W-GLE。

1.3.2 體外消化模型的構(gòu)建

1.3.2.1 口腔

參考Sarkar 等[21]的方法并稍作修改。將6 mL 的乳液和1.5 mL PBS（pH 值7.0，5 mmol/L）混合，再與7.5 mL 模擬口腔液混合，將混合液的pH 值調(diào)至6.8，在37 ℃的恒溫水浴鍋中孵育10 min，模擬口腔消化。模擬口腔液由粘蛋白和不同種類的鹽組成，其配方為：蒸餾水，NaCl（1.594 g/L），NH4NO3（0.328 g/L），KH2PO4（0.636 g/L），KCl（0.202 g/L），K3C6H5O7·H2O（0.308 g/L），H2NCONH2（0.198 g/L），粘蛋白（5 g/L）。

1.3.2.2 胃

取15 mL經(jīng)口腔消化樣品與15 mL模擬胃液混合，用NaOH 調(diào)節(jié)pH 值至2.5。最終混合物以100 r/min 連續(xù)攪拌，于37 ℃下孵育1 h。模擬胃液的配方為：蒸餾水，NaCl（2 g/L），胃蛋白酶（3.2 g/L）和HCl（0.084 mol/L），將pH 值調(diào)為1.2 即得模擬胃液[22]。

1.3.2.3 小腸

將30 mL 胃消化樣品加入100 mL 玻璃燒杯中，在37 ℃水浴中孵育，然后將pH 值調(diào)至7.0。將1.5 mL的模擬小腸液和3.5 mL 的膽汁鹽溶液（53.57 mg/mL）添加到燒杯中，不斷攪拌，并將混合物的pH 值調(diào)至7.0。隨后加入2.5 mL 新鮮制備的胰酶懸浮液（24 mg/mL），采用pH-stat 滴定儀使體系pH 值維持在7.0，保持2 h，監(jiān)測(cè)消耗的NaOH 體積。模擬小腸液的配方為：蒸餾水，CaCl2（125 mmol/L）和NaCl（3.75 mol/L）[23]。

通過公式（1）可由消化過程中NaOH 消耗量計(jì)算出游離脂肪酸的釋放量，反應(yīng)出油脂的消化速率和最終消化程度。

游離脂肪酸的釋放率用下式表示：

式中：

FFA——游離脂肪酸的釋放率，%；

VNaOH(t)——在t時(shí)刻消耗NaOH 的體積，L；

MNaOH——NaOH 的摩爾濃度，mol/L；

Mlipid——油脂的摩爾質(zhì)量，g/mol；

wlipid——消化前乳液中油的質(zhì)量，g。

1.3.3 乳液粒徑與Zeta 電位測(cè)量

采用激光粒度分析儀和納米粒度測(cè)定儀測(cè)定乳液及各消化階段的平均粒徑、粒徑分布及Zeta 電位，測(cè)量溫度為25 ℃。分析前用磷酸鹽緩沖液（5 mmol/L，pH 值7.0）稀釋初始樣品、口腔樣品、小腸樣品，胃樣品用蒸餾水稀釋至pH 值2.5。

1.3.4 微觀結(jié)構(gòu)觀察

1.3.4.1 光學(xué)顯微鏡

利用光學(xué)顯微鏡觀察初始乳液的微觀結(jié)構(gòu)。取10 μL 樣品滴于載玻片中央，通過100 倍油鏡對(duì)乳液的微觀結(jié)構(gòu)進(jìn)行觀察，拍照記錄并根據(jù)標(biāo)尺判斷乳滴大小。

1.3.4.2 熒光顯微鏡

采用熒光顯微鏡觀察乳液和消化液液滴分布情況。染色方法為：1.5 mL 樣品加10 μL 尼羅紅（0.01%），熒光染色后，于熒光顯微鏡下觀察各階段乳液的微觀結(jié)構(gòu)。

1.3.5 穩(wěn)定性監(jiān)測(cè)

1.3.5.1 貯藏穩(wěn)定性

將制備好的乳液進(jìn)行分裝，置于4 ℃環(huán)境下保存14 d，分別在第0、3、5、7、14 天記錄乳液的宏觀和微觀變化，并測(cè)定其粒徑的大小，評(píng)價(jià)外部環(huán)境對(duì)乳液貯藏穩(wěn)定性的影響。

1.3.5.2 氧化穩(wěn)定性

將乳液樣品置于50 ℃恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行加速氧化，比較由不同乳化劑穩(wěn)定的乳液中油脂氫過氧化物及次級(jí)氧化產(chǎn)物丙二醛的含量隨時(shí)間的變化趨勢(shì)，研究乳液的抗氧化機(jī)制與性能。

氫過氧化值（Peroxide Value，POV）參考Julio等[24]的方法并稍作修改。取0.2 mL 乳液或取與乳液中油相含量相當(dāng)?shù)膯?、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）和亞麻籽油與1 mL 異辛烷/異丙醇（3:1，V/V）混合，渦旋震蕩20 s，然后在3 400 g 下離心2 min，取0.2 mL 有機(jī)相，溶于甲醇/正丁醇（2:1，V/V）溶液中，加入20 μL 3.94 mol/L 硫氰酸銨溶液和20 μL 二價(jià)鐵離子溶液（由0.132 mol/L氯化鋇和0.144 mol/L 硫酸亞鐵混合制成），用甲醇/正丁醇（2:1，V/V）溶液定容至8 mL，置于暗處反應(yīng)20 min 后于510 nm 處測(cè)定溶液的吸光度。以過氧化氫為標(biāo)準(zhǔn)繪制曲線，計(jì)算樣品的POV 值。每個(gè)樣品平行測(cè)定3 次。

硫代巴比妥酸值（Thiobarbituric Acid Value，TBARS）參考Nasrabadi 等[15]的方法并稍作修改。取乳液0.2 mL，用水稀釋至2 mL，加入4 mL 硫代巴比妥酸（TBA）溶液（由0.375 g TBA、15 g 三氯乙酸和100 mL 0.25 mol/L HCl 混合而成），沸水浴15 min，在自來水下冷卻5 min，于10 000 r/min 離心10 min 后，收集上清液并于532 nm 處測(cè)定吸光度。以1,1,3,3-四乙氧基丙烷繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，計(jì)算樣品的TBARS 值。每個(gè)樣品平行測(cè)量3 次，記錄平均值及標(biāo)準(zhǔn)偏差。

1.3.6 數(shù)據(jù)分析

每個(gè)樣品至少進(jìn)行三次重復(fù)實(shí)驗(yàn)，數(shù)據(jù)用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示，使用SPSS 25.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析，p＜0.05 認(rèn)為有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。

2 結(jié)果與討論

2.1 初始乳液的性質(zhì)

不同乳液的粒徑電位如圖1 所示，初始乳液均具有較小的平均粒徑（131.97～224.87 nm）（圖1a）。T80由于其較高的表面活性，所穩(wěn)定的乳液粒徑最?。ā?31.97 nm）。初始液滴尺寸的差異通常是由均質(zhì)化過程中乳化劑表面活性和吸附動(dòng)力學(xué)的差異所引起[25]。對(duì)乳液的Zeta 電位進(jìn)行測(cè)量（圖1b），結(jié)果表明所有乳液的表面電位均為負(fù)值，其中，由蛋白質(zhì)穩(wěn)定的乳液具有較強(qiáng)的靜電斥力（電勢(shì)絕對(duì)值大于3 0 mV），T80 穩(wěn)定的乳液的電位值相對(duì)較?。?4.20 mV），這可能是因?yàn)橛傻鞍追€(wěn)定乳液的pH 值遠(yuǎn)高于蛋白的等電點(diǎn)（pI≈4～5），因此吸附的蛋白質(zhì)會(huì)帶強(qiáng)烈的負(fù)電荷，從而賦予乳滴間較強(qiáng)的靜電排斥力。

圖1 不同乳化劑穩(wěn)定乳液的初始粒徑(a)和電位(b)Fig.1 Particle size (a) and zeta-potential (b) of the emulsions stabilized by different emulsifier

2.2 乳液穩(wěn)定性

2.2.1 貯藏穩(wěn)定性

乳液的粒徑大小和微觀形態(tài)對(duì)乳液的穩(wěn)定性（乳析、絮凝和聚結(jié)）有重要影響。將新鮮制備的乳液置于4 ℃下貯藏14 d，觀察乳液平均粒徑、宏觀和微觀結(jié)構(gòu)的變化（圖2）。從結(jié)果可以看出，四種乳液在外觀上相似，為顏色均一的乳白色，無分層、乳析現(xiàn)象。在4 ℃貯藏兩周后乳液的外觀、微觀結(jié)構(gòu)及粒徑大小變化不大，表明乳液具備良好的貯藏穩(wěn)定性。

圖2 乳液在14 d 貯藏期的外觀(a)、微觀結(jié)構(gòu)(b)及粒徑(c)的變化Fig.2 Appearance (a),microstructure (b) and particle size (c) of emulsions during 14 days storage

2.2.2 氧化穩(wěn)定性

油脂的氧化是影響食品品質(zhì)和貨架期的主要原因。多不飽和脂肪酸極易被氧化，產(chǎn)生不良的風(fēng)味和氣味，甚至產(chǎn)生有毒化合物，損害人體健康[26]。可以通過測(cè)定乳液在加速氧化儲(chǔ)存期所產(chǎn)生的初級(jí)氧化產(chǎn)物和次級(jí)氧化產(chǎn)物來評(píng)估乳液的氧化穩(wěn)定性。

如圖3a 所示，儲(chǔ)藏14 d 后，純亞麻籽油具有最高的過氧化物含量（628.16 mmol/kg）。與純油和酯相比，乳液界面的組成和厚度能有效減緩脂質(zhì)氧化的發(fā)生[27]。在氧化初期，乳液中的過氧化物含量較高，可能與乳液的高界面面積、乳化過程引入的氧氣、剪切應(yīng)力產(chǎn)生的過熱等因素有關(guān)[28]。此外，由于單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）中不飽和脂肪酸的含量較多，對(duì)氧的敏感性更大，故在氧化初期其過氧化值迅速增加。在儲(chǔ)藏14 d 后，由WPC、SPI 和SC 穩(wěn)定的乳液氫過氧化物含量分別為217.45、197.73、235.95 mmol/kg，顯著少于由T80 穩(wěn)定的乳液（377.40 mmol/kg）（p＜0.05）。這是由于T80 乳液具有較小的平均粒徑，更大的界面面積有利于脂質(zhì)與氧氣的接觸，加快了脂質(zhì)的氧化速度，而蛋白質(zhì)可作為金屬螯合劑和自由基清除劑，有利于延緩脂質(zhì)氧化的發(fā)生[29]。

TBARS 是表征脂質(zhì)次級(jí)氧化程度的指標(biāo)之一，一般與氫過氧化物相結(jié)合共同解釋油脂氧化過程。如圖3b 所示，TBARS 與脂質(zhì)過氧化物的結(jié)果具有類似的趨勢(shì)。儲(chǔ)存14 d 后，亞麻籽油具有最高的TBARS值，為1.30 mmol/kg，Nasrabadi 等[15]的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明散裝亞麻籽油在50 ℃的儲(chǔ)存下具有更高的POV 和TBARS 值，這是多不飽和脂肪酸在高溫下更快氧化的結(jié)果。四種乳液的 TBAR S 值均較低（0.26～0.37 mmol/kg），由于乳液的界面層充當(dāng)了油滴的物理屏障，油脂液滴與具有促進(jìn)油脂氧化的離子相互作用減弱，使其氧化速率減慢[15]。氧化穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明乳液能夠提高亞麻籽油及其甘油酯的氧化穩(wěn)定性，并且相比T80，蛋白質(zhì)對(duì)油脂的氧化保護(hù)效果更好。

圖3 乳液在50 ℃下貯藏14 d氫過氧化物濃度(a)和TBARS濃度(b)Fig.3 Lipid hydroperoxide concentration (a) and TBARS concentration (b) of emulsions stored at 50 °C for 14 days

2.3 體外模擬消化過程中乳液的結(jié)構(gòu)變化

乳液經(jīng)模擬口腔消化后，所有樣品的平均粒徑較初始粒徑都略微增加（圖4a），但仍保持初始乳液的粒徑分布（圖5）。熒光顯微圖（圖6）顯示模擬口腔消化后脂滴發(fā)生了輕微的絮凝，脂滴絮凝可歸因于模擬唾液中黏蛋白分子的橋接作用[30]，這與Yuan 等[31]的研究結(jié)果一致。在電位方面（圖4b），經(jīng)口腔消化后各乳液的電位與初始樣品具有相似的趨勢(shì)，T80 穩(wěn)定乳液的電位值較初始值顯著升高（p＜0.05）。

模擬胃相消化后，可以觀察到所有樣品的平均粒徑顯著增加（p＜0.05）（圖4a），且粒徑分布中大顆粒的數(shù)量增多（圖5），尤其以蛋白穩(wěn)定的乳液最為明顯。從熒光顯微鏡圖像可以看出經(jīng)過胃相消化后出現(xiàn)了大量液滴絮凝（圖6），其中，T80 穩(wěn)定的乳液的液滴聚集水平要比蛋白質(zhì)乳液小得多，胃內(nèi)脂滴聚集可歸因于蛋白質(zhì)被胃液中的蛋白酶水解，使得蛋白包被液滴之間的靜電斥力降低[31]。通過模擬胃相消化后，所有樣品的電位相當(dāng)相似，接近于零（0.35～4.19 mV）（圖4b），這可能是因?yàn)橹伪砻娴牡鞍踪|(zhì)被蛋白酶部分消化，蛋白質(zhì)分子在低于其等電點(diǎn)的低pH 值下帶正電荷，使陰離子被吸收到陽(yáng)離子液滴表面，從而實(shí)現(xiàn)電荷中和，這與之前的研究報(bào)道一致[31]。

圖4 不同模擬消化階段乳液的粒徑(a)和電位(b)Fig.4 Particle size (a) and zeta-potential (b) of emulsions at different simulative digestion stages

圖6 不同模擬消化階段乳液的熒光顯微圖像Fig.6 Fluorescence microscopic images of emulsions at different simulative digestion stages

模擬小腸消化后，可以觀察到所有樣品的平均粒徑（d32＜1 μm）顯著降低（p＜0.05）（圖4a），平均粒徑的減小主要是由于脂滴被脂肪酶消化所致。此外，部分乳液粒徑分布呈多峰分布（圖5），這可能是由于食糜中存在不同類型的膠體顆粒，如混合膠束、不溶性鈣鹽等[31]。所有樣品經(jīng)過模擬小腸階段后，負(fù)電荷均高于胃階段，這可以歸因于模擬小腸相中存在陰離子膠體粒子。乳化劑的類型對(duì)模擬小腸階段后混合物的電勢(shì)有一定的影響，WPC、SPI 和SC 比T80 具有更高的負(fù)電荷，這可能是由于蛋白質(zhì)更容易在顆粒表面聚集，從而導(dǎo)致負(fù)電荷更低。

圖5 不同模擬消化階段乳液的粒徑分布Fig.5 Particle size distribution of emulsions at different simulative digestion stages

2.4 脂質(zhì)消化

通過pH-stat 方法研究了乳化劑類型對(duì)脂質(zhì)消化的影響，以單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）和亞麻籽油為對(duì)照，體外模擬消化模型中的脂肪酸釋放率如圖7所示。與純油和酯相比，乳液因其較小的液滴尺寸和更大的比表面積有利于脂質(zhì)的消化，且表面活性劑和蛋白質(zhì)易于被膽汁鹽置換，從而提高脂質(zhì)的消化速率[15]。對(duì)乳液的消化速率分析表明，乳化劑類型對(duì)游離脂肪酸的釋放影響不大，表現(xiàn)為SPI（68.03%）＞SC（64.03%）≈T80（63.22%）≈WPC（61.67%）。不同乳液之間脂解程度存在的差異可能是因?yàn)槿榛瘎┑男再|(zhì)會(huì)影響模擬消化液中的膽汁鹽、脂肪酶和其他反應(yīng)物吸附到脂滴表面的能力，此外，乳化劑與胃腸道中成分的相互作用、乳液液滴的大小和比表面積也會(huì)對(duì)脂質(zhì)消化產(chǎn)生影響[32,33]。有研究表明，盡管小分子表面活性劑（T20）穩(wěn)定乳液在胃部消化過程中聚集程度較小，但由于T20 較高的表面活性，限制了脂肪酶/共脂肪酶復(fù)合物在脂滴表面的吸附，從而降低了乳液的消化速率[33]。與亞麻籽油（23.93%）相比，單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）的初始消化速度更快，最終消化率更高（46.33%）。此前有文獻(xiàn)報(bào)道，富含α-亞麻酸的甘油二酯比亞麻籽油具有更高的消化率[11]。Golding 等[34]的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明，在消化吸收特性實(shí)驗(yàn)中，與甘油三酯相比，甘油二酯產(chǎn)生的乳糜微粒更容易被脂肪酶水解，從而釋放更多的脂肪酸。

圖7 小腸消化階段乳液中游離脂肪酸的釋放曲線Fig.7 Released profile of free fatty acid from emulsions during small intestine digestion phase

3 結(jié)論

以單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）為油相，以乳清濃縮蛋白、大豆分離蛋白、酪蛋白酸鈉和吐溫80 為乳化劑制備乳液。結(jié)果表明，不同乳化劑所制備的乳液均具有較小的粒徑和均一的粒徑分布，且在14 d 的儲(chǔ)藏期內(nèi)保持相對(duì)穩(wěn)定。脂質(zhì)氧化實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，相比T80，蛋白質(zhì)作為乳化劑在抑制油脂氧化方面更加有效。在體外消化試驗(yàn)中，蛋白質(zhì)穩(wěn)定的乳液在胃消化階段出現(xiàn)大量顆粒聚集，但所選乳化劑對(duì)乳液中脂質(zhì)的最終水解程度影響不大，同時(shí)與亞麻籽油相比，單、雙脂肪酸甘油酯（亞麻酸）的初始消化速度更快，最終消化率更高。因此，為了延長(zhǎng)富含不飽和脂肪酸脂質(zhì)的貨架期并改善其消化能力，在乳液遞送體系的構(gòu)建過程中，選擇合適的乳化劑具有重要的意義。