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        藜麥NHX基因家族鑒定及鹽脅迫下表達(dá)分析

        2023-01-05 07:48:30張業(yè)猛朱麗麗陳志國(guó)
        生物技術(shù)通報(bào) 2022年12期
        關(guān)鍵詞:進(jìn)化樹擬南芥結(jié)構(gòu)域

        張業(yè)猛 朱麗麗 陳志國(guó)

        (1.中國(guó)科學(xué)院大學(xué),北京 100049;2.中國(guó)科學(xué)院高原生物適應(yīng)與進(jìn)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 中國(guó)科學(xué)院西北高原生物研究所,西寧 810001;3.青海省作物分子育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,西寧 810001)

        土壤鹽堿化是影響植物生長(zhǎng)發(fā)育的主要非生物脅迫因素之一,土壤中高濃度的Na+、Cl-不僅造成生理干旱,過(guò)量積累也會(huì)引起離子毒害,破環(huán)植物的正常生理代謝[1-2]。長(zhǎng)期的進(jìn)化過(guò)程中植物各自形成了獨(dú)特的代謝和調(diào)控機(jī)制來(lái)響應(yīng)鹽脅迫[3]。其中NHX 家族蛋白為Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,含有Na+/H+exchange(PF00999)蛋白結(jié)構(gòu)域,屬于CPA1基因家族(cation:proton antiporter-1 family),廣泛存在于細(xì)菌、酵母、植物和動(dòng)物中,主要參與調(diào)控細(xì)胞內(nèi)的離子重建和pH 平衡[4-5]。對(duì)NHX基因家族基于全基因組水平進(jìn)行鑒定、分類和分析,不僅可以為NHXs基因應(yīng)答鹽脅迫機(jī)制提供重要信息,而且為作物改良提供候選基因。

        自1976年,Ratner 等[6]在大麥中發(fā)現(xiàn)NHX基因之后,在擬南芥(Arabidopsis thaliana)[7]、水稻(Oryza sativa)[8]、普通小麥(Triticum aestivumssp.aestivum)[9]和玉米(Zea mays)[10]等植物中都相繼發(fā)現(xiàn)了NHX基因。隨著對(duì)NHX基因的深入研究,發(fā)現(xiàn)其不僅調(diào)控植物的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程,也受到各種非生物脅迫和激素的誘導(dǎo)[11-13]。如鹽脅迫條件下,白菜(Brassica campestrisssp.chinensis)中BrNHX1-1和BrNHX1-2的轉(zhuǎn)錄水平在BrNHXs成員中上調(diào)最高[14]。聚乙二醇處理?xiàng)l件下,大豆(Glycine max)中GmNHX1的轉(zhuǎn)錄水平也顯著增加[15]。脫落酸處理?xiàng)l件下,葡萄(Vitis vinifera)中VvNHX1轉(zhuǎn)錄水平上調(diào),而VvNHX5轉(zhuǎn)錄水平下調(diào)[16]。此外,過(guò)表達(dá)NHX基因可以顯著提升植物的耐鹽性,董麗君等[17]發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)AlNHX1基因大豆系對(duì)鹽脅迫的耐受性顯著提升,Yarra 等[18]在茄子(Solanum melongenaL.)中過(guò)表達(dá)TaNHX2基因可以顯著提升其鹽堿條件下植物的耐鹽性表現(xiàn),異源表達(dá)HtNHX1或HtNHX2可以增強(qiáng)水稻對(duì)鋁和土壤酸度的耐受性[19]。因此,NHX基因在植物中普遍存在,且在非生物脅迫應(yīng)答過(guò)程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。

        藜麥(Chenopodium quinoaWilld.)原產(chǎn)于南美洲安第斯地區(qū),為莧科藜屬一年生葉草本植物,是喜冷涼的高海拔鹽生植物,具有較強(qiáng)耐旱、耐鹽堿和耐瘠薄等特征[20-22]。NHX基因雖然在多種植物中已有研究,但在藜麥中NHX基因家族的報(bào)道甚少。隨著藜麥基因組數(shù)據(jù)的公布[23]和生物信息學(xué)的不斷發(fā)展,有助于藜麥NHX基因家族在全基因組水平上進(jìn)行鑒定與分析。對(duì)其理化性質(zhì)、基因結(jié)構(gòu)、系統(tǒng)發(fā)育等信息進(jìn)行全面分析,研究藜麥NHX基因家族在鹽脅迫處理下的表達(dá)特性,為后續(xù)NHX基因功能研究和進(jìn)一步利用該類基因進(jìn)行藜麥的耐鹽性遺傳改良提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        以青藜4 號(hào)為參試材料,品種認(rèn)定編號(hào):青認(rèn)備2019001。

        1.2 方法

        1.2.1 藜麥NHX基因家族成員鑒定 藜麥、擬南芥、小麥、玉米基因組數(shù)據(jù)在Ensembl 數(shù)據(jù)庫(kù)(https://www.ensembl.org/index.html)下載,Na+/H+exchange 結(jié)構(gòu)域的HMM 模型(PF00999)來(lái)自Pfam 數(shù)據(jù)庫(kù)(http://pfam.xfam.org/)。利用HMMER 3.0 進(jìn)行序列比對(duì),比對(duì)結(jié)果利用InterPro(http://www.ebi.ac.uk/interpro/)和Pfam 網(wǎng)站(http://pfam.xfam.org/)進(jìn)行驗(yàn)證,去除不含Na+/H+exchange 結(jié)構(gòu)域的蛋白序列。

        1.2.2 藜麥NHX 蛋白的理化性質(zhì)分析 利用ExPASy ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)在線軟件對(duì)藜麥NHXs 蛋白序列長(zhǎng)度、相對(duì)分子量、理論等電點(diǎn)、親水性、不穩(wěn)定系數(shù)進(jìn)行分析,采用Cell-mPLoc(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/plantmulti/)在線軟件對(duì)NHXs 蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)。

        1.2.3 藜麥NHX基因家族成員的基因結(jié)構(gòu)和保守結(jié)構(gòu)域分析 使用GSDS 2.0(http://gsds.gao-lab.org/index.php)在線軟件對(duì)NHXs基因結(jié)構(gòu)進(jìn)行可視化分析,采用MEME 4.12 進(jìn)行NHXs 蛋白motif 分析,通過(guò)TBtools 進(jìn)行可視化。

        1.2.4 藜麥NHX基因家族成員系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建 利用MRGA 7.0 中Neighbor-joining 法,設(shè)置Bootstrap值為1 000,對(duì)HMMER 搜索到的藜麥、擬南芥、小麥和玉米的NHXs基因進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹的構(gòu)建,采用iTOL(https://itol.embl.de/)在線軟件進(jìn)行調(diào)整。

        1.2.5 鹽脅迫處理 挑選籽粒飽滿、大小一致的種子,用75%的乙醇溶液消毒5 min 后,無(wú)菌水沖洗至干凈無(wú)味,用濾紙吸取種子表面水分,平整鋪放在放有2 層濾紙的種子萌發(fā)盒中,置于12 h(25℃)光照/12 h(20℃)黑暗條件的人工氣候培養(yǎng)箱中萌發(fā)。萌發(fā)1 d 后,選取生長(zhǎng)狀態(tài)良好、一致的幼苗進(jìn)行300 mmol/L NaCl 脅迫處理,分別于0、24、48和72 h 整株取樣,液氮迅速冷凍,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.6 藜麥鹽脅迫條件下表達(dá)模式分析 總RNA提取和cDNA 模板第一鏈的制備分別采用生工生物有限公司(上海)的植物總RNA 快速提取試劑盒和AMV 第一鏈cDNA 合成試劑盒。產(chǎn)物在-80℃保存,委托生工生物有限公司進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序。選取4 個(gè)具有不同表達(dá)模式的NHX基因(AUR62041754、AUR62027477、AUR62043892和AUR62017691) 進(jìn)行RT-qPCR 驗(yàn)證轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。引物在生工生物有限公司合成(表1),反應(yīng)體系為20 μL(cDNA 1 μL、上下游引物各0.8 μL、MIX 10.4 μL、ddH2O 7 μL)。反應(yīng)程序?yàn)?5℃ 30 s、95℃ 5 s、60℃ 34 s、95℃15 s、60℃ 60 s、95℃ 15 s,共35 個(gè)循環(huán),3 次生物學(xué)重復(fù)。

        表1 藜麥NHXs 基因?qū)崟r(shí)熒光定量引物Table 1 RT-qPCR primers of NHXs in quinoa

        1.2.7 數(shù)據(jù)分析 數(shù)據(jù)采用Excel 2010 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理,Graphpad 9.2 進(jìn)行作圖。

        2 結(jié)果

        2.1 藜麥NHXs蛋白理化性質(zhì)分析及亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)

        在藜麥基因組中共鑒定出46 個(gè)NHXs 蛋白(表2),其蛋白序列差異較大,長(zhǎng)度為109-1 820 aa,分子質(zhì)量為11 472.74-204 381.58 Da。等電點(diǎn)為5.00-9.27,其中有19 個(gè)為堿性蛋白。親水性為-0.226-1.112,除AUR62009395編碼的蛋白以外,其他全為親水蛋白。不穩(wěn)定指數(shù)在21.71-50.73 之間,有11個(gè)不穩(wěn)定系數(shù)大于40,為不穩(wěn)定蛋白,其余全為穩(wěn)定蛋白。亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)顯示,僅有AUR62033334、AUR62004319和AUR62033325編碼的蛋白定位在細(xì)胞核,其余都定位在細(xì)胞膜或液泡。

        表2 藜麥NHXs 蛋白的理化性質(zhì)及亞細(xì)胞定位Table 2 Physicochemical properties and subcellular localizations of quinoa NHXs proteins

        2.2 藜麥NHX基因家族基因結(jié)構(gòu)分析

        根據(jù)NHX基因家族的序列信息繪制每個(gè)基因的結(jié)構(gòu),結(jié)果(圖1)顯示,46 個(gè)NHXs基因外顯子數(shù)量為2-24 個(gè),內(nèi)含子為1-23 個(gè),結(jié)構(gòu)差異較大。通過(guò)系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹得出藜麥NHXs基因分為5個(gè)亞組(Subgroup I-V),且在進(jìn)化樹中位置相近的NHXs具有相似的基因結(jié)構(gòu)。

        圖1 藜麥NHXs 基因系統(tǒng)進(jìn)化樹和基因結(jié)構(gòu)Fig.1 Phylogenetic tree and gene structure of NHXs genes in quinoa

        2.3 藜麥HNX基因家族motif分析

        根據(jù)46 個(gè)NHXs 蛋白的全長(zhǎng)序列預(yù)測(cè)到10個(gè)保守結(jié)構(gòu)域(圖2),每個(gè)motif 的E 值都顯著。motif 的長(zhǎng)度在21-50 個(gè)保守氨基酸,其中motif 1 最長(zhǎng),含有50 個(gè)保守氨基酸,具有33 個(gè)位點(diǎn);motif 8-10 最短,含有21 個(gè)保守氨基酸,位點(diǎn)分別為28、30 和39。此外,在進(jìn)化樹中位置相近的NHXs蛋白具有相似motif 結(jié)構(gòu)(圖3),其中Subgroup I、II、III 和IV 中除AUR62008394 和AUR62021702 以外,41 個(gè)NHXs 蛋白N 端都含有motif 7,高度保守。Subgroup V 中的5 條NHXs 蛋白都包含motif 10,N端為motif 7 或motif 10。

        圖3 藜麥NHXs 基因motif 分析Fig.3 Motif analysis of NHXs gene in quinoa

        2.4 藜麥NHXs蛋白序列系統(tǒng)發(fā)育樹分析

        為分析藜麥NHXs 蛋白的進(jìn)化,將擬南芥(60個(gè))、小麥(119 個(gè))、玉米(66 個(gè))和藜麥(46 個(gè))共291 個(gè)含有Na+/H+exchange 保守結(jié)構(gòu)域的蛋白序列進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析(圖4)發(fā)現(xiàn),291 個(gè)蛋白可分為4 類,分別命名為Group I、Group II、Group III 和Group IV。其中Group I 中含有63 個(gè)蛋白序列,擬南芥、小麥、玉米和藜麥分別含有10、27、18 和8個(gè);Group II 含有86 個(gè)蛋白質(zhì)序列,擬南芥、小麥、玉米和藜麥分別含有15、42、25 和4 個(gè);Group III含有29 個(gè)蛋白質(zhì)序列,擬南芥、小麥、玉米和藜麥分別含有3、11、10 和5 個(gè);Group IV 含有113 個(gè)蛋白質(zhì)序列,擬南芥、小麥、玉米和藜麥分別含有32、39、13 和29 個(gè)。

        圖4 擬南芥、小麥、玉米和藜麥的NHXs 蛋白的系統(tǒng)進(jìn)化分析Fig.4 Phylogenetic analysis of NHXs proteins in Arabidopsis,wheat,maize and quinoa

        2.5 藜麥NHXs基因鹽脅迫下表達(dá)模式及GO注釋

        NaCl 脅迫下轉(zhuǎn)錄組分析結(jié)果(圖5-A)顯示,隨脅迫時(shí)間增加,16 個(gè)NHXs 基因的表達(dá)模式為先上升后下降,10 個(gè)一直上升,9 個(gè)一直下降,11 個(gè)無(wú)明顯變化。通過(guò)GO 注釋到37 個(gè)具有基因注釋的NHXs 基因,其中分子功能4 個(gè),生物學(xué)過(guò)程33 個(gè)。4 個(gè)分子功能基因編碼的蛋白為離子跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白活性基因,33 個(gè)生物學(xué)過(guò)程基因包含1 個(gè)金屬離子穩(wěn)態(tài)、1 個(gè)鈉離子質(zhì)膜導(dǎo)入、1 個(gè)正向調(diào)控代謝過(guò)程、21 個(gè)穩(wěn)態(tài)過(guò)程、4 個(gè)蛋白質(zhì)定位、4 個(gè)調(diào)節(jié)代謝過(guò)程和1 個(gè)鉀離子穩(wěn)態(tài)基因(圖5-B)。選擇表達(dá)模式不同的4 個(gè)NHX基因進(jìn)行RT-qPCR 驗(yàn)證轉(zhuǎn)錄組準(zhǔn)確性發(fā)現(xiàn),AUR62017691隨脅迫時(shí)間的增加表達(dá)量上升,AUR62043892隨脅迫時(shí)間的增加表達(dá)量先上升后下降,而AUR62041754和AUR62027477隨脅迫時(shí)間的增加表達(dá)量均降低,與轉(zhuǎn)錄組結(jié)果基本一致(圖5-C)。

        圖5 藜麥NHXs 基因表達(dá)模式與GO 注釋Fig.5 Gene expression patterns and GO annotations of NHXs in quinoa

        3 討論

        3.1 藜麥NHXs基因的結(jié)構(gòu)與系統(tǒng)進(jìn)化

        NHXs 蛋白主要依靠液泡膜質(zhì)子泵建立的質(zhì)子濃度差提供能量進(jìn)行Na+和H+跨膜反向運(yùn)輸,將Na+區(qū)隔化,可以降低胞質(zhì)中的滲透勢(shì),也避免了過(guò)高的離子濃度對(duì)胞質(zhì)中細(xì)胞器的損傷[25]。液泡膜NHXs 蛋白與質(zhì)膜上的NHXs 蛋白協(xié)同調(diào)控整個(gè)植株的鹽分分配,構(gòu)成了細(xì)胞內(nèi)鹽分區(qū)隔化的基礎(chǔ)。前人對(duì)NHX基因家族已有大量研究,且多個(gè)物種的NHXs基因家族已經(jīng)被鑒定出來(lái),例如在葡萄中發(fā)現(xiàn)了8 個(gè)NHX基因家族成員[26],在香蕉(Musa acuminata)中鑒定出了11 個(gè)NHX基因家族成員[27]。藜麥在我國(guó)是一種新型的小宗作物,具有較強(qiáng)的耐鹽性[20],Na+在鹽囊泡中大量積累和液泡區(qū)隔化以維持細(xì)胞內(nèi)離子穩(wěn)態(tài),是藜麥適應(yīng)鹽脅迫的重要策略。因此本研究基于藜麥基因組數(shù)據(jù),共鑒定了46個(gè)NHXs基因,編碼46 個(gè)NHXs 蛋白,在進(jìn)化樹中位置相近的NHXs基因具有相近的結(jié)構(gòu),NHXs 蛋白具有相似motif 結(jié)構(gòu),并且在擬南芥、小麥和玉米中分別鑒定出含有Na+/H+exchange 結(jié)構(gòu)域的NHXs 蛋白60、119 和66 個(gè),對(duì)擬南芥、小麥、玉米和藜麥中鑒定的291 個(gè)NHXs 蛋白親緣關(guān)系進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),4 種植物在系統(tǒng)進(jìn)化樹中分布均勻,并未出現(xiàn)同一植物的NHXs 蛋白成員聚在同一分支中,說(shuō)明不同植物間NHXs 蛋白多為直系同源蛋白。推測(cè)Na+區(qū)隔化是藜麥應(yīng)對(duì)鹽脅迫的重要機(jī)制之一,且與擬南芥、小麥和玉米的調(diào)控機(jī)制相似。

        3.2 藜麥NHXs基因參與鹽脅迫條件下的離子穩(wěn)態(tài)和鹽分分配

        隨著高通量測(cè)序技術(shù)及現(xiàn)代分子克隆技術(shù)的發(fā)展,越來(lái)越多的NHX 蛋白在植物、動(dòng)物和真菌中被發(fā)現(xiàn),并將NHXs 蛋白家族分為Class-I 和Class-II 兩個(gè)亞組,Class-I 主要定位在液泡膜,Class-II 主要定位在小囊泡內(nèi),且二者具有20%-25%的同源性[28]。此外,Lu 等[29]也表示植物中的NHXs 蛋白主要分為兩類,一類主要定位在質(zhì)膜上,另一類主要定位在液泡膜上。藜麥中鑒定出的46 個(gè)NHX蛋白通過(guò)亞細(xì)胞定位顯示多數(shù)蛋白定位在細(xì)胞膜和液泡中,推測(cè)該基因家族在藜麥中集中在質(zhì)膜或內(nèi)膜系統(tǒng)表達(dá),這與多種植物中NHXs 蛋白的定位一致[27,30]。并且越來(lái)越多的研究結(jié)果表明,過(guò)表達(dá)NHXs 基因可以顯著提升植株對(duì)鹽脅迫的耐受性[17-18]。例如,郝東風(fēng)等[31]將鹽角草(Salicornia)的NHX基因?qū)敫仕{(lán)型油菜(B.napus)中可以提升植株對(duì)NaCl 脅迫的耐受性。趙云霞等[32]將無(wú)苞芥(Arabidopsis pumila)中OpNHX1基因?qū)氲綌M南芥中可以顯著提升轉(zhuǎn)基因植株在鹽脅迫下的存活率。而藜麥中鑒定出的46 個(gè)NHXs基因在NaCl 脅迫下,有26 個(gè)隨脅迫時(shí)間逐漸升高,9 個(gè)隨脅迫時(shí)間逐漸下降,但是響應(yīng)時(shí)間和表達(dá)量存在較大差異,表明35 個(gè)NaCl 脅迫誘導(dǎo)表達(dá)的NHXs基因在藜麥鹽脅迫過(guò)程響應(yīng)機(jī)制存在差異,與Ruiz 等[33]報(bào)道的藜麥在鹽脅迫條件下,響應(yīng)基因的表達(dá)具有時(shí)間依賴性一致。此外,46 個(gè)NHXs基因通過(guò)GO 注釋到37 個(gè),其中參與生物學(xué)過(guò)程的33 個(gè),具有分子功能的4 個(gè),2 級(jí)注釋多是參與離子、細(xì)胞穩(wěn)態(tài)和離子跨膜運(yùn)輸過(guò)程。因此,推測(cè)受到鹽脅迫誘導(dǎo)表達(dá)且GO 注釋到功能的35 個(gè)NHXs基因,參與調(diào)控藜麥鹽脅迫條件下的離子穩(wěn)態(tài)和鹽分分配。

        4 結(jié)論

        共鑒定出46 個(gè)藜麥NHX基因家族成員,編碼46 個(gè)NHX 蛋白,同一亞組具有相似的基因結(jié)構(gòu)和蛋白質(zhì)motif,多數(shù)定位在細(xì)胞膜和液泡中,與小麥、玉米、擬南芥為直系同源蛋白。其中35 個(gè)參與藜麥鹽脅迫調(diào)控過(guò)程,為NHXs基因家族響應(yīng)鹽脅迫的分子機(jī)制研究奠定理論基礎(chǔ)。

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