郭 宇 文詩雨 倪 策 歐曉暉 屈婷敏 吳 穎 賀舒雯 李虹輝 崔 波 程云輝, 文 李
(1. 長沙理工大學食品與生物工程學院,湖南 長沙 410000;2. 中國科學院大學生命科學學院,北京 101408;3. 齊魯工業(yè)大學〔山東省科學院〕食品科學與工程學院,山東 濟南 250353)
近年來,中國水產(chǎn)品產(chǎn)量激增,加工副產(chǎn)物亦增多,但因其組成成分多、處理困難等,只有少部分能用作養(yǎng)殖飼料,絕大部分被丟棄處理,造成大量優(yōu)質(zhì)資源浪費。海灣扇貝(Argopectenirradians)是一種高蛋白、低脂、食用價值高的海鮮產(chǎn)品[1],其加工副產(chǎn)物富含蛋白質(zhì),有研究[2]嘗試將其加工副產(chǎn)物應(yīng)用到食品、保健品等領(lǐng)域,這對扇貝加工副產(chǎn)物的深入研究具有重要的應(yīng)用價值[3]。
氧化應(yīng)激是指體內(nèi)活性氧自由基快速積累,但清除防御系統(tǒng)不能及時清除而導致的機體受損[4]。生物活性肽是蛋白質(zhì)中天然氨基酸以不同組成和排列方式構(gòu)成的不同肽類的總稱,是源于蛋白質(zhì)的多功能活性因子[5]。其中抗氧化多肽可消除體內(nèi)多余的氧自由基,減輕自由基對機體的損傷,因而可用于治療由自由基積累引發(fā)的疾病[6]。由于人工合成抗氧化肽的安全性仍受到廣泛質(zhì)疑,因而食源性抗氧化肽備受青睞[7]。從天然食物中獲得氧自由基清除劑或抗氧化劑,是未來預(yù)防氧化應(yīng)激潛在的有效治療策略。而利用天然植物或動物加工副產(chǎn)物蛋白來制備生物活性肽,既可以避免蛋白質(zhì)資源的浪費,又可以開發(fā)出新型的天然抗氧化劑[8-9]。
研究擬利用堿提酸沉法、堿提硫酸銨沉法和低溫乙醇變性沉淀法,從扇貝加工副產(chǎn)物中提取扇貝蛋白。采用胃蛋白酶、中性蛋白酶、堿性蛋白酶和風味蛋白酶對副產(chǎn)物中蛋白質(zhì)進行酶解,并分析酶解產(chǎn)物的抗氧化活性,以期更好地為扇貝加工副產(chǎn)物的高值化利用提供依據(jù)。
1.1.1 材料與試劑
扇貝加工副產(chǎn)物:煙臺東宇海珍品有限公司;
堿性蛋白酶、中性蛋白酶、胃蛋白酶、風味蛋白酶:生物試劑,北京索萊寶科技有限公司;
十二烷基硫酸鈉(SDS)、N,N,N,N-四甲基乙二胺(TEMED):純度99%,上海麥克林生化科技有限公司;
1,1-二苯基-2-苦肼基自由基(DPPH):純度97%,上海麥克林生化科技有限公司;
2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS):純度98%,嘉興思誠化工有限公司;
谷胱甘肽(GSH):純度≥98%,北京酷來搏科技有限公司;
其他化學試劑:分析純,中國醫(yī)藥集團有限公司。
1.1.2 主要儀器設(shè)備
電熱恒溫鼓風干燥箱:DHG-9246A型,太倉精宏實驗設(shè)備有限公司;
超級水浴:HH-601型,常州金壇良友儀器有限公司;
電子天平:AX224ZH型,奧豪斯儀器(常州)有限公司;
冷凍干燥機:LGJ-25C型,四環(huán)福瑞科儀科技發(fā)展有限公司;
電泳儀:DYY-6C型,北京市六一儀器廠;
磁力攪拌器:8S-1型,常州國字儀器制造有限公司;
快速混勻器:XH-C型,金壇市醫(yī)療儀器廠;
脫色搖床:TS-1000型,海門市其林貝爾儀器制造有限公司;
臺式高速冷凍離心機:TGL-16M型,湘儀離心機有限公司;
分光光度計:島津UV1800型,島津國際貿(mào)易(上海)有限公司;
超微弱發(fā)光測量儀:BPCL-1-TGC型,廣州微光科技有限公司;
高效液相色譜系統(tǒng):Waters e2695型,泰靈佳科技有限公司;
重金屬消解儀:SH230N型,濟南海能儀器有限公司。
1.2.1 扇貝加工副產(chǎn)物蛋白提取 采用低溫乙醇變性沉淀法、堿提酸沉法和堿提硫酸銨沉淀法3種方法進行蛋白質(zhì)的提取,并利用凱氏定氮法進行純度對比。
(1) 低溫乙醇變性沉淀法:在胡昂等[10]方法的基礎(chǔ)上優(yōu)化。將扇貝加工副產(chǎn)物洗凈,凍干48 h后,用研缽研磨2 h磨成粉末。將扇貝副產(chǎn)物粉和95%乙醇分別置于4 ℃冰箱預(yù)冷4 h,按m扇貝副產(chǎn)物粉∶V乙醇=1∶10 (g/mL) 的物料比將95%乙醇加入扇貝副產(chǎn)物粉中,調(diào)節(jié)pH值至7.0,置于4 ℃冰箱反應(yīng)24 h。將混合液于5 000 r/min下離心20 min,收集沉淀,并按1∶2 (g/mL)的物料比加入95%乙醇,再次置于4 ℃冰箱反應(yīng)24 h。取出混合液在上述條件下離心,收集沉淀于-20 ℃冰箱凍存。
(2) 堿提酸沉法:在李麗等[11]方法的基礎(chǔ)上優(yōu)化。將扇貝副產(chǎn)物粉與0.1 mol/L NaOH按m扇貝副產(chǎn)物粉∶VNaOH=1∶30 (g/mL)的物料比混合,攪拌均勻,并調(diào)節(jié)pH值至12,超聲處理30 min。將混合液置于40 ℃水浴鍋中攪拌9 h,8 000 r/min離心15 min,收集上清。用1.0 mol/L HCl調(diào)節(jié)pH值至4.4,8 000 r/min離心15 min,收集沉淀于-20 ℃冰箱凍存。
(3) 堿提硫酸銨沉淀法:在劉泰標等[12]方法的基礎(chǔ)上優(yōu)化。將扇貝副產(chǎn)物粉與0.1 mol/L NaOH按m扇貝副產(chǎn)物粉∶VNaOH=1∶40 (g/mL)的物料比混合,攪拌均勻,并超聲處理30 min,置于30 ℃水浴鍋中反應(yīng)11 h。于4 ℃,10 000 r/min離心10 min,收集上清。加入過飽和硫酸銨,置于4 ℃冰箱中過夜。于上述條件下離心,取沉淀,袋透析48 h后收集透析液,置于-20 ℃冰箱中凍存。
將以上3種方法提取的蛋白質(zhì)置于提前預(yù)凍1 h的真空冷凍干燥機中-60 ℃凍干48 h,得到固體粉末,分別密封保存。
1.2.2 扇貝加工副產(chǎn)物蛋白含量分析 按GB/T 6432—2018執(zhí)行。
1.2.3 SDS-PAGE凝膠電泳 根據(jù)O'Sullivan等[13]的方法,修改如下:濃縮膠和分離膠含量分別為5%和12%,上樣體積為20 μL。20 mA恒流進樣15 min,40 mA恒流電泳至溴酚藍指示劑距離凝膠底部1 cm。
1.2.4 酶解物的制備 稱取堿提硫酸銨沉淀法制備的扇貝蛋白1.500 0 g,按料液比m扇貝蛋白∶V去離子水=1∶50 (g/mL) 加入去離子水,水化2 h。按表1分別加入4種酶進行酶解,酶解時加入0.1 mol/L HCl或NaOH使pH值穩(wěn)定在設(shè)定值,并記錄所消耗的酸堿體積,計算水解度(DH)。酶解結(jié)束后,將酶解產(chǎn)物置于99 ℃滅活8 min。冷卻后,10 000 r/min離心15 min,取上清液凍干(-60 ℃,48 h)。上述試驗均設(shè)置3個平行試驗。
表1 不同蛋白酶的反應(yīng)條件
1.2.5 酶解物的抗氧化活性檢測
(1) DPPH自由基清除率:根據(jù)GB/T 39100—2020。取3支試管,按表2添加試劑。
1號管為試驗組(As),2號管為對照組(Ac),3號管為空白組(Ab),混勻后避光反應(yīng)30 min,517 nm下檢測吸光值。其中,使用樣品溶劑調(diào)零,谷胱甘肽作陽性對照,進行3次平行試驗。按式(1)計算DPPH自由基清除率。
(1)
式中:
P——清除率,%;
As——待測溶液與DPPH溶液混合液的吸光度;
Ac——待測溶液與無水乙醇溶液混合液的吸光度;
Ab——DPPH溶液與樣品溶劑溶液混合液的吸光度。
(2) ABTS自由基清除率:根據(jù)GB/T 39100—2020。取2支試管,按表3添加試劑。
表3 ABTS 試劑添加量
1號管為試驗組(As),2號管為空白組(Ab),混勻后避光反應(yīng)5 min,734 nm下檢測吸光值。其中,使用樣品溶劑調(diào)零,谷胱甘肽作陽性對照,進行3次平行試驗。按式(2)計算ABTS自由基清除率。
(2)
式中:
P——清除率,%;
Ab——ABTS+溶液與樣品溶劑溶液混合液的吸光度;
As——待測溶液與ABTS+溶液混合液的吸光度。
(3) 羥自由基清除率:利用紫外超微弱發(fā)光測量儀檢測羥自由基清除能力[14]。用硼砂溶液潤洗測量管,按表4 加入溶液。將混合液放入反應(yīng)池,設(shè)置反應(yīng)時間為900 s,每0.1 s測定一次發(fā)光強度,記錄峰值,平行測定3次。以蒸餾水為空白對照,谷胱甘肽為陽性對照。
按式(3)計算羥自由基清除率。
(3)
式中:
P——清除率,%;
Lb——樣品溶劑溶液混合液的發(fā)光強度;
Ls——待測溶液與樣品溶劑溶液混合液的發(fā)光強度。
表4 羥自由基試劑添加量
(4) 還原能力:在Wang等[15]方法的基礎(chǔ)上優(yōu)化,將1 mL扇貝肽、2.5 mL 0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 6.6)和2.5 mL 1.0 g/100 mL鐵氰化鉀溶液混合。50 ℃下反應(yīng)25 min。混合物中加入0.5 mL 1.0 g/100 mL TCA,6 500 r/min 離心10 min。取2.5 mL上清液與2.5 mL 去離子水和0.5 mL 1.0 g/100 mL氯化鐵溶液混合。反應(yīng)10 min后,700 nm處測定吸光度。使用樣品溶劑調(diào)零,谷胱甘肽做陽性對照。
1.2.6 中性酶解產(chǎn)物的分子量分布分析 采用高效凝膠過濾色譜法分析中性酶解產(chǎn)物的相對分子量分布[16]。以多孔性填料為固定相,依據(jù)酶解混合物中肽分子大小進行分離。在肽鍵的紫外吸收波長220 nm處檢測吸光度,使用Empower軟件對色譜圖及其數(shù)據(jù)進行處理。通過計算肽的相對分子質(zhì)量大小及分布范圍,得出不同分子量大小的肽所占百分比。
1.2.7 中性酶解產(chǎn)物的氨基酸組分測定
(1) 氨基酸含量:利用鹽酸將中性酶解產(chǎn)物徹底水解成游離氨基酸(色氨酸在酸水解過程中幾乎完全被破壞,因此無法測定其含量),經(jīng)過離子交換柱分離,分離產(chǎn)物與茚三酮溶液反應(yīng)變色,通過可見光—分光光度檢測器測定氨基酸含量[17]。
按式(4)計算樣品測定液氨基酸含量。
(4)
式中:
Ci——扇貝肽液中氨基酸濃度,nmol/mL;
Ai——扇貝肽液中氨基酸的峰面積;
As——氨基酸標準液的峰面積;
Cs——氨基酸標準液濃度,nmol/mL。
按式(5)計算試樣中各氨基酸含量。
(5)
式中:
Xi——扇貝肽氨基酸的含量,g/100 g;
F——稀釋倍數(shù);
V——定容體積, mL;
M——氨基酸摩爾質(zhì)量,g/mol;
m——稱樣量,g。
(2) 羥脯氨酸含量:在105 ℃下用硫酸水解扇貝肽,水解結(jié)束后過濾并稀釋。羥脯氨酸與氯胺T發(fā)生反應(yīng)后,一定條件下可以與對二甲基氨基苯醛生成紅色產(chǎn)物,在550 nm處有最大吸收值[18]。按式(6)計算羥脯氨酸含量。
(6)
式中:
X——扇貝肽中羥脯氨酸含量,%;
C——利用標準方程計算得出扇貝肽液中羥脯氨酸質(zhì)量濃度,μg/mL;
m——扇貝肽的質(zhì)量,g;
v——在250 mL容量瓶中吸取的濾液體積,mL。
1.2.8 統(tǒng)計分析 用SPSS 23.0軟件進行統(tǒng)計分析,設(shè)置最小顯著水平為0.05,進行分析及差異顯著性檢驗。對不同處理數(shù)據(jù)進行Duncan多重比較,數(shù)據(jù)以平均值±標準差表示。
2.1.1 蛋白質(zhì)含量 如圖1所示,3種方法所提蛋白含量均超過80%。李麗等[11]利用堿提酸沉法提取扇貝蛋白,蛋白含量為77.97%;在此法基礎(chǔ)上進行優(yōu)化,提取過程中增加超聲波處理,并將酸沉的pH值由4.1提高到4.4,增加了蛋白質(zhì)的沉淀量,因而所提取蛋白含量有所提高,達82.95%。劉泰標等[12]利用堿提硫酸銨沉法從牡蠣中提取含硒蛋白質(zhì),含硒蛋白量為44.90%;對該提取方法進行優(yōu)化,增加超聲波處理并將堿提的時間由9 h延長至11 h,獲得扇貝蛋白含量達(91.16±1.36)%。經(jīng)比較,優(yōu)化后的堿提硫酸銨沉淀法最適合從扇貝副產(chǎn)物中提取蛋白質(zhì)。
字母不同表示差異顯(P<0.05)圖1 3種提取方法所獲蛋白含量
2.1.2 SDS-PAGE分析 如圖2所示,乙醇變性法所提取的蛋白降解嚴重,而堿提酸沉法只能提取部分蛋白質(zhì),無法獲得全蛋白。堿提硫酸銨沉法所提取的蛋白質(zhì)分子量分布最廣,電泳分離條帶清晰,說明提取過程中蛋白質(zhì)未被降解且雜質(zhì)干擾少。
綜合蛋白提取純度和電泳條帶效果,對堿提硫酸銨沉法所提蛋白進行酶解。
M. 分子量標記 1. 乙醇變性沉淀法 2. 堿提硫酸銨沉法3. 堿提酸沉法圖2 不同提取方法所獲蛋白質(zhì)SDS-PAFGE電泳圖譜
2.2.1 DPPH自由基清除率 如圖3所示,陽性對照谷胱甘肽對DPPH自由基的清除率為(95.67±0.09)%;4種扇貝肽中,中性蛋白酶酶解產(chǎn)物的DPPH自由基清除率最高,為(29.20±0.73)%。
字母不同表示差異顯著(P<0.05)圖3 4種酶解產(chǎn)物的DPPH自由基清除率
2.2.2 ABTS自由基清除率 如圖4所示,酶解物和谷胱甘肽濃度相同,谷胱甘肽的ABTS自由基清除率高達(99.80±0.01)%,而樣品中清除力最強的是堿性蛋白酶酶解物,清除率為(69.75±0.79)%,其次是中性蛋白酶酶解物和風味蛋白酶酶解物;而胃蛋白酶對ABTS自由基清除率最低。Wang等[4]在分析不同酶解產(chǎn)物的抗氧化活性時也發(fā)現(xiàn)堿性蛋白酶酶解物的ABTS自由基清除率最高,不過清除率僅為40%。研究中,除胃蛋白酶酶解產(chǎn)物外,所獲得的其他3種酶解產(chǎn)物的ABTS自由基清除率均高于50%,具有較強的抗氧化能力。
比較圖3和圖4,研究制備的4種扇貝蛋白酶酶解物對ABTS自由基的清除力整體高于對DPPH自由基的,說明從扇貝加工副產(chǎn)物中提取的蛋白質(zhì),經(jīng)4種蛋白酶水解后,產(chǎn)生了更多有利于清除ABTS自由基的肽段。
字母不同表示差異顯著(P<0.05)圖4 4種酶解物的ABTS自由基清除率
2.2.3 羥自由基清除率 如圖5所示,4種扇貝蛋白酶解物中,清除效果最佳的是中性蛋白酶酶解物和風味蛋白酶酶解物,二者無顯著差異,清除率均超過80%,而堿性蛋白酶酶解物的清除率最低。
字母不同表示差異顯著(P<0.05)圖5 4種酶解物的羥自由基清除率
2.2.4 還原能力 如圖6所示,4種酶解產(chǎn)物中,中性蛋白酶酶解物的還原能力最強。由于試驗采用的扇貝蛋白酶解混合物,未對特定抗氧化肽進行純化,產(chǎn)物中含有多個不同氨基酸序列的寡肽,因而其還原力低于純肽——谷胱氨肽。
字母不同表示差異顯著(P<0.05)圖6 4種酶解物的還原能力Figure 6 Reduction capacity of four kinds of enzymatic hydrolysates (n=9)
中性蛋白酶酶解產(chǎn)物的抗氧化活性高于其他酶解物。為了解該酶解產(chǎn)物的營養(yǎng)特性,進一步對其氨基酸組分及羥脯氨酸含量進行分析。
2.3.1 分子量分布 如圖7所示,根據(jù)出峰時間和峰面積,利用Empower軟件處理中性蛋白酶水解物的分子量分布(表5)。扇貝肽相對分子量主要分布在200~5 000 Da,總占比達(95.17±1.49)%,說明中性蛋白酶對扇貝加工副產(chǎn)物的酶解較充分,可以獲得大量的小分子肽產(chǎn)物。
2.3.2 氨基酸組分分析 如圖8和表6所示,由中性蛋白酶制備的扇貝肽中含天冬氨酸等15種氨基酸,總量達84 g/100 g。研究制備的扇貝肽中含蘇氨酸、纈氨酸、蛋氨酸、異亮氨酸、亮氨酸、苯丙氨酸6種必需氨基酸,含量為(10.61±0.30) g/100 g;且扇貝肽中潛在抗氧化氨基酸有Ala、Tyr、Pro 3種,含量達(14.78±0.32) g/100 g,具有很高的營養(yǎng)價值。
圖7 中性蛋白酶水解產(chǎn)物分子量分布的HPLC圖Figure 7 HPLC map of dispase hydrolysates
表5 中性蛋白酶水解產(chǎn)物分子量分布
2.3.3 羥脯氨酸含量 經(jīng)測定,中性蛋白酶水解物的吸光度為0.41,羥脯氨酸含量為(11.82±0.09)%。Liu等[19]研究表明,膠原蛋白中含有較多羥脯氨酸,每天攝入膠原蛋白水解物可改變?nèi)梭w血液中肽的組成比例,并保持較高水平肽含量。羥脯氨酸是一種亞氨基酸,可使膠原肽衍生為低聚肽,對蛋白酶產(chǎn)生高抗性,防止被機體的蛋白酶水解。這類肽經(jīng)口服至腸道吸收并進入血液過程中,能始終以肽形式存在。因此含羥脯氨酸的小分子肽能完整通過腸細胞中肽轉(zhuǎn)運體系,進而吸收入血液,更穩(wěn)定、高效地發(fā)揮肽的生物活性[20-21]。
圖8 中性蛋白酶水解產(chǎn)物氨基酸分析色譜圖Figure 8 Amino acid analysis chromatogram of dispase hydrolysates
表6 中性蛋白酶水解產(chǎn)物中氨基酸組分及其含量?
利用優(yōu)化的堿提硫酸銨沉法,在物料比(m扇貝副產(chǎn)物粉∶VNaOH)1∶40 (g/mL)、30 ℃沉淀11 h的條件下,從扇貝加工副產(chǎn)物中提取蛋白質(zhì),可獲得純度高達(91.16±1.36)%的蛋白質(zhì)產(chǎn)物。不同酶解物對于不同自由基清除效果不同,但總體上利用中性蛋白酶制備的扇貝肽的DPPH自由基清除力、羥自由基清除力及還原能力更佳。對中性蛋白酶物的氨基酸組分分析結(jié)果表明,扇貝肽中富含多種氨基酸,包括6種人體必需氨基酸,且羥脯氨酸含量達(11.82±0.09)%,營養(yǎng)價值高。含羥脯氨酸的小分子肽在人體內(nèi)可穩(wěn)定高效地發(fā)揮其生物活性,這是今后將進一步探討的課題。此外,借鑒Wen等[8]和Qu等[22]報道的生物信息學研究手段,有望篩選出潛在的特定氨基酸序列的扇貝源生物活性肽。