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        超聲輔助法提取辣椒多糖的工藝優(yōu)化及其 抗氧化活性研究

        2022-10-20 09:06:08楊春梅,高燕紅,楊丹妮
        現(xiàn)代食品 2022年17期
        關(guān)鍵詞:清除率光度辣椒

        辣椒(Capsicum annuumL.)屬于茄科辣椒屬植物,為一年生或多年生草本植物[1]。辣椒中含有如多糖、色素、辣椒堿和蛋白質(zhì)等多種有效成分[2-3],且具有一定的保健功能和營養(yǎng)價(jià)值,深受人們的喜愛[4]。

        在辣椒的加工生產(chǎn)過程中,會(huì)產(chǎn)生大量的辣椒渣、辣椒桿等副產(chǎn)物。研究發(fā)現(xiàn),辣椒渣中的多糖較為豐富[5]。植物多糖具有抗氧化[6]、抗腫瘤[7]、抗衰老[8]和免疫調(diào)節(jié)[9]等多種生物活性,甚至對艾滋病毒有一定的防御能力[10],且具有毒副作用小和不易造成殘留等優(yōu)點(diǎn)[11]。國內(nèi)外對辣椒渣中研究較多的為蛋白和膳食纖維,對多糖研究較少。而植物多糖的提取、功能性及應(yīng)用是目前研究的重點(diǎn)[12]。本文以寧夏吳忠市農(nóng)作物——辣椒為原料,采用超聲輔助法提取辣椒多糖,在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化辣椒多糖提取條件,并對產(chǎn)物進(jìn)行體外抗氧化活性評價(jià),為辣椒渣進(jìn)一步的綜合利用打下了研究基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        辣椒粉,無籽辣椒渣產(chǎn)自寧夏寧楊食品有限公司。

        無水乙醇、抗壞血酸、Tris-HCl緩沖溶液、鹽酸、PBS緩沖液、過氧化氫、DPPH、ABTS、鄰二氮菲、過硫酸鉀、鐵氰化鉀、鄰苯三酚、磷酸鈉、三氯醋酸、FeSO4以及FeCl3等,均為分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        ME203E型電子天平,美國梅特勒公司;DF-101S型集熱式恒溫加熱磁力攪拌器,鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;KQ-250DE型數(shù)控超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司;TDL-5-A型離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;V-5100型紫外-可見分光光度計(jì),上海元析儀器有限公司。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 辣椒多糖的提取

        準(zhǔn)確稱取50.0 g辣椒粉末,加入400 mL 95%乙醇,80 ℃下回流提取3 h,提取2次,抽濾,收集濾渣干燥即為脫除辣椒素樣品。取脫除辣椒素樣品30.0 g,加入360 mL蒸餾水,超聲波處理后,離心(4 500 r·min-1,20 min)除去濾渣和不溶物,合并濾液。將上述濾液減壓并濃縮至掛壁狀態(tài),室溫條件下,攪拌并加入80%的乙醇,于4 ℃條件下放置過夜,離心(4 500 r·min-1,10 min),得到沉淀物。將上述沉淀物真空干燥(真空度0.09,溫度35 ℃,時(shí)間2 h),粉碎后即可得到辣椒多糖提取物。

        1.3.2 辣椒多糖含量的測定

        采用苯酚-硫酸法測定辣椒多糖的含量[13]。

        (1)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制。準(zhǔn)確稱取干燥至恒重的葡萄糖0.100 0 g,定容于100 mL容量瓶中,配制成葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。取0 mL、0.2 mL、0.4 mL、0.6 mL、0.8 mL和1.0 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液分置于試管中,加蒸餾水至2.0 mL,再加5%的苯酚溶液1.0 mL,濃硫酸5.0 mL,搖勻,靜置10 min后,沸水浴中加熱30 min后冷卻至室溫,于490 nm處測定吸光度。用2.0 mL蒸餾水作為空白對照,制得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=16.031x+0.066 9(R2=0.993 8)。

        (2)樣液的測定。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算得出待測液中葡萄糖的含量,做3次平行。辣椒多糖含量的計(jì)算公式:

        式中:ω為辣椒多糖含量,mg·g-1;ρ為吸取的待測液中葡萄糖的濃度,mg·mL-1;f為葡萄糖換算多糖的換算因子,f=3.19;m為試樣質(zhì)量,mg。

        1.3.3 單因素試驗(yàn)

        以辣椒多糖含量為指標(biāo),分別考察料液比(1∶8、1∶10、1∶12、1∶14和1∶16)(g∶mL)、超聲功率(125 W、150 W、175 W、200 W和225 W)、超聲溫度(40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃和80 ℃)以及超聲時(shí)間(20 min、30 min、40 min、50 min和60 min)對辣椒多糖含量的影響。

        試驗(yàn)過程中,各因素控制量分別為超聲功率為175 W、超聲溫度為50 ℃、超聲時(shí)間為30 min、料液比為1∶12(g∶mL)。

        1.3.4 響應(yīng)面試驗(yàn)

        在確定單因素試驗(yàn)的較佳條件(超聲功率150 W、超聲溫度70℃、超聲時(shí)間40 min)的基礎(chǔ)上進(jìn)行Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì),以辣椒多糖含量為響應(yīng)值,設(shè)計(jì)超聲功率、超聲溫度、超聲時(shí)間3因素3水平的響應(yīng)面進(jìn)行優(yōu)化,見表1。

        表1 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平表

        1.3.5 辣椒多糖體外抗氧化活性評價(jià)

        (1)超氧陰離子的清除活性的測定。采用YANG 等[14]的方法,取 0.05 mol·L-1,pH 8.2的 Tris-HCl緩沖溶液5 mL置于試管中,水浴中(25 ℃)預(yù)熱20 min后,加入樣品溶液1 mL,加入預(yù)熱的3 mmol·L-1的鄰苯三酚溶液0.5 mL,搖勻,于水浴中反應(yīng)5 min,再加入8 mmol·L-1的鹽酸1 mL,終止反應(yīng),在299 nm處測定溶液的吸光度。按式(2)計(jì)算樣品對超氧陰離子的清除率。

        式中:Ai為樣品溶液的吸光度值;Aj為Tris-HCl緩沖液和鄰苯三酚的吸光度值;A0為Tris-HCl緩沖液的吸光度值。

        (2)羥自由基清除活性的測定。采用范艷麗等[15]的試驗(yàn)方法,根據(jù)式(3)計(jì)算樣品對羥自由基的清除率。

        式中:A0為空白對照品的吸光度;Ai為樣品溶液的吸光度。

        (3)DPPH自由基清除活性的測定。按梁萬年等[16]的試驗(yàn)方法并做修改,取0.2 mmol DPPH溶液2 mL于試管中,加入2 mL樣品溶液,搖勻,避光靜置30 min。將2 mL DPPH溶液和2 mL乙醇混合作為空白對照。在517 nm處測定各反應(yīng)混合物的吸光度。根據(jù)式(4)計(jì)算樣品對DPPH自由基的清除能力。

        式中:Ai為DPPH和樣品溶液的吸光度;Aj為乙醇和樣品溶液的吸光度;A0為DPPH和乙醇的吸光度。

        (4)ABTS自由基清除活性的測定。按方甜等[17]的試驗(yàn)方法并做修改。將配制好的7 mmol·L-1的ABTS溶液與2.45 mmol·L-1的過硫酸鉀溶液等體積濃度混合,避光放置12~16 h,得到ABTS+溶液。用蒸餾水稀釋,使其在734 nm波長處的吸光值在(0.7±0.02),取ABTS+溶液3.9 mL,加入樣品溶液0.1 mL,搖勻,室溫放置6 min,于734 nm波長處測定吸光度,以維生素C作陽性對照。根據(jù)式(5)計(jì)算樣品對ABTS+的清除能力。

        式中:A0為空白對照品的吸光度;A1為樣品溶液的吸光度。

        (5)總還原能力測定。按李進(jìn)等[18]的試驗(yàn)方法并做修改,取1 mL樣品溶液于試管中,依次加入2.5 mL 的 0.2 mol·L-1磷 酸 鈉 緩 沖 液(pH 6.6) 和1%鐵氰化鉀溶液2.5 mL,置于50 ℃水浴中,恒溫20 min后,再加入10%的三氯醋酸溶液2.5 mL,3 000 r·min-1離心10 min,取上清液2.5 mL,加入蒸餾水2.5 mL和0.1%的FeCl3溶液1 mL,搖勻,靜置10 min,在波長700 nm處測定其吸光度,以維生素C為陽性對照。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗(yàn)

        2.1.1 料液比對辣椒多糖含量的影響

        不同料液比對辣椒多糖含量的影響如圖1所示。隨著提取液的不斷增加,辣椒多糖的含量先增加后減少。在料液比為1∶12時(shí),辣椒多糖含量達(dá)到最大,隨著提取液的繼續(xù)增加,辣椒多糖含量呈現(xiàn)下降趨勢。因此,選定料液比為1∶12(g∶mL)。

        圖1 料液比對辣椒多糖含量的影響圖

        2.1.2 超聲功率對辣椒多糖含量的影響

        超聲功率對辣椒多糖含量的影響如圖2所示。當(dāng)超聲功率為150 W時(shí),辣椒多糖含量最大,之后隨著超聲功率增大而下降。這可能是因?yàn)槌暪β实脑龃螅茐牧死苯范嗵堑慕Y(jié)構(gòu)。因此,選定超聲功率為150 W。

        圖2 超聲功率對辣椒多糖含量的影響圖

        2.1.3 超聲溫度對辣椒多糖含量的影響

        超聲溫度對辣椒多糖含量的影響如圖3所示。當(dāng)超聲溫度為70 ℃時(shí),辣椒多糖的含量最大,之后隨著超聲溫度的升高,辣椒多糖的含量下降。原因可能是超聲溫度的不斷升高,辣椒多糖容易溶出,但超聲溫度過高,部分辣椒多糖會(huì)分解,導(dǎo)致辣椒多糖的含量降低。因此,選定超聲溫度為70 ℃。

        圖3 超聲溫度對辣椒多糖含量的影響圖

        2.1.4 超聲時(shí)間對辣椒多糖含量的影響

        超聲時(shí)間對辣椒多糖含量的影響如圖4所示。隨著超聲時(shí)間的不斷增加,辣椒多糖的含量也不斷增大,超聲時(shí)間為40 min時(shí)達(dá)到最大值,之后辣椒多糖的含量逐漸降低。因此,選定超聲時(shí)間為40 min。

        圖4 超聲時(shí)間對辣椒多糖含量的影響圖

        2.2 響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果分析

        基于單因素試驗(yàn),以超聲功率、超聲溫度、超聲時(shí)間為指標(biāo),采用Design Expertv8.0.6 Trial軟件進(jìn)行3因素3水平的Box-Behnken Design試驗(yàn)設(shè)計(jì)。整個(gè)試驗(yàn)設(shè)計(jì)在中心點(diǎn)處共有17次試驗(yàn),試驗(yàn)隨機(jī)完成,結(jié)果見表2。

        分別對A、B、C各因素和響應(yīng)值Y進(jìn)行回歸擬合,得到多糖含量(Y)一次多元回歸方程為Y=84.85+22.01×A-1.28×B+1.03×C+0.45×A×B-0.55×A×C+0.30×B×C-2.51×A2-3.21×B2-3.28×C2。

        表2 Box-Behnken響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果表

        該模型的方差分析結(jié)果見表3?;貧w模型P=0.012 8,表明該模型差異顯著。失擬項(xiàng)P=0.676 5>0.05,說明該模型擬合程度良好[19]。Design-Expert 8.0軟件處理得響應(yīng)面分析結(jié)果見圖5~圖7。

        由圖5~圖7可知,3個(gè)響應(yīng)因素在相對應(yīng)的試驗(yàn)范圍內(nèi)對辣椒多糖含量有顯著的影響。通過對各響應(yīng)因素交互作用對綜合評分影響的響應(yīng)面及等高線圖分析,使用Design-Expert軟件對模型進(jìn)行優(yōu)化,獲得的最優(yōu)條件為超聲功率158.03 W,超聲溫度68.48 ℃,超聲時(shí)間41.10 min,此時(shí)辣椒多糖含量為42.35 mg·g-1。

        2.3 最佳工藝條件試驗(yàn)驗(yàn)證

        根據(jù)響應(yīng)面優(yōu)化的提取工藝條件,基于試驗(yàn)的實(shí)際可操作性,對其進(jìn)行3次驗(yàn)證試驗(yàn),考察工藝模型的穩(wěn)定可靠性。根據(jù)修正后的模型優(yōu)化的最佳提取條件(超聲功率158.03 W,超聲溫度68.48 ℃,超聲時(shí)間41.10 min)進(jìn)行辣椒多糖的驗(yàn)證試驗(yàn),由于試驗(yàn)條件限制,本次試驗(yàn)設(shè)定提取條件為超聲功率150 W、溫度68 ℃,超聲時(shí)間41 min,重復(fù)測定3次,測得多糖的含量為(40.91±0.13)mg·g-1,與預(yù)測值(42.35 mg·g-1)誤差較小。因此,此模型及相關(guān)參數(shù)準(zhǔn)確可靠,能夠預(yù)測試驗(yàn)的最佳工藝條件,可用于辣椒多糖的提取條件研究中。

        表3 方差分析表

        圖5 超聲功率和超聲溫度對辣椒多糖含量影響的響應(yīng)面及等高線圖

        圖6 超聲功率和超聲時(shí)間對辣椒多糖含量影響的響應(yīng)面及等高線圖

        2.4 辣椒多糖的體外抗氧化活性測定

        2.4.1 辣椒多糖對超氧陰離子自由基的清除能力

        由圖8可知,當(dāng)樣品濃度在0.1~0.4 mg·mL-1時(shí),維生素C和辣椒多糖對超氧陰離子自由基清除率不斷增加;當(dāng)樣品濃度在0.5 mg·mL-1時(shí),維生素C的清除率能夠達(dá)到99.25%,辣椒多糖的清除率達(dá)到74.84%。結(jié)果表明,辣椒多糖對超氧陰離子自由基有一定的清除能力,但維生素C比辣椒多糖的清除能力更強(qiáng)。

        圖8 辣椒多糖提取物對超氧陰離子自由基的清除能力圖

        2.4.2 辣椒多糖對羥基自由基清除活性的測定

        由圖9可知,當(dāng)濃度為0.08 mg·mL-1時(shí),維生素C對羥自由基的清除率為93.1%;辣椒多糖對羥自由基的清除率為76.6%。辣椒多糖對羥基自由基有一定的清除能力,但弱于維生素C。

        圖9 辣椒多糖提取物對羥自由基清除活性的測定圖

        2.4.3 辣椒多糖對DPPH+清除活性的能力

        由圖10可知,當(dāng)樣品的濃度為0.1 mg·mL-1時(shí),辣椒多糖對DPPH+清除率為49%,濃度為0.4 mg·mL-1時(shí),維生素C對DPPH+清除率達(dá)到100%。當(dāng)濃度超過0.2 mg·mL-1時(shí),辣椒多糖提取物對DPPH+清除率大幅度提升,濃度為0.4 mg·mL-1時(shí)其對DPPH+的清除率為70%左右。表明辣椒多糖提取物對DPPH+具有一定的清除能力,且與其質(zhì)量濃度呈正相關(guān)。

        2.4.4 辣椒多糖對ABTS+自由基清除活性的能力

        由圖11可知,當(dāng)樣品濃度在0.2~0.5 mg·mL-1時(shí),維生素C和辣椒多糖對ABTS+自由基的清除率呈上升趨勢。濃度為0.1 mg·mL-1時(shí),辣椒多糖對ABTS+的清除率只有12%左右,其清除率隨樣品濃度的增大而增大。在濃度達(dá)到0.5 mg·mL-1時(shí),辣椒多糖對ABTS+的清除率達(dá)到最大,為18%左右。結(jié)果表明辣椒多糖對ABTS+的清除能力較維生素C弱。

        圖10 辣椒多糖提取物對DPPH+清除活性的能力圖

        圖11 辣椒多糖提取物對ABTS+清除活性的能力圖

        2.4.5 辣椒多糖的還原能力

        樣品的還原能力能夠反映一定的抗氧化性,抗氧化劑可將Fe3+絡(luò)合物還原成綠色或藍(lán)色的Fe2+絡(luò)合物。試驗(yàn)通過顯色反應(yīng)可以測定出Fe3+被還原成Fe2+程度的高低,從而可以判斷出辣椒多糖還原能力的強(qiáng)弱。

        由圖12可知,隨樣品濃度的增大,維生素C的還原能力升高,辣椒多糖升高趨勢較為緩慢。當(dāng)濃度為1.4 mg·mL-1時(shí),維生素C的清除率達(dá)到99.8%,而辣椒多糖的清除率最大為25%左右,說明辣椒多糖的還原能力弱于維生素C。

        圖12 辣椒多糖提取物的還原能力圖

        3 結(jié)論

        本文采用超聲輔助法提取辣椒多糖,通過單因素試驗(yàn)及響應(yīng)面試驗(yàn)得到辣椒多糖的最佳提取工藝為超聲功率150 W、溫度68 ℃,超聲時(shí)間41 min,在最佳工藝條件下,辣椒多糖含量為(40.91±0.13)mg·g-1,與預(yù)測值(42.35 mg·g-1)誤差較小。辣椒多糖具有較好的抗氧化活性,其對超氧陰離子、羥基自由基和DPPH+具有較好的清除作用,但清除ABTS+能力和還原能力較弱。本文可為辣椒多糖提取工藝的工業(yè)化應(yīng)用提供數(shù)據(jù)支持,同時(shí)為辣椒渣的利用提供借鑒思路。

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