張夢田,吳 麗,杜江燕*
(1.南京師范大學 化學與材料科學學院,江蘇 南京 210023;2.南通大學 公共衛(wèi)生學院,江蘇 南通 226000)
一氧化氮(NO)是生物體內普遍存在的一種內源性氣體分子,由線粒體一氧化氮合成酶在氧氣和還原性輔酶Ⅱ(NADPH)參與下催化內源性L-精氨酸分解生成[1]。NO在人體內作為代謝產物形成的控制生理過程的信號分子,廣泛參與多種生理和病理過程,在血小板聚集和細胞粘附、心力衰竭、血管舒張、炎癥等生命過程中發(fā)揮關鍵作用[2-3]。此外,NO 還與信號轉導、中樞神經系統(tǒng)紊亂、平滑肌松弛、分解代謝自噬過程和免疫反應[4-8]密切相關。NO 的生物學效應與其在細胞微環(huán)境中的濃度密切相關,對生物體而言,細胞內NO 是一把“雙刃劍”,較低濃度的NO 參與免疫及炎癥過程的信息傳遞,促進血管生成和腫瘤生長、轉移,而較高濃度的NO則會誘導腫瘤細胞凋亡,具有抗腫瘤作用[9];在免疫系統(tǒng)中,較低濃度的NO 能抑制T 細胞增殖,起抗炎作用,較高濃度的NO 則會在病原體存在時引起強烈的炎癥反應[10]。大量研究表明,NO濃度失調與一些致命疾病密切相關,如青光眼、免疫紊亂、急慢性炎癥、內皮功能障礙、神經退行性疾病、動脈粥樣硬化、感染性休克和癌癥等[11-13]。因此,體內動態(tài)檢測NO對于研究其在生命活動中的生理機制,以及多種疾病及腫瘤的臨床診斷具有非常重要的意義[14]。
與化學發(fā)光法、電化學法、電子順磁共振光譜法或紫外可見吸收光譜法等分析方法相比,熒光探針技術具有靈敏度高、響應快速和抗干擾能力強等優(yōu)點,是動態(tài)檢測活細胞及活體中NO 的重要手段[15-17]。例如,Kumar課題組[18]設計并合成了一種溶酶體靶向探針LyNP-NO,可選擇性檢測活細胞中的NO,用于動態(tài)監(jiān)測大鼠腦組織中的內源性NO 水平。Xu 等[3]設計了一種智能NO 探針PYSNO,該探針對外源性和內源性NO 均表現(xiàn)出快速反應,還可用于跟蹤和研究動物組織中NO 的產生。但現(xiàn)有的檢測NO 的熒光探針仍存在靈敏度不高、選擇性差及信號易受干擾等問題。因此,亟需開發(fā)靈敏度高、專一性好的熒光探針提高NO檢測的準確度和可靠度。
2,1,3-苯并噻二唑(Benzothiadiazole,BTD)是一種缺電子雜環(huán)結構熒光受體,具有優(yōu)良的化學和光學性能,如斯托克斯位移大、吸電子能力強、光穩(wěn)定性好等特性。本文將BTD 稠合鄰苯二胺獲得的[c][1,2,5]噻二唑-5,6-二胺([c][1,2,5]Benzothiadiazole-5,6-diamine,BTN)衍生物,作為NO 的特異性識別基團和電子受體,通過與NO 間的特異性反應識別NO。芴衍生物是一種重要的熒光分子,通過C9 位官能團的修飾可調控熒光性能。將芴衍生物作為給電子基團,噻吩作為π 橋與BTN 共價結合,構建了供體-受體-供體(D-A-D)型熒光探針4,7-雙(5-(9,9-二辛基-9H-芴-2-基)噻吩-2-基)苯并[c][1,2,5]噻二唑-5,6-二胺(4,7-Bis(5-(9,9-dioctyl-9H-fluoren-2-yl)thiophen-2-yl)benzo[c][1,2,5]thiadiazole-5,6-diamine,BTBTN)。此探針結構中鄰苯二胺與NO 反應后形成苯并三氮唑結構,分子內電荷轉移(ICT)效應增強,吸收光譜明顯紅移,熒光探針在紅光波段處熒光減弱,而在近紅外波段處熒光增強,可實現(xiàn)NO 的比率計量檢測。相較于傳統(tǒng)的增強型或猝滅型NO 熒光探針,該探針通過比率計量熒光可實現(xiàn)背景熒光低、抗干擾能力強的NO近紅外熒光分析和檢測。
賴氨酸、甘氨酸和抗壞血酸購于上海阿拉丁生化科技股份有限公司;DL-同型半胱氨酸、L-半胱氨酸、9,9-二辛基-2-溴芴、N-乙酰-L-半胱氨酸和丙酮醛購于上海麥克林生化科技有限公司;4,7-二溴-2,1,3-苯并噻二唑、谷胱甘肽和一氧化氮供體鹽(2-(N,N-二乙基氨基)-二氮烯-2-氧鈉鹽水合物)購于Sigma-Aldrich西格瑪奧德里奇(上海)貿易有限公司;其他試劑購于國藥集團化學試劑有限公司;實驗所用試劑均為分析純。溶液用二次水配制。
核磁共振碳譜(13C-NMR)、核磁共振氫譜(1H-NMR)測試實驗采用Bruker Avance III HD 400 MHz超導核磁共振儀。高分辨率質譜儀(HRMS)采用美國Thermo Fisher Scientific 公司生產的Orbitrap Fusion Lumos。紫外吸收光譜實驗采用日本島津公司生產的UV-1900型紫外可見光譜儀。熒光光譜實驗采用英國愛丁堡公司生產的FS-5型熒光光譜儀。
1.2.1 化合物BTBTN的合成路線將4,7-二溴-2,1,3-苯并噻二唑(C6H2N2SBr2)與濃硝酸、三氟甲烷磺酸(CF3SO3H)等原料在一定條件下反應生成化合物1(C6O4N4SBr2);將2-(三丁基錫)噻吩(C16H30SnS)、化合物1、四(三苯基膦)鈀[Pd(PPh3)4]在一定條件下反應生成化合物2(C14H6O4N4S3);將化合物2 溶解于N,N-二甲基甲酰胺(C3H7ON)和乙腈混合溶劑中,分次加入N-溴代琥珀酰亞胺(C4H4NO2Br)和微量溴化氫反應完成后,得到橘紅色化合物3(C14H4O4N4S3Br2);將9,9-二辛基-2-溴芴(C19H41Br)、聯(lián)硼酸頻那醇酯(C12H24O4B2)、無水醋酸鉀及[1,1’-雙(二苯基膦)二茂鐵]二氯化鈀二氯甲烷絡合物[PdCl2(dppf)2CH2Cl2]等試劑反應得到化合物4(C35H53O2B);利用Suzuki 偶聯(lián)反應將化合物4 偶聯(lián)到化合物3,再投入含有甲醇、K2CO3溶液、Pd(PPh3)4的四氫呋喃溶液中反應得到化合物5(C72H86O4N4S3);將化合物5、鐵粉、乙酸加入密封反應容器中反應得到化合物BTBTN(C72H90N4S3),制備路線如圖1所示。
圖1 探針BTBTN的合成路線及與NO反應可能的機理Fig.1 Synthesis procedures of probe BTBTN and possible reaction mechanism with NO
1.2.2 探針BTBTN 的核磁共振光譜結果1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ 7.76-7.66(m,6H),7.64(s,2H),7.52(d,J=3.7 Hz,2H),7.40(d,J=3.7 Hz,2H),7.37-7.29(m,6H),2.06-1.96(m,8H),1.35-0.93(m,44H),0.81(t,J = 7.1 Hz,12H),0.65(d,J = 7.8 Hz,8H)。13C NMR(101 MHz,CDCl3)δ 151.70(s),150.99(d,J = 14.3 Hz),147.08(s),141.16(s),140.73(s),139.39(s),134.32(s),132.99(s),129.85(s),127.33(s),126.97(s),124.94(s),123.28(s),123.01(s),120.32(d,J = 18.5 Hz),119.88(s),107.51(s),55.35(s),40.59(s),31.93(s),30.19(s),29.38(s),23.93(s),22.74(s),14.23(s),0.14(s)。
1H-NMR和13C-NMR的實驗結果表明所得產物為目標化合物BTBTN。
BTBTN 儲備液的配制:準確稱量一定質量的BTBTN 樣品,溶解于四氫呋喃(THF)中,配制質量濃度為5 mg/mL的BTBTN貯備液,于4 ℃下避光保存。
HEPES 緩沖液(0.01mol/L,pH 7.4)的配制:準確稱取1.1915 g C8H18N2O4S(4-羥乙基哌嗪乙磺酸)固體,向其中加0.5 L 水,超聲、攪拌至完全溶解,得到0.01 mol/L HEPES 酸液。準確稱取0.4 g NaOH溶于10 mL水中,配制1 mol/L NaOH 溶液作為堿液。將上述酸液和堿液按照一定比例混合,配制不同pH值的緩沖液。
樣品溶液的配制:在比色皿中加入0.665μL HEPES 緩沖液和1.335μL THF,再取2.3μL 探針母液,用1 mL移液槍吹打均勻,制備探針濃度為5μmol/L的樣品溶液,總體積為2 mL左右。
NO 溶液的配制:準確稱取一定量的NO 供體鹽,在一定量的水中加入適量NO,配制質量濃度為5 mg/mL的NO溶液,立即冷凍在-20 ℃冰箱中,現(xiàn)取現(xiàn)用。
將上述探針溶液(5μmol/L)及HEPES緩沖液(0.01 mol/L,pH 7.4)分別加入到兩個樣品池中,進行紫外吸收光譜測試。為了消除溶劑誤差,待初始工作基線穩(wěn)定后再開始樣品的測試。測試BTBTN 與NO響應實驗時,在測試液中加入適量濃度的NO儲備液(最終濃度50μmol/L)。充分反應后,記錄熒光探針紫外吸收峰強度的變化。
以410 nm 作為樣品的激發(fā)光波長,狹縫寬度2 nm,向石英比色皿中加入HEPES 緩沖液和樣品溶液,使得配制的熒光探針BTBTN 的最終濃度為5μmol/L。測試BTBTN 與NO 響應實驗時,在測試液中分別加入適量濃度的NO 儲備液(最終濃度為50μmol/L)。充分反應至信號不再變化時,記錄熒光探針的最大發(fā)射峰強度。
為了考察探針BTBTN 對NO 的響應情況,測定了BTBTN 與NO 反應前后的紫外吸收光譜和熒光光譜。結果如圖2A 所示,BTBTN 的紫外光譜(曲線a)在355 nm 處有1 較強吸收峰,在410 nm 處有1 弱吸收峰。加入NO 后(曲線b)顯示355 nm 處的吸收峰消失,而410 nm 處的吸收峰明顯增強,同時在660 nm 處產生1 新吸收峰,表明BTBTN 與NO 發(fā)生了化學反應,有新物質生成,且溶液由紅色變?yōu)樗{色(如圖2A插圖)。
圖2B 為探針BTBTN 與NO 作用前后的熒光光譜,如曲線a 所示,BTBTN 在410 nm 激發(fā)光輻射下,只在640 nm 處有發(fā)射峰,且熒光強度較弱。加入NO 后,640 nm 處的發(fā)射峰明顯降低,且在775 nm 處出現(xiàn)1 明顯的發(fā)射峰,這可能是由于BTBTN 分子中鄰苯二胺的兩個氨基基團與NO 發(fā)生反應生成了新物質,ICT 效應增強使探針在775 nm 處發(fā)出近紅外熒光。圖2B 插圖表明,探針BTBTN 與NO 作用后產生明顯的顏色變化,進一步證明BTBTN 與NO 反應產生了新的熒光物質。上述實驗結果表明探針BTBTN可用于NO的檢測。
圖2 探針BTBTN與NO作用前后的紫外吸收光譜(A)及熒光光譜(B)Fig.2 UV-Vis absorption spectra(A)and fluorescence spectra(B)of probe BTBTN in the absence and presence of NO HEPES buffer-THF/H2O(2∶1),pH 7.4;concentration of BTBTN:5μmol/L;λex=410 nm
熒光探針BTBTN 是以鄰苯二胺修飾的[c][1,2,5]噻二唑-5,6-二胺作為NO 識別基團和電子受體,基于BTBTN 與NO 反應前后的光譜變化,推測BTBTN 上的鄰苯二胺基團與NO 發(fā)生環(huán)化反應,生成苯并三氮唑結構的產物。為了證實這一推斷,考察了BTBTN 與NO 反應前后的高分辨質譜,結果如圖3所示。在正離子模式下,BTBTN 在m/z=1107.6 處有1 強的分子離子峰。當探針BTBTN 與NO 反應后,在負離子模式下,m/z=1116.6處出現(xiàn)1新的強分子離子峰(圖3B),該數(shù)值與化合物BTBTNO的理論相對分子質量(m/z=1117.6)相對應,符合BTBTNO 的三氮唑在質譜中失去了單質子H,表明探針確實被NO還原成化合物BTBTNO,從而驗證了圖1提出的探針BTBTN與NO反應的機理推測。當探針與NO結合,二氨基苯并-(1,2,5-噻二唑)部分的弱電子受體將轉化為具有強吸電子能力的三唑并稠合苯并-(1,2,5-噻二唑),然后生成產物BTBTNO,并由增強的ICT效應開啟近紅外熒光。
圖3 BTBTN(A)及BTBTN與NO反應后(B)的質譜圖Fig.3 MS spectra of BTBTN(A)and its reactant after BTBTNO treating with NO(B)BTBTN:Calc. for C72H90N4S3:1106.6328. Found:1107.57[MA+H]+;BTBTNO:Calc. for C72H87N5S3:1117.6124. Found:1116.6[MB-H]-)
為獲得最佳的檢測靈敏度,分別對溶劑THF配比、反應時間和溶液pH值進行優(yōu)化。如圖4A所示,隨著溶劑中THF 含量的增大,BTBTN 的熒光強度呈先升高后降低現(xiàn)象,當溶劑THF 和水的體積比為2∶1時,BTBTN對NO的響應能力最強。
為了探究反應時間對探針熒光強度的影響,考察了探針BTBTN分別與不同濃度(8、16、70μmol/L)NO混合后,其熒光強度隨時間的變化情況。結果顯示,BTBTN與NO在3 min內反應即達到平衡,表明BTBTN可快速與NO結合并產生熒光響應,因此,選擇3 min作為探針與NO的反應時間。
pH 值對熒光強度的影響如圖4B所示,在pH 6.0~8.0范圍內,探針BTBTN 對NO 具有較穩(wěn)定的熒光響應,表明BTBTN 適用于生理pH 范圍內NO 的檢測。因此,選擇pH 7.4 為HEPES 緩沖液(HEPES buffer-THF/H2O(2∶1))的最佳pH值。
圖4 溶劑配比(A)及pH值(B)對熒光強度的影響Fig.4 Effects of volume ratios of THF to water(A)and pH value(B)on fluorescence systems of BTBTN HEPES buffer:0.01 mol/L,BTBTN:5μmol/L
為了探究熒光探針對NO 的檢測靈敏度,測試了BTBTN 與不同濃度(0~50μmol/L)NO 在HEPESTHF 緩沖液(pH 7.4)中的熒光光譜。從圖5 可知,探針的熒光強度隨著NO 濃度的增加而增加,且BTBTN 在775 nm/640 nm 的熒光強度比值F775nm/F640nm與NO 的濃度在0~10μmol/L 范圍內呈良好的線性關系,線性方程為Y=0.2792+0.3282×[NO](r2=0.9939),式中[NO]為NO 的濃度(μmol/L),Y為F775nm/F640nm的比值。根據(jù)檢出限的計算公式(LOD=3σ/k,σ為空白樣品連續(xù)測定3次的標準偏差,k為標準曲線斜率),測得方法對NO的檢出限為28.88 nmol/L。
圖5 探針BTBTN 與不同濃度NO 作用后的熒光光譜Fig.5 Fluorescence spectra of BTBTN upon addition of different concentrations of NOBTBTN:5μmol/L,HEPES buffer-THF/H2O(2∶1),pH 7.4;inset:relationship between NO concentration and fluorescence intensity(F775 nm/F640 nm)
與文獻報道的其他NO 探針的檢測結果相比(表1),探針BTBTN 對NO 具有較低的檢出限?;诒痉椒▽O響應速度快、檢測靈敏度高的特點,可實現(xiàn)對體外NO含量的快速、靈敏的熒光定量檢測。
表1 本方法與文獻報道的檢測NO熒光探針的檢出限比較Table 1 Comparison of detection limits of the method with the other fluorescent probes for NO
為了考察探針BTBTN 對NO 檢測的選擇性和抗干擾能力,以常見的不同種類分析物作為干擾物,測試了BTBTN 的熒光光譜。檢測對象包括:6 種氨基酸(Hcy、GSH、L-Cys、L-Lys、Gly、NAC,濃度均為5.0 mmol/L)、2 種生物小分子(丙酮醛、抗壞血酸,濃度均為50μmol/L)、6 種金屬離子(Na+、Ca+、Mg2+、Fe2+、Fe3+、Zn2+,濃度均為1.0 mmol/L)、5 種陰離子、Br-、I-,濃度均為1.0 mmol/L)、5種活性氧及活性氮物種(·OH、1O2、ClO-、H2O2、ONOO-,濃度為100μmol/L)。當向5μmol/L BTBTN溶液中加入30μmol/L NO后,其熒光強度比值(F775nm/F640nm)迅速增大。將上述干擾物加入到熒光探針溶液中充分反應后,未觀察到F775nm/F640nm的明顯變化,表明上述測試物中,只有NO 能觸發(fā)BTBTN 探針的近紅外熒光,表明BTBTN 對NO 檢測具有較好的選擇性和抗干擾能力,可滿足生物樣品中NO的檢測要求。
本文以鄰苯二胺修飾的苯并噻二唑衍生物作為NO 識別基團和電子受體,以芴的衍生物作為供電子熒光基團,設計并合成了一種新型近紅外比率型熒光分子探針BTBTN。該探針與NO 反應后生成苯并三氮唑結構,分子內電荷轉移(ICT)效應增強,熒光發(fā)射光譜明顯紅移,探針在紅光區(qū)的熒光發(fā)射減弱,而在近紅外區(qū)的熒光明顯增強,通過兩者間的熒光變化可實現(xiàn)NO 的比率計量檢測。探針BTBTN對NO 的熒光檢測具有響應快速(3 min)、檢出限低(28.88 nmol/L)及在生理pH 范圍內穩(wěn)定性好和選擇性高的特征,有望用于復雜細胞和活體環(huán)境中NO的定量檢測。