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        一種用于proCPB可溶性表達的新型表達系統(tǒng)

        2022-05-16 03:34:30文良柱方宏清韋炎龍竇俊
        生物化工 2022年2期
        關(guān)鍵詞:異構(gòu)酶二硫鍵外源

        文良柱,方宏清,韋炎龍,竇俊

        (江蘇萬邦醫(yī)藥科技有限公司,江蘇徐州 221004)

        羧肽酶B(Carboxypeptidases B,CPB)是一種含金屬鋅的蛋白酶,可水解蛋白質(zhì)或多肽類底物C端的精氨酸(Arg)或賴氨酸(Lys),在藥物的生產(chǎn)、科學研究以及急性胰腺炎的診斷等方面具有重要作用[1-2]。特別是在胰島素原轉(zhuǎn)化為胰島素的過程中,CPB是不可缺少的工具酶之一[3]。目前,活性CPB的制備方法主要分為兩種:(1)直接從豬胰腺中提取并純化,但是這種方法價格昂貴,且制品中殘留其他酶類或病毒等,限制了其應(yīng)用范圍;(2)利用微生物(原核或真核表達系統(tǒng))發(fā)酵的方法表達CPB的酶原(proCPB),純化后去除N末端前肽獲得具有催化活性的酶體[4-5]。相比于真核表達系統(tǒng),原核表達系統(tǒng),尤其是大腸桿菌(Escherichia coli),具有遺傳背景清晰、基因工程操作手段成熟、宿主生長能力強等優(yōu)點,是理想的外源蛋白表達宿主之一。但是,大腸桿菌表達包括豬羧肽酶原B(proCPB)在內(nèi)的很多外源蛋白均是以包涵體的形式存在于細胞中,后續(xù)還需對產(chǎn)物進行復(fù)性,操作復(fù)雜且復(fù)性率低[6]。

        CPB含有7個半胱氨酸,其中1個半胱氨酸呈游離態(tài),另外6個形成3對二硫鍵。大腸桿菌缺乏真核細胞中翻譯后修飾的酶類,并且細胞質(zhì)環(huán)境呈還原型,不利于二硫鍵形成,外源蛋白極易形成包涵體。在宿主細胞中,將外源蛋白從包涵體轉(zhuǎn)為天然構(gòu)象并以可溶性蛋白的形式存在,可降低蛋白質(zhì)的工業(yè)生產(chǎn)成本。一些輔助蛋白能夠協(xié)助蛋白質(zhì)組裝或介導(dǎo)蛋白質(zhì)正確折疊,將目的蛋白與之共表達是避免包涵體形成的有效手段之一。常用的輔助蛋白包括熱休克蛋白分子伴侶以及一些參與蛋白質(zhì)異構(gòu)化反應(yīng)的酶類,如蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶(Protein Disulfide Isomerase,PDI)、肽酰-脯氨酰順反異構(gòu)酶(Peptidyl-Prolylcis-transIsomerase,PPI)等。

        在真核細胞中,PDI是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上氧化蛋白折疊的關(guān)鍵酶,氧化底物后自身被還原,隨后被巰基氧化酶(Sulfhydryl Oxidase,SO)重新氧化[7]。因此,構(gòu)建SO-PDI聯(lián)合表達體系,有望實現(xiàn)proCPB的可溶性表達。

        1 材料與方法

        1.1 試劑與儀器

        1.1.1 材料與試劑

        CPB甘油菌(E.coliBL21(DE3)/p0E-TS/pETCPB)的宿主E.coliBL21(DE3),貨號CB105-01,天根生化科技(北京)有限公司。

        蛋白胨、酵母提取物,英國OXOID公司;瓊脂粉、氯化鈉,分析純,國藥集團化學試劑有限公司;瓊脂糖,法國Biowest公司;氯霉素、卡那霉素、四環(huán)素,美國AMRESCO公司;重組克隆試劑盒(CU201-02),北京全式金生物技術(shù)有限公司。

        1.1.2 儀器

        HR40-ⅡA2生物安全柜,青島海爾特種電器有限公司;UV-2100紫外分光光度計,尤尼柯(上海)儀器有限公司;202-OAB電熱恒溫培養(yǎng)箱,天津市泰斯特儀器有限公司;HNY-200B臺式全溫控搖床,天津歐諾儀器股份有限公司;HW.SY11-KP2恒溫水浴鍋,北京長風儀器儀表公司;H2O3-100C金屬浴,卡尤迪生物科技(北京)有限公司;Veriti PCR擴增儀,美國ABI公司;3K-18KS離心機,西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;DYY-2C電泳儀,北京市六一儀器廠;BL-620S電子天平,日本島津公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 質(zhì)粒構(gòu)建

        所有質(zhì)粒的體外重組操作利用重組克隆試劑盒完成,詳細信息如表1所示。

        表1 質(zhì)粒信息

        1.2.2 培養(yǎng)條件及蛋白表達

        挑取單菌落至含有5 mL液體LB培養(yǎng)基的試管中,在37 ℃、220 r/min條件下培養(yǎng)10~12 h。氨芐青霉素(Amp,50 μg/mL)、氯霉素(Cm,25 μg/mL)和卡那霉素(Kan,25 μg/mL)根據(jù)質(zhì)粒所攜帶抗生素基因按照要求使用。

        挑取單菌落至含有5 mL液體LB培養(yǎng)基的試管中,在37 ℃、200 r/min條件下培養(yǎng)10~12 h。將菌液轉(zhuǎn)接至含有50 mL液體LB培養(yǎng)基的搖瓶中,使初始OD600為0.1,在37 ℃、200 r/min繼續(xù)培養(yǎng)。以菌株E. coliBL21(DE3)為宿主時,如外源蛋白啟動子為阿拉伯糖,則在OD600為0.3~0.4時加入2 mg/mL的L-阿拉伯糖;如外源蛋白啟動子為T7,則在OD600為0.6~0.8時加入0.3 mmol/L異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)。在20 ℃、200 r/min的條件下繼續(xù)培養(yǎng)15 h,收集菌體并稀釋到合適的濃度,超聲破碎分離可溶性蛋白和包涵體蛋白,總蛋白樣品不進行超聲破碎。利用SDS-PAGE電泳對蛋白表達進行鑒定。

        1.2.3 菌株傳代培養(yǎng)

        將保藏的CPB甘油菌涂布于含有Amp和Cm的LB平板,倒置于37 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中孵育約20 h。挑取單菌落至含有Amp和Cm液體LB培養(yǎng)基(5 mL)的試管中,37 ℃、200 r/min孵育約12 h,記為第0代;吸取50 μL第0代菌液至含有Amp和Cm的液體LB培養(yǎng)基(5 mL)中,37 ℃、200 r/min孵育約12 h,記為第1代(有抗)……如此操作直至獲得第21代(有抗)。

        在第0代菌液基礎(chǔ)上,按照上述的傳代培養(yǎng)方法,但全過程不添加抗生素,獲得第11代(無抗)和第21代(無抗)。同樣按照1.2.2蛋白表達方法,但全過程不添加抗生素,研究不添加抗生素時可溶性表達系統(tǒng)穩(wěn)定性。

        1.2.4 基因

        SO蛋白質(zhì)序列參照來源于釀酒酵母(SaccharomycescerevisiaeS288C)的ERV1(NCBI VERSION:P27882.2)設(shè)計改造,由南京金斯瑞生物科技有限公司合成對應(yīng)基因并克隆到pUC57載體上(pUC57-ERV1)。

        PDI來源于人(hPDI)或釀酒酵母(sPDI)或大腸桿菌(DsbC),hPDI的氨基酸序列參照NCBI VERSION:NP_000909.2序列設(shè)計改造,sPDI的氨基酸序列參照NCBI VERSION:AAA34848.1序列,DsbC的核酸序列(dsbC)來源于E. coliBL21(DE3)基因組(NCBI VERSION:CP001509.3)。這三個蛋白對應(yīng)的基因序列連同RBS序列、終止子序列由南京金斯瑞生物科技有限公司合成并克隆到pUC57載體上,獲得質(zhì)粒pUC57-hPDI、pUC57-sPDI和pUC57-dsbC。

        proCPB的蛋白序列來源于歐亞野豬(Sus scrofa,NCBI VERSION:CAB46991.1),但去掉2~15位信號肽氨基酸序列,核酸序列由南京金斯瑞生物科技有限公司合成并克隆到到質(zhì)粒pET21b骨架NdeI、XhoI位點上,獲得質(zhì)粒pETCPB。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 N末端標簽優(yōu)化策略實現(xiàn)SO和PDI的可溶性表達

        誘導(dǎo)菌株 BL21(DE3)、WF1、WF2及 WF3表達對應(yīng)的巰基氧化酶(ERV1)和蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶(hPDI、sPDI或DsbC),可溶性蛋白和包涵體蛋白SDS-PAGE電泳結(jié)果如圖1(A)所示,ERV1(21.70 kDa)、hPDI(52.05 kDa)、sPDI(55.70 kDa)和DsbC(23.51 kDa)均未出現(xiàn)明顯條帶。將巰基氧化酶和蛋白質(zhì)二硫鍵異構(gòu)酶基因的啟動子更換為強度更強的T7啟動子,可溶性蛋白和包涵體蛋白SDSPAGE電泳結(jié)果如圖1(B)所示。結(jié)果表明,更換啟動子仍不能實現(xiàn)hPDI和sPDI的可溶性表達。

        圖1 巰基氧化酶和二硫鍵異構(gòu)酶的蛋白表達

        優(yōu)化ERV1、hPDI、sPDI或DsbC的N末端標簽(添加Trx標簽、T7標簽或GST標簽)增強蛋白的可溶性表達能力。如圖2(A)所示,ERV1、TrxERV1、T7ERV1以及GSTERV1均能夠產(chǎn)生可溶性蛋白,TrxERV1可溶性表達效果最優(yōu)、ERV1次之;如圖2(B)所示,TrxhPDI、T7hPDI以及GSThPDI可溶性表達效果較好,而hPDI表達效果不理想,總蛋白樣品也未見明顯條帶;如圖2(C)所示,TrxsPDI具有很高的蛋白表達量以及很好的可溶性表達效果,T7sPDI和GSTsPDI有一定的可溶性表達,sPDI表達效果不理想;如圖2(D)所示,DsbC、TrxDsbC、T7DsbC以及GSTDsbC均能夠產(chǎn)生可溶性蛋白。

        圖2 添加N末端標簽的SO和PDI的蛋白表達.

        結(jié)果表明,通過添加N末端標簽策略hPDI和sPDI的表達水平顯著提高,并實現(xiàn)了可溶性表達。

        2.2 可溶性表達系統(tǒng)的構(gòu)建以及proCPB的可溶性表達

        優(yōu)選ERV1或TrxERV1分別與TrxsPDI、GSTsPDI、TrxhPDI、T7hPDI、GSThPDI或DsbC組合,它們在來源于Salmonella enterica的阿拉伯糖啟動子控制下,利用p15A ori-CmR骨架,可與裝載目的基因的pET系列載體配合使用。

        培養(yǎng)菌株第0~3代,并誘導(dǎo)表達proCPB(45.97 kDa),豬羧肽酶原B以包涵體的形式存在于細胞中(圖3)。研究proCPB與添加了N末端標簽的SO-PDI共表達的效果,以E. coliBL21(DE3)為宿主,裝載質(zhì)粒pETCPB與可溶性表達系統(tǒng)質(zhì)粒(p0E-TS、p0E-GS、p0E-TH、p0E-7H、p0E-GH、p0E-0D、pTE-TS、pTE-GS、pTE-TH、pTE-7H、pTE-GH或pTE-0D)。加入誘導(dǎo)劑L-阿拉伯糖和IPTG,SDS-PAGE電泳結(jié)果如圖4所示。結(jié)果表明,ERV1-TrxsPDI和TrxERV1-TrxsPDI是優(yōu)異的可溶性表達系統(tǒng),可實現(xiàn)proCPB可溶性表達,而其他10種組合未能實現(xiàn)proCPB可溶性表達,證明SO-PDI作為可溶性表達系統(tǒng)可行,能夠用于目的蛋白的可溶性表達。

        圖3 proCPB的表達

        圖4 proCPB與SO-PDI系統(tǒng)的共表達.

        2.3 更換可溶性表達系統(tǒng)ERV1-TrxsPDI的啟動子對proCPB表達可溶性的影響

        以控制可溶性表達系統(tǒng)ERV1-TrxsPDI的啟動子為單變量,將阿拉伯糖啟動子變更為T7啟動子,研究啟動子或誘導(dǎo)劑對目的蛋白可溶性表達的影響,結(jié)果如圖5所示。結(jié)果表明,可溶性表達系統(tǒng)ERV1-TrxsPDI仍可促進目的蛋白proCPB可溶性表達,不受啟動子種類限制。

        圖5 T7啟動子對proCPB可溶性表達的影響

        2.4 單獨表達ERV1或TrxsPDI對proCPB表達可溶性的影響

        為研究單獨表達ERV1或TrxsPDI對目的蛋白proCPB表達可溶性的影響,構(gòu)建質(zhì)粒p0E和pTS分別裝載ERV1基因和TrxsPDI基因,結(jié)果如圖6所示。ERV1與proCPB共表達時,proCPB主要以包涵體的形式存在,且部分ERV1也以包涵體的形式存在;TrxsPDI與proCPB共表達時,TrxsPDI對proCPB的可溶性表達能夠起到一定促進作用,但是大量的蛋白還是以包涵體的形式存在。結(jié)果表明,proCPB的可溶性表達是在SO-PDI共同作用下實現(xiàn)的。

        圖6 ERV1或TrxsPDI單獨表達對proCPB可溶性表達的影響

        2.5 可溶性表達系統(tǒng)穩(wěn)定性

        選擇CPB0、CPB11、第21代(無抗)(CPB11 Gen 21st)和第21代(有抗)(CPB11 Gen 21st(AC))進行蛋白表達,如圖7所示。結(jié)果表明,傳代10天后proCPB仍可進行可溶性表達。利用大腸桿菌表達目的蛋白的一個工業(yè)生產(chǎn)周期(從種子培養(yǎng)到大規(guī)模發(fā)酵結(jié)束)通常少于10天,表明本研究的可溶性表達系統(tǒng)具有在工業(yè)生產(chǎn)中使用的潛力。

        圖7 可溶性表達proCPB的穩(wěn)定性

        3 結(jié)論

        本文通過篩選不同來源的二硫鍵異構(gòu)酶聯(lián)用優(yōu)化N末端標簽構(gòu)建了一種新型可溶性表達系統(tǒng),并成功實現(xiàn)豬羧肽酶原B的可溶性表達。該系統(tǒng)不受誘導(dǎo)劑和啟動子限制,具有傳代穩(wěn)定性,可在工業(yè)生產(chǎn)中使用。

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