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        參照多重PCR片段分析法進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR法對(duì)ABCB1三等位基因測(cè)定結(jié)果讀取方法的確定

        2022-05-09 10:46:26蒙卓成崔小花戴尊孝
        四川精神衛(wèi)生 2022年2期
        關(guān)鍵詞:堿基A型等位基因

        張 燕 ,蒙卓成 ,邢 歡 ,崔小花 ,楊 柳 ,鄭 璇 ,戴尊孝

        (1.西安市精神衛(wèi)生中心,陜西 西安 710100;2.西安市藥學(xué)(精神衛(wèi)生)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西 西安 710100

        精神障礙是一種長期困擾患者的慢性疾病,治療時(shí)需要藥物在腦內(nèi)發(fā)揮作用,但因?yàn)檠X屏障的存在,藥物是難以進(jìn)入腦內(nèi)起到療效的。ABCB1是一種藥物轉(zhuǎn)運(yùn)體[1-2],它在人體大腦的毛細(xì)血管中廣泛表達(dá)[3-4],可以影響p-糖蛋白活性[5],而p-糖蛋白存在于血腦屏障中,在控制血液和大腦之間的物質(zhì)傳遞起著重要作用[6],可以改變血組織屏障中擠壓回血液中的藥物數(shù)量[7-11],影響藥物濃度[12-14],從而影響藥物的療效。本研究中的ABCB1轉(zhuǎn)運(yùn)體主要涉及抗精神病藥物腦內(nèi)轉(zhuǎn)運(yùn)等相關(guān)問題。ABCB1轉(zhuǎn)運(yùn)體的基因突變會(huì)影響其轉(zhuǎn)運(yùn)功能[15-16],使藥物無法正常發(fā)揮療效,其中rs2032582是研究最廣泛的突變位點(diǎn)[17],通常會(huì)存在三等位基因,本研究主要針對(duì)rs2032582位點(diǎn)的突變(C.2677T>G),雖然三等位基因存在比例較低,但影響不容忽視。

        實(shí)時(shí)熒光PCR法操作簡單、人為誤差小,是目前臨床上的主流檢測(cè)方法,對(duì)于等位基因的檢測(cè)結(jié)果,實(shí)時(shí)熒光PCR法可準(zhǔn)確判讀。但由于ABCB1存在三等位基因,采用實(shí)時(shí)熒光PCR法會(huì)在結(jié)果讀取方面存在一定困難。多重PCR片段分析可以得到整個(gè)序列的直接信息,具有較高的準(zhǔn)確度,是直接有效檢測(cè)基因突變的方法[18],該方法具有測(cè)序精度高、測(cè)序長度長等特點(diǎn);不足之處在于其成本高、通量低、耗時(shí)長[19]。故本研究采用多重PCR片段分析法作為對(duì)照方法,將實(shí)時(shí)熒光PCR法的結(jié)果讀取方法進(jìn)行明晰,以期實(shí)現(xiàn)臨床對(duì)ABCB1三等位基因準(zhǔn)確、簡便且低廉的檢測(cè)。

        1 材料與方法

        1.1 樣本

        收集西安市精神衛(wèi)生中心2020年3月-2021年3月ABCB1樣本2 794例,按照t檢驗(yàn)中對(duì)樣本數(shù)量的規(guī)定,在理想狀態(tài)下,樣本數(shù)多于120,認(rèn)為其具有正態(tài)分布特征,可以代表群體樣本。根據(jù)120個(gè)樣本在所收集的樣本中占比接近5%,且考慮到實(shí)驗(yàn)過程中誤差或樣本脫落,故按照5%的比例進(jìn)行抽樣,即抽取樣本139例,認(rèn)為此抽樣方式能代表樣本的分布情形。

        1.2 試劑與儀器

        Taq Man rs2032582 T試劑盒(賽默飛世爾科技有限公司);Taq Man rs2032582 A試劑盒(賽默飛世爾科技有限公司);SNPscanTM分型試劑盒(蘇州天昊生物科技有限公司);HI-DI(美國ABI公司);Gen?eScanTM-500(美國ABI公司)。

        StepOne Plus實(shí)時(shí)熒光PCR分析儀(賽默飛世爾科技有限公司);FR-110紫外分析裝置(上海復(fù)日科技有限公司);凝膠成像儀(上海復(fù)日科技有限公司);FR-250電泳儀(上海復(fù)日科技有限公司);多用途水平電泳槽(北京百晶生物科技有限公司);BG-Power 300電泳儀(北京百晶生物科技有限公司);BG-submix cell電泳槽(北京百晶生物科技有限公司);2720 Thermal CyclerPCR分析儀(美國ABI公司);Milli-Q Academic超純水儀(美國Millipore公司);ABI3730XL測(cè)序儀(美國ABI公司)。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        1.3.1 實(shí)時(shí)熒光PCR法

        配制 10 μL 反應(yīng)體系,包括 Master Mix 5 μL,DME assay Mix 0.25 μL,去離子水3.75 μL,DNA樣本1 μL[20]。上PCR儀,擴(kuò)增程序?yàn)椋?0℃、30 s,95℃、10 min,進(jìn)入擴(kuò)增循環(huán)(95℃、15 s,60℃、1.5 min),循環(huán)40次,60℃、30 s,反應(yīng)結(jié)束,輸出結(jié)果[21-23]。

        1.3.2 多重PCR片段分析法

        樣本擴(kuò)增:配制10 μL連接反應(yīng)預(yù)混合液,包括10×Ligase Buffer 2 μL,Ligase 0.5 μL,Probe Mix 1 μL,去離子水6.5 μL。進(jìn)行連接反應(yīng),在1 μL DNA樣本中加入10 μL連接反應(yīng)預(yù)混合液,輕微震蕩混勻,3 000 r/min離心30 s,然后上PCR儀,94℃、1 min,58℃、4 min,循環(huán)4次,94℃、2 min,最后降溫至72℃結(jié)束連接反應(yīng)。

        多重?zé)晒釶CR反應(yīng)[24]:配制20 μL反應(yīng)體系,包括2×PCR Master Mix 10 μL,Primer Mix Ⅰ or Ⅱ 1 μL,樣本擴(kuò)增溶液1 μL,去離子水8 μL,輕微震蕩混勻,3 000 r/min離心30 s,然后上PCR儀,95℃、2 min。第一次PCR反應(yīng):94℃、20 s,62℃、40 s,72℃、1.5 min,循環(huán)9次。第二次PCR反應(yīng):94℃、20 s,57℃、40 s,72℃、1.5 min,循環(huán)25次,68℃、60 min,最后降溫至4℃結(jié)束多重?zé)晒釶CR反應(yīng)[25]。

        片段測(cè)序:將多重?zé)晒釶CR產(chǎn)物稀釋10倍后,取1 μL與0.5 μL Liz 500 Size Standard、8.5 μL Hi-Di混勻,95℃、5 min,上測(cè)序儀測(cè)定。

        1.4 統(tǒng)計(jì)方法

        實(shí)時(shí)熒光PCR的結(jié)果采用StepOne Software v2.2.3進(jìn)行處理,分別以循環(huán)數(shù)和熒光強(qiáng)度值的對(duì)數(shù)作為橫縱坐標(biāo)并繪制擴(kuò)增曲線,數(shù)據(jù)分析采用擴(kuò)增曲線指數(shù)增長期對(duì)應(yīng)的Ct值進(jìn)行對(duì)比分析;多重PCR片段分析的結(jié)果采用GeneMapper 6進(jìn)行處理,數(shù)據(jù)分析采用堿基峰位圖中對(duì)應(yīng)的研究峰位進(jìn)行對(duì)比分析。

        2 結(jié) 果

        2.1 實(shí)時(shí)熒光PCR法與多重PCR片段分析法讀取結(jié)果

        139例樣本中,包括120例等位基因及19例三等位基因。實(shí)時(shí)熒光PCR法與多重PCR片段分析法對(duì)120例等位基因樣本的讀取結(jié)果完全一致。兩種方法對(duì)19例三等位基因樣本的讀取結(jié)果見表1。

        表1 實(shí)時(shí)熒光PCR法與多重PCR片段分析法對(duì)三等位基因分析結(jié)果

        2.2 三等位基因讀取結(jié)果的確定

        采用實(shí)時(shí)熒光PCR法測(cè)定19例ABCB1三等位基因的結(jié)果,以多重PCR片段分析結(jié)果作為對(duì)照進(jìn)行解讀,將Ct值(PCR擴(kuò)增進(jìn)入指數(shù)增長期所對(duì)應(yīng)的循環(huán)數(shù))作為實(shí)時(shí)熒光PCR讀取依據(jù),重新確定ABCB1三等位基因的分型結(jié)果。

        2.2.1 T/A/G基因分型讀取結(jié)果的確定

        2.2.1.1 T/A/G基因分型判讀為G/G型

        圖1中,圖1a中G堿基與T堿基Ct值分別為21和23,圖1b中G堿基與A堿基Ct值分別為21和24,Ct值小的堿基含量高。圖1a△Ct.a(∣Ct.G-Ct.T∣)=2,圖1b△Ct.b(∣Ct.G-Ct.A∣)=3,兩圖△Ct值的差值<3(∣△Ct.a-△Ct.b∣=1),故將圖1a和圖1b中含量高的堿基組合作為判讀結(jié)果,判讀基因型為G/G型。

        圖1c中,175.78位置的G堿基峰遠(yuǎn)高于175.01位置的T堿基峰,173.84位置幾乎沒有A堿基峰,故判讀基因型為G/G型。

        圖1 T/A/G基因分型判讀為G/G型兩種方法對(duì)比圖

        2.2.1.2 T/A/G基因分型判讀為T/G型

        圖2中,圖2a中G堿基與T堿基Ct值分別為23和19,圖2b中G堿基與A堿基Ct值分別為21和24,Ct值小的堿基含量高。圖2a△Ct.a(∣Ct.G-Ct.T∣)=4,圖2b△Ct.b(∣Ct.G-Ct.A∣)=3,兩圖△Ct值的差值<3(∣△Ct.a-△Ct.b∣=1),故將圖2a和圖2b中含量高的堿基組合作為判讀結(jié)果,判讀基因型為T/G型。

        圖2c中,175.78位置的G堿基峰等高于175.01位置的T堿基峰,173.84位置幾乎沒有A堿基峰,故判讀基因型為T/G型。

        圖2 T/A/G基因分型判讀為T/G型兩種方法對(duì)比圖

        2.2.1.3 T/A/G基因分型判讀為T/A型

        圖3中,圖3a中G堿基與T堿基Ct值分別為25和21,圖3b中G堿基與A堿基Ct值分別為27和21,Ct值小的堿基含量高。圖3a△Ct.a(∣Ct.G-Ct.T∣)=4,圖3b△Ct.b(∣Ct.G-Ct.A∣)=6,兩圖△Ct值的差值<3(∣△Ct.a-△Ct.b∣=2),故將圖3a和圖3b中含量高的堿基組合作為判讀結(jié)果,判讀基因型為T/A型。

        圖3c中,明顯存在175.01位置的T堿基峰和173.84位置的A堿基峰,幾乎沒有175.78位置的G堿基峰,故判讀基因型為T/A型。

        圖3 T/A/G基因分型判讀為T/A型兩種方法對(duì)比圖

        2.2.2 G/T/A基因分型讀取結(jié)果的確定

        2.2.2.1 G/T/A基因分型判讀為A/A型

        圖4中,圖4a中G堿基與T堿基Ct值分別為25和22,圖4b中G堿基與A堿基Ct值分別為26和20,Ct值小的堿基含量高,但圖4a△Ct.a(∣Ct.G-Ct.T∣)=3,圖4b△Ct.b(∣Ct.G-Ct.A∣)=6,兩圖△Ct值的差值=3(∣△Ct.a-△Ct.b∣=3),故此種情況認(rèn)為Ct值最小的A堿基具有絕對(duì)優(yōu)勢(shì)。當(dāng)∣△Ct.a-△Ct.b∣=3,將圖4a和圖4b中含量最高的堿基純合型作為判讀結(jié)果,判讀基因型為A/A型。

        圖4c中,明顯存在173.84位置的A堿基峰,幾乎沒有175.01位置的T堿基峰和175.78位置的G堿基峰,故判讀基因型為A/A型。

        圖4 G/T/A基因分型判讀為A/A型兩種方法對(duì)比圖

        2.2.2.2 G/T/A基因分型判讀為T/A型

        圖5中,圖5a中G堿基與T堿基Ct值分別為22和19,圖5b中G堿基與A堿基Ct值分別為24和19,Ct值小的堿基含量高。圖5a△Ct.a(∣Ct.G-Ct.T∣)=3,圖5b△Ct.b(∣Ct.G-Ct.A∣)=5,兩圖△Ct值的差值<3(∣△Ct.a-△Ct.b∣=2),故將圖5a和圖5b中含量高的堿基組合作為判讀結(jié)果,判讀基因型為T/A型。

        圖5c中,明顯存在175.01位置的T堿基峰和173.84位置的A堿基峰,幾乎沒有175.78位置的G堿基峰,故判讀基因型為T/A型。

        圖5 G/T/A基因分型判讀為T/A型兩種方法對(duì)比圖

        2.2.3 G/A/T基因分型讀取結(jié)果的確定

        圖6中,圖6a中G堿基與T堿基Ct值分別為30和19,圖6b中G堿基與A堿基Ct值分別為24和21,Ct值小的堿基含量高,但圖6a△Ct.a(∣Ct.G-Ct.T∣)=11,圖6b△Ct.b(∣Ct.G-Ct.A∣)=3,兩圖△Ct值的差值>3(∣△Ct.a-△Ct.b∣=8),故此種情況認(rèn)為 Ct值最小的 T堿基具有絕對(duì)優(yōu)勢(shì)。當(dāng)∣△Ct.a-△Ct.b∣≥3,將圖6a和圖6b中含量最高的堿基純合型作為判讀結(jié)果,判讀基因型為T/T型。

        圖6c中,明顯存在175.01位置的T堿基峰,幾乎沒有173.84位置的A堿基峰和175.78位置的G堿基峰,故判讀基因型為T/T型。

        圖6 G/A/T基因分型判讀為T/T型兩種方法對(duì)比圖

        3 討 論

        通過對(duì)19例ABCB1三等位基因樣本進(jìn)行兩種方法判讀結(jié)果的對(duì)比,總結(jié)出實(shí)時(shí)熒光PCR法檢測(cè)ABCB1基因的讀取原則:當(dāng)∣∣Ct.G-Ct.T∣-∣Ct.GCt.A∣∣<3時(shí),分別讀取兩組堿基實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增曲線圖中Ct值最小的堿基,將其組合形成判讀結(jié)果。當(dāng)∣∣Ct.G-Ct.T∣-∣Ct.G-Ct.A∣∣≥3,讀取兩組堿基實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增曲線圖中Ct值最小的堿基,其純合型即為判讀結(jié)果。

        根據(jù)讀取原則,將19例三等位基因的實(shí)時(shí)熒光PCR法結(jié)果重新判讀,結(jié)果修正為:1例G/G,1例A/A,4例T/G,5例T/A,8例T/T,與多重PCR片段分析法判讀結(jié)果一致。

        在人體中,三等位基因的存在比例相對(duì)較低,本研究中的樣本比例組成也可體現(xiàn)這一點(diǎn)。但當(dāng)人體內(nèi)存在三等位基因且存在的堿基突變比例較高時(shí),突變的堿基在進(jìn)行基因表達(dá)時(shí)或許會(huì)占優(yōu)勢(shì),人體的相關(guān)功能就會(huì)受到影響。存在這種高比例的堿基突變時(shí),實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法不能明確判斷哪個(gè)堿基占優(yōu)勢(shì),所以不便出具基因報(bào)告。

        在判斷何種堿基占優(yōu)勢(shì)時(shí),可觀察實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增曲線的Ct值,Ct值越小,相應(yīng)堿基的含量所占比例較高。但當(dāng)存在三等位基因時(shí),一個(gè)位點(diǎn)會(huì)存在三個(gè)堿基,就會(huì)有兩種不同的擴(kuò)增曲線圖,在判斷何種堿基占優(yōu)勢(shì)時(shí),就要結(jié)合兩個(gè)擴(kuò)增曲線圖進(jìn)行對(duì)比分析,分析比較兩圖之間的△Ct值的差值。在擴(kuò)增曲線圖中,當(dāng)堿基進(jìn)入指數(shù)增長期,每進(jìn)行一個(gè)循環(huán),堿基的量便會(huì)翻番,當(dāng)擴(kuò)增循環(huán)進(jìn)行3次以后,堿基的量會(huì)相差23倍,這時(shí)就可以判斷何種堿基在表達(dá)時(shí)占絕對(duì)優(yōu)勢(shì)。所以,在本研究中,當(dāng)兩者擴(kuò)增曲線的△Ct值相差3及3以上,均判讀為Ct值最小的堿基為純合子;當(dāng)兩者擴(kuò)增曲線的△Ct值相差3以下,分別讀取兩組實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增曲線圖中Ct值小的堿基,將其組合形成雜合子。

        隨著技術(shù)不斷進(jìn)步,實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)與其他分子生物學(xué)技術(shù)相結(jié)合使定量極微量的基因表達(dá)成為可能,熒光標(biāo)記核酸化學(xué)技術(shù)和寡核苷酸探針雜交技術(shù)的發(fā)展以及實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)的應(yīng)用,使得實(shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)有一個(gè)足夠的基礎(chǔ)為廣大臨床診斷實(shí)驗(yàn)室所接受[26-27],未來實(shí)時(shí)熒光PCR法有望成為進(jìn)行基因檢測(cè)研究的主要工具。

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