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        非洲豬瘟病毒360-12L蛋白的原核表達及其多克隆抗體制備

        2022-02-15 10:42:50蔣亞君陳世鈺郭曉宇王召陽劉雪婷朱鴻飛
        中國畜牧獸醫(yī) 2022年1期
        關(guān)鍵詞:克隆質(zhì)粒引物

        蔣亞君,陳世鈺,鑫 婷,郭曉宇,王召陽,劉雪婷,崔 帥,王 洋,朱鴻飛,賈 紅

        (1.中國農(nóng)業(yè)科學院北京畜牧獸醫(yī)研究所,北京 100193;2.華南農(nóng)業(yè)大學,廣州 510630)

        非洲豬瘟(African swine fever,ASF)是由非洲豬瘟病毒(African swine fever virus,ASFV)引起的急性、熱性動物傳染病,是目前對家豬影響最大的疾病之一,具有高度傳染性和致死性。1921年,Montgomery將其鑒定為不同于經(jīng)典豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)的一種病毒[1],在肯尼亞短暫流行后傳入南非和安哥拉,在撒哈拉以南非洲國家、馬達加斯加、撒丁島形成大流行[2],自2007年以來,東歐國家及部分亞洲國家報道了大量ASF疫情[3],2018年8月中國首次報道,隨后蒙古國、越南、日本、菲律賓、韓國、南非等均報道了相關(guān)疫情[4-5]。由于病毒本身復(fù)雜、基因多樣性、與宿主互作機制不明等原因[6],目前仍缺乏特異性治療方法和有效的商業(yè)疫苗,主要通過早期檢測、嚴格的生物安全措施、撲殺感染動物等方法進行防控,對全球養(yǎng)豬業(yè)造成巨大經(jīng)濟損失。

        ASFV是具有囊膜的雙鏈DNA病毒,是非洲豬瘟病毒科、非洲豬瘟病毒屬的成員[7]。根據(jù)毒株不同,病毒基因組長度為170~194 kb,可編碼眾多蛋白[8]。 ASFV Georgia 2007/1株多基因家族(MGF)360家族有15個成員,分布于基因組的兩端,攜帶MGF多個拷貝的ASFV毒株基因組更大,毒力更強[9]。在穩(wěn)定的細胞系中培養(yǎng),基因組左側(cè)的MGF360及其他病毒基因部分缺失,可導(dǎo)致毒力下降[10]。其中,12L基因位于基因組左側(cè)末端的重復(fù)區(qū)域,可通過阻斷importinα和NF-κB的信號通路,抑制IFN-Ⅰ的產(chǎn)生,可能是ASFV逃避宿主先天免疫的新策略[11],但其免疫調(diào)控機制仍需進一步研究?;诖耍狙芯繑M構(gòu)建12L基因的原核表達系統(tǒng),優(yōu)化其誘導(dǎo)表達溫度,純化獲得重組蛋白,并制備鼠源多克隆抗體,以期為后續(xù)該蛋白的進一步生物學功能研究、血清學診斷方法的建立提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        pET-28a(+)載體、pEGFP-N1載體、HEK 293T細胞均由北京畜牧獸醫(yī)研究所獸醫(yī)公共衛(wèi)生安全與管理創(chuàng)新團隊保存;BamHⅠ和XhoⅠ限制性內(nèi)切酶均購自TaKaRa公司;T4 DNA連接酶購自NEB公司;2×RapidTaqMax Master Mix、大腸桿菌BL21(DE3)和DH5α感受態(tài)細胞均購自南京諾唯贊生物技術(shù)有限公司;DNA Marker購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標準(26616)購自Thermo公司;辣根過氧化物酶標記羊抗鼠IgG、Alexa Flour 594-Conjugated Goat anti-Mouse IgG(H+L)均購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;弗氏完全佐劑、弗氏不完全佐劑均購自Sigma公司;異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)、Western blotting發(fā)光液均購自天根生化科技(北京)有限公司;考馬斯亮藍購自BBI公司;Ni Bestarose FF、DEAE Bestarose FF、BXK26/100層析柱、BXK16/20層析柱均購自博格隆公司;Omega質(zhì)粒提取試劑盒、Omega膠回收試劑盒均購自寶林可(北京)生物科技有限公司;碳酸纖維素膜(NC膜)購自寶生物工程(大連)有限公司;SDS-PAGE預(yù)制膠及其緩沖液均購自南京金斯瑞生物科技股份有限公司。6周齡雌性BALB/c小鼠購自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司。

        1.2 引物設(shè)計與合成

        根據(jù)GenBank ASFV參考序列(登錄號:NC_044959.2)合成MGF 360-12L基因,合成基因全長1 053 bp;根據(jù)參考序列用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計引物,并在上、下游引物中分別加入BamHⅠ和XhoⅠ酶切位點及其保護性堿基,引物序列為:上游引物ASFV-12L-F:5′-CGCGGATCCATGTT-GCCTTCCCTGCAA-3′;下游引物ASFV-12L-R:5′-CCGCTCGAGTCATCTTAAATCATAGG-3′,下劃線處分別為BamHⅠ和XhoⅠ酶切位點,目的基因及引物均送由生工生物工程(上海)股份有限公司進行合成。

        1.3 重組質(zhì)粒的構(gòu)建

        以合成的pCMV-3×Flag-12L為模板,利用設(shè)計的引物擴增目的片段。PCR擴增體系50 μL:2×RapidTaqMaster Mix 25 μL,引物ASFV-12L F/R各2 μL,陽性質(zhì)粒模板 1 μL,ddH2O 20 μL;PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性15 s,55 ℃退火15 s,72 ℃延伸15 s,共35個循環(huán);72 ℃延伸8 min。將 pET-28a(+)載體和pEGFP-N1質(zhì)粒分別雙酶切,回收的目的基因DNA片段分別與線性化的pET-28a(+)質(zhì)粒、pEGFP-N1質(zhì)粒過夜連接,將連接產(chǎn)物分別轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)和DH5α感受態(tài)細胞,涂布于LB固體平板(含卡那霉素50 μg/mL),37 ℃過夜培養(yǎng),挑取單克隆接種于LB液體培養(yǎng)基(含卡那霉素50 μg/mL),37 ℃、200 r/min振蕩培養(yǎng),并由北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司測序,將測序結(jié)果正確的重組菌命名為pET-28a-12L/BL21和pEGFP-N1-12L/DH5α,提取的重組質(zhì)粒進行雙酶切鑒定。

        1.4 12L重組蛋白的誘導(dǎo)表達及可溶性分析

        將重組菌pET-28a-12L/BL21培養(yǎng)至D600 nm值為0.6~0.8時,加入終濃度為1 mmol/L的IPTG;分別于37和16 ℃進行誘導(dǎo)表達,每2 h取樣一次,收集菌體,煮沸裂解,10% SDS-PAGE分析不同溫度下重組菌的表達情況,取表達量較高的樣品組,超聲破碎,4 ℃、10 000×g離心10 min,收集上清及沉淀,SDS-PAGE對表達產(chǎn)物進行可溶性分析。

        1.5 12L重組蛋白的純化

        根據(jù)1.4操作方法對重組菌pET-28a-12L/BL21進行誘導(dǎo)表達,37 ℃ 6 h后以8 000 ×g離心10 min收集菌體,超聲破碎后離心收集沉淀,包涵體經(jīng)變性、復(fù)性過程[12],復(fù)性蛋白經(jīng)Ni柱親和層析進行純化;采用梯度洗脫方式,先用平衡緩沖液(20 mmol/L pH 8.0 Tris-HCl+300 mmol/L NaCl+30 mmol/L咪唑)平衡柱子;再用洗滌緩沖液(20 mmol/L pH 8.0 Tris-HCl+500 mmol/L NaCl+60 mmol/L 咪唑)洗脫雜蛋白;最后用洗脫緩沖液(20 mmol/L pH 8.0 Tris-HCl+300 mmol/L 咪唑)洗脫目的蛋白,將純化后的蛋白命名為12L重組蛋白。采用BCA蛋白定量試劑盒進行定量,SDS-PAGE鑒定其純度。

        1.6 鼠抗12L重組蛋白多克隆抗體制備及12L重組蛋白鑒定

        取50 μg 12L重組蛋白與等量弗氏完全佐劑混勻、乳化,采用腹部多點皮下注射方式免疫6~8周齡雌性BALB/c小鼠,對照組注射等體積的PBS,在首次免疫后2、4周時,將蛋白與等量弗氏不完全佐劑混勻乳化后加強免疫,三免后1周采血,收集血清。

        取純化的12L重組蛋白進行Wertern blotting鑒定,10% SDS-PAGE后轉(zhuǎn)膜(NC膜),經(jīng)5%脫脂乳37 ℃封閉1 h后,加入稀釋的小鼠血清(1∶1 000稀釋)為一抗,辣根過氧化物酶標記山羊抗鼠IgG(1∶5 000稀釋)為二抗,鑒定蛋白反應(yīng)原性。

        1.7 12L重組蛋白多克隆抗體效價檢測

        采用方陣滴定法將純化的12L重組蛋白倍比稀釋后包被酶標板,4 ℃過夜孵育;PBST洗板(5 min/次,3次)后加入5%脫脂乳(PBS配制)于37 ℃封閉2 h;PBST再次洗滌3次,加入倍比稀釋的免疫后小鼠血清為一抗,37 ℃ 孵育1 h,PBST洗滌3次;以加入辣根過氧化物酶標記山羊抗鼠IgG(1∶5 000稀釋)為二抗,37 ℃孵育1 h,PBST洗滌后,加入TMB顯色 20 min,用2 mmol/L HCl終止反應(yīng)后讀取D450 nm值。根據(jù)方陣結(jié)果篩選最佳包被濃度和反應(yīng)條件,建立12L重組蛋白抗體間接ELISA方法,采用該方法測定免疫小鼠多克隆抗體的效價。

        1.8 12L重組蛋白多克隆抗體的間接免疫熒光試驗(IFA)鑒定

        將HEK 293T細胞鋪于24孔板,待細胞長至匯合度為70%~80%時,將pEGFP-N1-12L、pEGFP-N1分別轉(zhuǎn)染至HEK 293T細胞(1 μg/mL質(zhì)粒DNA),48 h后于熒光顯微鏡中觀察。棄去上清,用PBS洗滌3次后,用預(yù)冷的無水乙醇固定30 min,PBS洗滌3次,加入0.1% Triton X-100 室溫靜置10 min,PBS清洗3次,1% BSA溶液封閉,以12L重組蛋白免疫的小鼠血清和PBS免疫的小鼠血清(1∶100稀釋)為一抗,Alexa Flour 594-Conjugated Goat anti-Mouse IgG(H+L)(1∶50稀釋)為二抗,37 ℃避光孵育 1 h;PBS洗滌5次后于熒光顯微鏡下觀察熒光。

        2 結(jié) 果

        2.1 12L基因重組質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定

        以合成的質(zhì)粒為模板,擴增到約1 053 bp的目的片段(圖1),經(jīng)膠回收、酶切、連接、轉(zhuǎn)化后,構(gòu)建重組質(zhì)粒,構(gòu)建好的重組質(zhì)粒pET-28a-12L和重組質(zhì)粒pEGFP-N1-12L進行BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切,結(jié)果顯示,獲得大小分別約為5 000 bp的載體條帶和1 053 bp的目的條帶(圖2A、2B)。陽性質(zhì)粒測序顯示,與ASFV參考株Georgia 2007/1的12L基因100%同源,表明重組質(zhì)粒pET-28a-12L和pEGFP-N1-12L構(gòu)建正確。

        2.2 12L重組蛋白的誘導(dǎo)表達及可溶性分析

        測序正確的重組菌pET-28a-12L/BL21經(jīng)IPTG誘導(dǎo),SDS-PAGE鑒定,結(jié)果顯示,37 ℃誘導(dǎo) 6 h后表達量較高,表達產(chǎn)物在54.7 ku處出現(xiàn)目標條帶(圖3),與預(yù)期大小相符,表明重組蛋白誘導(dǎo)表達成功。

        ①A,16 ℃誘導(dǎo)重組蛋白的表達;B,37 ℃誘導(dǎo)重組蛋白的表達。②M,Thermo26616預(yù)染Marker;1,pET-28a/BL21;2,未誘導(dǎo)的pET-28a-12L/BL21;3~10,分別為誘導(dǎo)2、4、6、8、10、12、14和16 h樣品①A,Expression of recombinant protein at 16 ℃;B,Expression of recombinant protein at 37 ℃.②M,Thermo26616 pre-dyed Marker;1,pET-28a/BL21 empty vector;2,pET-28a-12L/BL21 without induction;3-10,Samples collected at 2,4,6,8,10,12,14 and 16 h after induction,respectively圖3 不同溫度條件下12L重組蛋白誘導(dǎo)表達情況Fig.3 Expression of recombinant protein 12L at different temperature conditions

        2.3 12L重組蛋白的純化及鑒定結(jié)果

        將誘導(dǎo)后的pET-28a-12L/BL21破碎上清及沉淀分別進行SDS-PAGE,對表達產(chǎn)物進行可溶性分析。結(jié)果顯示,該蛋白在沉淀中出現(xiàn),顯示其為包涵體表達(圖4A)。將表達的包涵體變性、復(fù)性后再進行Ni柱親和層析純化和SDS-PAGE鑒定,由圖4B可知,在54.7 ku處出現(xiàn)目標條帶,且較單一,表明12L重組蛋白純化效果較好,純度較高。BCA測定12L重組蛋白濃度為1.71 mg/mL。 Western blotting檢測顯示,在54.7 ku處出現(xiàn)目標條帶(圖5),表明12L重組蛋白反應(yīng)原性較好。

        1,pET-28a-12L/BL21 37 ℃誘導(dǎo)6 h;2,pET-28a-12L/BL21 37 ℃誘導(dǎo)6 h破碎后沉淀;3,pET-28a-12L/BL21 37 ℃誘導(dǎo)6 h破碎后上清;M,Thermo26616預(yù)染Marker;4,純化的12L重組蛋白1,Lysate of pET-28a-12L/BL21 after induced at 37 ℃ for 6 h;2,Supernatant of induced pET-28a-12L/BL21 at 37 ℃ for 6 h;3,Precipitation of induced pET-28a-12L/BL21 at 37 ℃ for 6 h;M,Thermo26616 pre-dyed Marker;4,Purified recombinant protein 12L圖4 12L重組蛋白的表達(A)及純化鑒定(B)Fig.4 Expression (A) and purification identification (B) of recombinant protein 12L

        圖5 12L重組蛋白Western blotting鑒定Fig.5 Detection of recombinant protein 12L by Western blotting

        2.4 重組蛋白多克隆抗體效價檢測結(jié)果

        利用建立的間接ELISA方法對制備的12L重組蛋白的鼠源多克隆抗體進行效價測定,通過方陣測定法,將純化的12L重組蛋白倍比稀釋后包被酶標板,結(jié)果顯示,12L重組蛋白的最佳包被濃度為2.5 μg/mL,制備的多克隆抗體稀釋度為1∶512 000時,其陽性血清和陰性血清仍具有顯著差異,陽性血清D450 nm值大于陰性血清D450 nm值2倍以上(圖6),表明其效價較高。

        圖6 12L重組蛋白鼠源多克隆抗體的ELISA效價測定Fig.6 ELISA titer determination of mouse polyclonal antibody against recombinant protein 12L

        2.5 重組蛋白的IFA檢測結(jié)果

        采用IFA檢測12L重組蛋白鼠源多克隆抗體的反應(yīng)性,結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染48 h后pEGFP-N1-12L和pEGFP-N1轉(zhuǎn)染后的HEK 293T細胞中均可觀察到綠色熒光(圖7A、7B),表明12L瞬時表達成功。將轉(zhuǎn)染細胞用無水乙醇固定后經(jīng)IFA檢測,結(jié)果顯示,12L重組蛋白免疫小鼠血清可特異性識別HEK 293T細胞中表達的12L蛋白,出現(xiàn)特異性紅色熒光,而以未免疫小鼠血清為一抗的對照細胞無熒光(圖7C、7D),表明所制備的鼠抗ASFV 12L多克隆抗體與真核表達的12L重組蛋白發(fā)生特異性反應(yīng),特異性較強。

        圖7 融合蛋白瞬時表達及IFA鑒定結(jié)果(100×)Fig.7 Transient expression and IFA analysis of fusion protein (100×)

        3 討 論

        ASFV高度穩(wěn)定,可通過感染豬、污染的豬肉產(chǎn)品和飼料等多種途徑傳播[13],具有急性、熱性、高度傳染性的特點,對家豬的致死率可達100%[14],對全球養(yǎng)豬業(yè)和國民經(jīng)濟造成嚴重威脅。滅活苗不能提供保護,傳代培養(yǎng)的弱毒疫苗安全性不夠,因此,目前疫苗研究主要集中于開發(fā)靶向基因缺失或亞單位改良活病毒上[15]。其中,MGF家族是基因缺失疫苗中常用的靶點之一,研究顯示,在Benin 97/1和Georgia株中敲除MGF家族基因可提供同源保護[16-19],但關(guān)于多基因家族和其他已知基因無序列相似性,關(guān)于其基因功能研究較少[17]。 ASFV 12L全長蛋白可顯著抑制IRF9和IFN-β刺激介導(dǎo)的ISRE啟動子活化,從而抑制IFN-β介導(dǎo)的免疫應(yīng)答和抗病毒作用[20],可能是ASFV免疫逃逸策略之一。

        目前大腸桿菌表達系統(tǒng)廣泛應(yīng)用于各類病原微生物蛋白的表達,是研究最為成熟的表達系統(tǒng),易獲得大量的高純度蛋白及特異性高的抗體,該方法操作簡單、高效。目前ASFV多種蛋白如CP204[21]、p30[22]、B438L[23]和EP153R[24]等均構(gòu)建了原核表達系統(tǒng)。原核表達蛋白可用于血清學檢測方法的建立,隨著ASF疫情發(fā)展,抗體檢測具有顯著優(yōu)勢,可檢出核酸檢測中漏掉的樣本,為疫情提供更全面的監(jiān)測[25]。目前ASFV原核表達蛋白如p72、EP364R和pA104R等[26-28]均已建立ELISA檢測方法。但關(guān)于ASFV 12L蛋白相關(guān)系統(tǒng)報道較少,因此,本研究選擇在原核表達系統(tǒng)中誘導(dǎo)表達12L蛋白,并制備其鼠源多克隆抗體,以期為之后血清學診斷方法開發(fā)及360-12L基因功能研究提供生物材料。

        本研究合成ASFV Georgia 2007/1株的360-12L基因,將其連接至pET-28a(+)和pEGFP-N1 2個載體,成功構(gòu)建了12L基因的原核表達系統(tǒng)和真核表達系統(tǒng),對比其他文獻顯示,這類高分子質(zhì)量和低水溶性蛋白在原核表達過程中易聚集生成包涵體[29]。有研究人員將ASFV K205R和B602L蛋白與類彈性蛋白多肽(ELP)融合表達獲得了可溶性表達,通過相變循環(huán)純化,簡單高效,且后期可切除ELP標簽,避免了與帶標簽的亞單位疫苗檢測的交叉反應(yīng)[30-31],值得參考??赡苡捎诘鞍妆磉_量較高,缺少充足的時間進行蛋白折疊,在本試驗中獲得的蛋白也為包涵體蛋白,本試驗通過降低誘導(dǎo)溫度仍未獲得可溶性表達產(chǎn)物,后期可嘗試其他載體和標簽方式構(gòu)建表達系統(tǒng)。此次經(jīng)變性復(fù)性后獲得的12L重組蛋白,經(jīng)試驗證明具有良好的免疫原性,純度較高,反應(yīng)原性較好,表明純化的重組蛋白具有一定的生物活性和應(yīng)用潛力。同時,本試驗所制備的鼠源多克隆抗體效價>1∶512 000,且具有較高的特異性,可用于后續(xù)試驗。本研究構(gòu)建的真核表達系統(tǒng)有助于進一步研究12L基因在病毒中的功能,可通過免疫共沉淀、酵母雙雜交等試驗篩選互作蛋白,進行蛋白生物學功能研究及病毒相關(guān)免疫保護性研究,進一步研究病毒復(fù)雜的致病機制。

        4 結(jié) 論

        本試驗利用原核表達系統(tǒng)成功表達12L重組蛋白,篩選其最佳誘導(dǎo)溫度并分析其在大腸桿菌中的表達情況,并制備了鼠抗ASFV 12L蛋白多克隆抗體,為進一步研究12L蛋白結(jié)構(gòu)、生物學功能、ASFV疫苗研制及診斷方法開發(fā)提供生物材料。

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