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        兩種芽孢桿菌共處理對(duì)感染黃龍病的柑桔苗的作用

        2022-01-28 07:41:38徐媛媛胡黨振
        中國(guó)南方果樹 2022年1期

        徐媛媛,胡黨振,南 京,詹 平,姜 玲

        (華中農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝林學(xué)學(xué)院/園藝植物生物學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/國(guó)家果樹脫毒種質(zhì)資源室內(nèi)保存中心/華中地區(qū)園藝作物生物學(xué)與種質(zhì)創(chuàng)制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,武漢,430070)

        黃龍病Huanglongbing(HLB)是柑桔生產(chǎn)中最具破壞性的病害之一[1],當(dāng)前黃龍病已蔓延到全世界53個(gè)國(guó)家(https://www.cabi.org/isc/datasheet/16567)[2]。我國(guó)共有廣東、廣西、福建、浙江、江西、湖南、云南、貴州、海南和四川等10個(gè)省(自治區(qū))300余個(gè)縣發(fā)生黃龍病[3]。據(jù)報(bào)道,美國(guó)佛羅里達(dá)州自2005年感染黃龍病后,近期柑桔產(chǎn)量只有1997年的近1/3[4-5]。引起黃龍病的病原菌為韌皮部桿菌(CandidatusLiberibacter spp.),其中,亞洲種(CandidatusLiberibacter asiaticus,CLas)是分布范圍最廣、危害面積最大的一個(gè)種。基因組分析表明,CLas為特殊的營(yíng)養(yǎng)缺陷型細(xì)菌,無法自主合成組氨酸、色氨酸、硫胺素、苯丙氨酸和酪氨酸,必需從宿主細(xì)胞獲取相應(yīng)營(yíng)養(yǎng)[6]。CLas缺乏編碼毒素、酶或特殊分泌系統(tǒng)的基因,它通過消耗寄主營(yíng)養(yǎng)生存,從而打破寄主代謝平衡,干擾植物的運(yùn)輸功能,引起淀粉、蔗糖和葡萄糖的積累,導(dǎo)致感病柑桔葉片韌皮部堵塞,進(jìn)而在植株上表現(xiàn)出黃化斑駁癥狀[6-7]。黃龍病是一種系統(tǒng)性的柑桔病害,在柑桔葉、花、果、根系等器官都有癥狀表現(xiàn)。受黃龍病影響的柑桔根系密度銳減,新根生長(zhǎng)受到抑制[8-9]。根據(jù)其昆蟲媒介亞洲柑桔木虱(Citruspsyllid)以葉片汁液為食的特點(diǎn),人們認(rèn)為黃龍病病原優(yōu)先在葉片定殖和發(fā)病[10],但有研究發(fā)現(xiàn)病原優(yōu)先定殖于根部,成為“病原庫”,從而使病原的滴度在不同器官、不同季節(jié)表現(xiàn)出差異[11]。胼胝質(zhì)堆積通常被認(rèn)為是植物阻止病原菌擴(kuò)散的第一道防御反應(yīng)[12],同時(shí)胼胝質(zhì)堆積也造成植物韌皮部運(yùn)輸受到抑制[13]。

        在與黃龍病幾十年的抗?fàn)庍^程中,我國(guó)科學(xué)家總結(jié)出了黃龍病“三板斧”綜合防控的措施[3]。其中,莖尖嫁接脫毒是獲得健康苗木傳統(tǒng)且可靠的方法,也是防控黃龍病的重要措施之一[14]。目前,柑桔優(yōu)良品種的無病苗木供不應(yīng)求,急需研究人員改進(jìn)脫除病原的方法,但莖尖脫毒的效果受到莖尖帶病程度的影響,如果先將母本帶病率大幅降低,再實(shí)施微芽嫁接,則對(duì)于提高柑桔的病原脫除效率有極大的幫助。

        芽孢桿菌(Bacillus)是土壤和自然界的優(yōu)勢(shì)微生物種群,很多種類都具有抑制植物病害的能力,如:枯草芽孢桿菌(B.subtilies)、短小芽孢桿菌(B.pumilus)和解淀粉芽孢桿菌(B.amyloliquefaciens)等[15-16]。芽孢桿菌能產(chǎn)生多種抗菌素和酶,具有廣譜抗菌活性和極強(qiáng)的抗病能力,通過競(jìng)爭(zhēng)、殺菌、促生等多種方式發(fā)揮作用[17]。有報(bào)道證明,解淀粉芽孢桿菌對(duì)植物病害有拮抗作用,如對(duì)番茄青枯病[18-19]、馬鈴薯晚疫病[20]等。使用混合生物控制劑(Biological Control Agent,BCAs)還可以增加不同環(huán)境下生物控制的穩(wěn)定性[21]。這些事例給黃龍病的控制提供了啟示。部分芽孢桿菌可以誘導(dǎo)系統(tǒng)抗病性(Induction of systemic resistance,ISR)[22],如:芽孢桿菌B-916可以誘導(dǎo)水稻的抗性[23]。生物控制劑在柑桔生產(chǎn)上的應(yīng)用,未來依然有巨大潛力。

        本研究通過復(fù)合芽孢桿菌的持續(xù)應(yīng)用,尋找在柑桔苗木上控制和降低黃龍病病原的方法,達(dá)到降低母本植株病原濃度和提高脫毒效率的目的,并通過對(duì)生理指標(biāo)的分析,結(jié)合顯微觀察,對(duì)復(fù)合芽孢桿菌處理減輕根系褐變進(jìn)行解析,從而闡明復(fù)合芽孢桿菌緩解和控制黃龍病的理論依據(jù),為解決柑桔無病良種繁育的瓶頸問題提供有效的手段。

        1 材料與方法

        1.1 菌劑的準(zhǔn)備選用農(nóng)業(yè)微生物國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供的貝萊斯芽孢桿菌TD2-1(B.velezensisiTD2-1)和解淀粉芽孢桿菌TD2-2(B.amyloliquefaciensTD2-2)用于感病柑桔苗木的處理。兩種菌分別進(jìn)行固體發(fā)酵。挑取單菌落,在LB液體培養(yǎng)基中200 轉(zhuǎn)/min、37 ℃培養(yǎng),分別取TD2-1和TD2-2培養(yǎng)菌液(OD600nm=1)10 mL,加入高壓滅菌后的培養(yǎng)基中(培養(yǎng)基包括1 kg麥麩、1 kg米糠、0.4 kg玉米淀粉、0.2 kg豆粕、20 g紅糖,按照料水比1∶1.1混勻),30 ℃固體發(fā)酵7 d,每天翻動(dòng)1次。然后,將培養(yǎng)物在60 ℃下干燥,再粉碎為細(xì)粉,檢測(cè)活菌數(shù)在200億個(gè)/g。使用時(shí),兩種菌劑等量混合均勻,按所需劑量在清水中形成懸濁液,每株用量0.5 L。

        1.2 菌劑處理方法南豐蜜桔苗木來源于江西南豐(江西南豐縣果業(yè)局提供),均為1年生嫁接苗,砧木為枳,種植于大棚內(nèi),盆栽基質(zhì)包含1/3泥炭、1/3蛭石和1/3腐殖土,2018年9月28日定植。處理組有15株苗木,對(duì)照組有4株苗木。所有苗木管理?xiàng)l件一致。處理組共進(jìn)行了15次復(fù)合菌劑的灌根,從2018年12月12日起在大棚內(nèi)1.6 g/L 2次(間隔時(shí)間為3周),從2月19日起在大棚外先2.5 g/L 7次(每隔二周處理1次)、后5 g/L 6次(每隔1周處理1次)。對(duì)照為清水處理。最后一次處理后24 h進(jìn)行樣品采集,樣品貯存于-70 ℃,待用。

        沙糖桔苗木為1年生苗,砧木為枳,來源于廣西南寧,2018年5月28定植。苗木管理?xiàng)l件一致。處理組共進(jìn)行了23次復(fù)合菌劑的灌根,其中,從2018年12月12日起在大棚內(nèi)1.6 g/L 2次(間隔時(shí)間為3周),從2月19日起大棚外先2.5 g/L 7次(每隔2周1次)、后5 g/L 14次(每周1次)。對(duì)照為清水處理。

        1.3 黃龍病檢測(cè)方法從植株東、南、西和北四個(gè)方位分別采集葉片或枝皮,用液氮速凍碾磨成粉,用CTAB法提取DNA[24]。

        使用OI1/OI2c和P400+/P400-兩對(duì)引物用于PCR擴(kuò)增,引物序列見表1。PCR擴(kuò)增反應(yīng)總體系為10 μL,其中,包含上下游引物(10 μmol/L)各0.1 μL,2×PCR mix(翊圣生物科技有限公司)5 μL,DNA樣品1 μL,ddH2O 3.8 μL。PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序?yàn)?5 ℃變性3 min,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,35個(gè)循環(huán)。用健康的柑桔愈傷組織做負(fù)對(duì)照,分別用pMD18-16S rDNA質(zhì)粒和pMD18T-P400質(zhì)粒做正對(duì)照。采用美國(guó)Bio-Rad PCR儀進(jìn)行檢測(cè)。

        表1 柑桔黃龍病檢測(cè)所用引物的信息

        qPCR擴(kuò)增在Corbett RG 6000儀器(德國(guó))上進(jìn)行,內(nèi)參基因?yàn)橹参锛?xì)胞色素氧化酶基因COX[25-26],目的基因?yàn)楦探埸S龍病亞洲型病原的核糖體蛋白基因rpLJ/rp1L[25],引物信息見表1。引物由上海生工生物工程股份有限公司合成。qPCR反應(yīng)程序?yàn)?4 ℃變性3 min,94 ℃變性5 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸35 s,40個(gè)循環(huán)。計(jì)算公式:ΔΔCt=(CT1目標(biāo)基因-CT1看家基因)-(CT0目標(biāo)基因-CT0看家基因),mRNA相對(duì)表達(dá)量為2-ΔΔCT[27]。設(shè)置3個(gè)重復(fù),以健康愈傷組織為負(fù)對(duì)照。將負(fù)對(duì)照的2-ΔΔCT值設(shè)置為1,若樣品的2-ΔΔCT值大于1,則認(rèn)為樣品為黃龍病疑似病株。

        1.4 胼胝質(zhì)含量和防御酶活性的測(cè)定胼胝質(zhì):2019年11月12日最后一次處理后24 h取樣,取樣部位為苗木中部接穗第3~5片葉。采用植物胼胝質(zhì)酶聯(lián)免疫分析試劑盒(江蘇酶免實(shí)業(yè)有限公司)測(cè)定柑桔葉片中胼胝質(zhì)含量,按照試劑盒說明書進(jìn)行操作,用多功能酶標(biāo)儀(TECAN)檢測(cè)。

        防御酶:2019年11月12日最后一次處理后12 h取樣,取植株早秋梢上基部起第3-4個(gè)葉片,用液氮速凍并于-80 ℃保存。測(cè)定時(shí)準(zhǔn)確稱取0.5 g葉片于預(yù)冷的研缽中,根據(jù)文獻(xiàn)[28-29]進(jìn)行SOD、POD、CAT酶活測(cè)定;硫氧還蛋白還原酶(TrxR)使用北京索萊寶公司生產(chǎn)的試劑盒進(jìn)行測(cè)定,TrxR單位活性以每克樣品每分鐘催化1 μmol DTNB還原為TNB表示。

        以上試驗(yàn)處理和對(duì)照設(shè)置3~5個(gè)生物學(xué)重復(fù),數(shù)據(jù)利用t-test進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

        1.5 根系掃描電鏡觀察分別取南豐蜜桔處理組和對(duì)照組的根系,2019年11月12日最后一次處理后24 h取樣,用清水洗凈,切割成3~5 mm的小段,轉(zhuǎn)入2.5%戊二醛溶液中固定,經(jīng)磷酸緩沖液漂洗和乙醇梯度脫水,然后將樣品用導(dǎo)電膠粘貼于樣品臺(tái)上,用離子濺射儀將樣品表面鍍膜后放入掃描電鏡(HITACHI SU8010)腔室進(jìn)行觀察。

        1.6 根系石蠟切片觀察2019年11月12日在菌劑最后一次處理后24 h取樣,分別取南豐蜜桔處理組和對(duì)照組的須根和根毛制作石蠟切片,切片及染色方法參考植物顯微技術(shù)指導(dǎo)書[30]進(jìn)行。利用德國(guó)Leica RM 2016輪轉(zhuǎn)式切片機(jī)切片,用奧林巴斯BX53型生物顯微鏡進(jìn)行切片觀察。

        1.7 脂肽類抗生素的RP-HPLC 分析與鑒定將伊枯草菌素A(iturin A)、表面活性素(surfactin)標(biāo)準(zhǔn)樣品(標(biāo)樣)溶于色譜純的無水甲醇配制成1 mg/mL的溶液,置4 ℃冰箱備用。RP-HPLC(反相高效液相色譜)分析系統(tǒng)為Waters分析型高效液相色譜儀,色譜柱為 ZORBAX Eclipse Plus C18(5 μm,4.6 nm×250 nm)。

        iturin A的RP-HPLC檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm,柱溫為25 ℃;等梯度洗脫,流動(dòng)相A為10 mmol/L乙酸銨,流動(dòng)相B為色譜純乙腈,流動(dòng)相之比為VA∶VB=65∶35;流速為1.0 mL/min;進(jìn)樣量為10 μL。

        surfactin的RP-HPLC檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm,柱溫為35 ℃;流動(dòng)相A為色譜純乙腈(含0.1%TFA),流動(dòng)相B為超純水(含0.1%TFA),起始流動(dòng)相之比VA∶VB=60∶40,在洗脫前5 min內(nèi)流動(dòng)相之比均速變化為VA∶VB=93∶7,此后流動(dòng)相之比保持不變;流速為1 mL/min;進(jìn)樣量為10 μL。

        菌株TD2-2待測(cè)樣品的準(zhǔn)備按文獻(xiàn)付瑞敏[31]方法進(jìn)行。按上述操作進(jìn)行檢測(cè)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 兩種芽孢桿菌共處理抑制黃龍病病原的效果試驗(yàn)結(jié)果看出,南豐蜜桔處理組樣品,在菌劑處理前葉脈和枝皮的黃龍病病原陽性率分別為60%和93.33%,綜合陽性率為100%;菌劑處理后葉脈和枝皮的陽性率分別為6.67%和53.33%,綜合陽性率為53.33%,綜合陽性率減少了46.67個(gè)百分點(diǎn),處理前后的差異達(dá)到顯著水平(p<0.05)。對(duì)照組樣品,在處理前對(duì)應(yīng)時(shí)間點(diǎn)葉脈和枝皮的黃龍病病原陽性率分別為25%和100%,綜合陽性率為100%;處理后時(shí)間點(diǎn)葉脈和枝皮的陽性率分別為50%和75%,綜合陽性率仍為100%。處理前,處理組與對(duì)照組的綜合陽性率差異無顯著性;處理后,處理組與對(duì)照組的綜合陽性率差異有顯著性(p<0.05)(見表2和表3)。

        表2 兩種芽孢桿菌共用處理前南豐蜜桔黃龍病病原檢測(cè)結(jié)果

        表3 兩種芽孢桿菌共用處理后南豐蜜桔黃龍病病原檢測(cè)結(jié)果

        2.2 兩種芽孢桿菌共處理降低葉片胼胝質(zhì)含量的效果在菌劑處理后,南豐蜜桔處理組和對(duì)照組葉片中胼胝質(zhì)含量分別為0.80和0.98 mg/g,兩者的差異達(dá)到顯著水平(p<0.05),相比對(duì)照組,處理組的胼胝質(zhì)含量下降了18.37%(見圖1)。

        圖1 兩種芽孢桿菌共處理對(duì) HLB 感病柑橘葉片胼胝質(zhì)含量的影響

        2.3 兩種芽孢桿菌共處理對(duì)葉片防御酶活性的影響菌劑處理可以提高葉片SOD活性。在處理12 h后,SOD活性比對(duì)照組提高了23.0%,且在12~24 h一直保持較高活性。菌劑處理后,在0~24 h內(nèi)TrxR活性呈升高趨勢(shì),在24~48 h一直保持在較高活性水平;在24 h時(shí),TrxR活性為109.1 U/g,與對(duì)照組(50.9 U/g)的差異達(dá)到顯著水平。菌劑處理后,在36 h內(nèi)CAT活性緩慢升高;在36 h時(shí)達(dá)到最大值[74.4 ΔA240/(min·gFW)],比對(duì)照組[46.41 ΔA240/(min·gFW)]高了60.3%;在36~48 h內(nèi),CAT活力又快速下降至44.43 ΔA240/(min·gFW)]。 菌劑處理后,在48 h內(nèi)POD活性一直平穩(wěn)升高;在36 h時(shí),POD活性[488.2 ΔA470/(min·gFW)]是對(duì)照組[294.0 ΔA470/(min·gFW)]的1.66倍,差異達(dá)顯著水平;在48 h時(shí),POD活性達(dá)到最大值523.5 ΔA470/(min·gFW),比對(duì)照組[303.7 ΔA470/(min·gFW)]高了72.4%(見圖2)。

        圖2 感染黃龍病的南豐蜜桔經(jīng)兩種芽孢桿菌共處理后葉片防御酶活性的變化

        2.4 兩種芽孢桿菌共處理減輕根系褐變的效果試驗(yàn)結(jié)果看出,經(jīng)菌劑處理后,南豐蜜桔處理前苗木(圖3a和3b),處理后苗木(圖3c和3d),處理組比對(duì)照組苗木生長(zhǎng)更旺盛;處理組苗木分枝數(shù)多,根系較為發(fā)達(dá),根系褐變現(xiàn)象輕(圖3e至圖3g);對(duì)照組苗木生長(zhǎng)勢(shì)相對(duì)較弱,新梢分枝少,新生根系較少,根系褐變現(xiàn)象突出(圖3h至圖3j)。

        注:a(處理)和b(對(duì)照)為試驗(yàn)前苗木,c(處理)和d(對(duì)照)為試驗(yàn)后苗木,e—g為試驗(yàn)后處理根系,h—j為試驗(yàn)后對(duì)照根系。

        經(jīng)菌劑處理后,沙糖桔處理前苗木(圖4a和4b)和處理后苗木(圖4e和4f),圖4c和4d分別是圖4a和4b局部根系放大,有褐變現(xiàn)象發(fā)生。沙糖桔處理組苗木生長(zhǎng)更旺盛,根系較為發(fā)達(dá),須根數(shù)量多,僅有少量褐變根系(見圖4h);對(duì)照組苗木生長(zhǎng)勢(shì)相對(duì)較弱,頂端有黃化葉片,新生根系較少,根系有木栓化和褐變現(xiàn)象(見圖4g)。

        注:a和b為試驗(yàn)前苗木,c和d是前兩者根部放大,均可見到褐色根;e為試驗(yàn)后對(duì)照苗木,f為試驗(yàn)后處理苗木,g為試驗(yàn)后對(duì)照根系(有木栓化和部分根呈褐色),h為試驗(yàn)后處理根系(根系發(fā)達(dá),僅有少量木栓化或褐色根系)。

        2.5 兩種芽孢桿菌共處理對(duì)根系結(jié)構(gòu)的影響掃描電鏡觀察表明,處理組根系無明顯病癥,根尖粗壯飽滿,根系外表皮細(xì)胞排列緊密,表皮光滑平整(圖5A-a和圖5A-b),在韌皮部篩管和伴胞中僅有少量的物質(zhì)存在(圖5A-c至圖5A-d),說明復(fù)合芽孢桿菌處理后,篩管和伴胞細(xì)胞得到輸通。而對(duì)照根系的根尖表皮細(xì)胞出現(xiàn)壞死,皮層細(xì)胞變形塌陷(圖5A-e),根系表皮有明顯鱗片狀開裂和脫落現(xiàn)象,表皮細(xì)胞木栓化(圖5A-f和圖5A-g),韌皮部篩管和伴孢中有大量物質(zhì)的聚積,在木質(zhì)部導(dǎo)管細(xì)胞中有較多物質(zhì)的聚集(圖5A-h)。

        注:電鏡照片:兩種芽孢桿菌共處理材料,a—d為肉眼觀察表現(xiàn)正常的根系,e—h為褐化的根系。石蠟切片:a—d為對(duì)照樣品,a.正常的根系,b.正常的根毛,c.褐化的根系,d.褐變的根毛。e—h為菌劑處理樣品,e.正常的根系,f.正常的根毛,c.褐化的根系,d.褐變的根毛。字母注釋:C為木栓層,E為表皮,En為內(nèi)皮層,Px為初生木質(zhì)部,Pp為初生韌皮部,X為木質(zhì)部,Ca為形成層,P為韌皮部,M為髓部。染色結(jié)果為植物番紅固綠染色結(jié)果:木質(zhì)化的細(xì)胞壁及核呈紅色,薄壁細(xì)胞、細(xì)胞質(zhì)呈綠色。箭頭所指字母表明具體的器官或組織。

        在復(fù)合芽孢桿菌處理和對(duì)照材料中,肉眼觀察為正常的根系和根毛,石蠟切片觀察表明其表皮細(xì)胞、皮層、韌皮部、形成層、木質(zhì)部和髓部組織均表現(xiàn)正常(圖5B-a、 b、e 和 f)。在對(duì)照樣品中,褐變的根系表皮和皮層細(xì)胞破裂,皮層細(xì)胞形狀發(fā)生變化,形狀不規(guī)則(圖5B-c),褐變的根毛部分表皮細(xì)胞木栓化,皮層細(xì)胞排列松散,出現(xiàn)大空洞(圖5B-d)。在復(fù)合芽孢桿菌處理的樣品中,褐變的根系表皮細(xì)胞破裂,表皮細(xì)胞木栓化,皮層細(xì)胞變形(圖5B-g),根毛表面只有少量表皮細(xì)胞褐化,但皮層、韌皮部、形成層、木質(zhì)部和髓部組織均表現(xiàn)正常(圖5B-h)。因此,復(fù)合芽孢桿菌處理刺激更多的新根產(chǎn)生,保持根毛內(nèi)部結(jié)構(gòu)呈正常狀態(tài),根毛破壞程度明顯減小。

        2.6 菌株TD2-2培養(yǎng)液粗提物的脂肽類抗生素檢測(cè)在相同條件下,對(duì)surfactin標(biāo)樣與樣品(菌株TD2-2培養(yǎng)液粗提物)進(jìn)行RP-HPLC分析的結(jié)果表明,surfactin標(biāo)樣在保留時(shí)間11.549 min、13.274 min、13.741 min和15.511 min處出現(xiàn)特征峰,而TD2-2粗提物樣品在surfactin特征峰出現(xiàn)的保留時(shí)間附近也出現(xiàn)峰,由此推測(cè)TD2-2粗提物樣品中含有surfactin的同系物。在相同條件下,對(duì)iturin A標(biāo)樣和樣品(菌株TD2-2培養(yǎng)液粗提物)進(jìn)行RP-HPLC分析的結(jié)果表明,iturin A標(biāo)樣在保留時(shí)間17.433 min、27.136 min和29.286 min處出現(xiàn)了特異峰,TD2-2粗提物樣品的特征峰不在iturin A標(biāo)準(zhǔn)峰位置出現(xiàn),說明TD2-2粗提物樣品中可能沒有iturin A,或者iturin A被修飾,位置發(fā)生了偏移;同時(shí)發(fā)現(xiàn),TD2-2粗提物樣品的特征峰穩(wěn)定地存在于15 min、23 min、25 min左右,推測(cè)可能有其他次生代謝物存在(見圖6)。

        圖6 菌株TD2-2次生代謝物的反相高效液相分析

        3 討論

        利用貝萊斯芽孢桿菌TD2-1和解淀粉芽孢桿菌TD2-2懸濁液對(duì)南豐蜜桔感病苗木進(jìn)行高強(qiáng)度和持續(xù)的灌根處理,降低了黃龍病病原關(guān)鍵基因在葉脈和枝皮中的表達(dá)量,黃龍病陽性率明顯降低。這項(xiàng)研究對(duì)提高后續(xù)莖尖嫁接脫毒效率有潛在應(yīng)用價(jià)值。

        柑桔感染黃龍病后,胼胝質(zhì)在葉脈韌皮部中沉積,并且編碼胼胝質(zhì)沉積的相關(guān)基因上調(diào)[6,11],導(dǎo)致形成層細(xì)胞增厚和無序化[8]。解淀粉芽孢桿菌和貝萊斯芽孢桿菌都具有很好的促生作用,解淀粉芽孢桿菌可以分泌多種植物生長(zhǎng)因子,對(duì)植物產(chǎn)生多種作用[32-33]。本研究發(fā)現(xiàn),兩種芽孢桿菌共處理,葉片中胼胝質(zhì)含量下降,葉脈堵塞現(xiàn)象得到緩解。

        提高防御酶的表達(dá),是植株通過ISR來抵御病原菌的主要方式之一。SOD為動(dòng)植物體內(nèi)抗氧化物保護(hù)酶,在植物抗性反應(yīng)中起重要作用[34]。POD不僅參與植物體內(nèi)次生代謝,同時(shí)參與體內(nèi)過氧化產(chǎn)物的清理。

        SOD和POD是細(xì)胞內(nèi)清除活性氧系統(tǒng)中的重要酶,能有效地阻止O2-和H2O2在植物體內(nèi)積累,防止細(xì)胞受自由基的毒害。PPO為植物體內(nèi)酚類物質(zhì)代謝的參與酶,其氧化產(chǎn)物醌類物質(zhì)對(duì)病原物具有比酚類物質(zhì)更強(qiáng)的毒性,在植物抗病性方面起著重要的作用[28,35]。曲慧[36]發(fā)現(xiàn),解淀粉芽孢桿菌BP30可以誘導(dǎo)梨果實(shí)中POD和PPO的活力提高,從而增加對(duì)灰霉病的抗性。對(duì)拮抗菌C-02防治棉花黃萎病的研究表明,菌株C-02處理棉苗后,PAL、POD和PPO的活性提高幅度大,提高了棉苗的系統(tǒng)防御能力[29]。本研究通過復(fù)合芽孢桿菌處理感病柑桔苗木,誘導(dǎo)4種防御酶活性的提高,提高了柑桔苗木系統(tǒng)防御能力,減少了根系的褐化。

        解淀粉芽孢桿菌分泌的抑菌物質(zhì)豐富,常見的種類分為脂肽物質(zhì)和聚酮類物質(zhì)。如:解淀粉芽孢桿菌SQR9可以合成bacillomycin D(桿菌霉素D)和fengycin(芬薺素)兩種脂肽,對(duì)香蕉枯萎菌有顯著的拮抗作用[32]。在成功應(yīng)用的解淀粉芽孢桿菌FZB42中就發(fā)現(xiàn)了3種聚酮類物質(zhì)——地非西丁、大環(huán)內(nèi)脂和桿菌烯,它們對(duì)細(xì)菌有強(qiáng)烈的抑制活性[37-38]。貝萊斯芽孢桿菌12-51對(duì)棉花黃萎病有拮抗作用[39]。本試驗(yàn)證明,解淀粉芽孢桿菌TD2-2可以產(chǎn)生表面活性素等次生代謝物。TD2-2對(duì)柑桔苗木黃龍病的緩解可能與其產(chǎn)生的表面活性素的殺菌作用密切相關(guān)。

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