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        基于MGB1-TLR4-NF-κB信號通路分析右美托咪定對膿毒癥小鼠急性肺損傷的保護作用

        2021-12-24 02:59:46吳華兵肖秀英詹瑋瑋隗莉胥春梅
        疑難病雜志 2021年12期
        關鍵詞:小鼠模型

        吳華兵,肖秀英,詹瑋瑋,隗莉,胥春梅

        膿毒癥(sepsis)是由機體對感染的異常反應引起的器官功能障礙綜合征,臨床表現(xiàn)為體溫升高或降低、心悸氣短、寒戰(zhàn)及精神萎靡。全世界每年感染膿毒癥人數(shù)超過3 000萬,且發(fā)病率和病死率仍在上升,是世界范圍內(nèi)危重癥患者死亡的主要原因之一[1]。嚴重創(chuàng)傷、燒傷、腹膜炎等原因引起的感染均有可能導致膿毒癥的發(fā)生,臨床住院患者中膿毒癥的發(fā)病率可達1%~2%[2]。右美托咪定(dexmedetomidine,Dex)是高選擇性的α2腎上腺素受體激動劑,具有鎮(zhèn)靜、鎮(zhèn)痛、抗焦慮、抗交感神經(jīng)和減少阿片類藥物不良反應的作用[3],最新研究證實,Dex治療膿毒癥的效果良好,可顯著抑制患者的炎性反應,降低病死率,增強免疫系統(tǒng)活性[4]。本實驗探究Dex對膿毒癥小鼠急性肺損傷的保護作用,并進一步了解其潛在調(diào)控機制,報道如下。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料 (1)實驗動物:雄性BALB/c小鼠36只,購自武漢大學動物實驗中心(合格證號:2016SY03245),4~8周齡,體質(zhì)量18~22 g,飼養(yǎng)于無特殊病原體的飼養(yǎng)箱內(nèi),保持飼養(yǎng)箱內(nèi)環(huán)境安靜,給予充足的光照和水源,維持室溫及50%空氣濕度,實驗小鼠均經(jīng)動物保護學科委員會同意。(2)試劑、藥物:右美托咪定(上海源葉生物科技有限公司),脂多糖(lipopolysaccharides,LPS,美國Sigma公司),髓過氧化物酶(MPO)、白介素-6 (IL-6)、IL-1β、腫瘤壞死因子(TNF-α)酶聯(lián)免疫吸附試劑盒(武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司),BCA試劑盒(上海齊源生物科技有限公司),MGB1、TLR4、NF-κB、β-actin一抗[中國艾博抗(上海)貿(mào)易有限公司] 。(3)儀器設備:電子天平(型號 H0503,邢臺智冠機械科技有限公司),高溫烤箱(型號 JY-KX-150,東莞市精域環(huán)境測試設備有限公司),組織勻漿機(型號 JJ-2,常州金壇良友儀器有限公司),離心機(型號 TG18KR,上海舜制儀器制造有限公司)。

        1.2 實驗方法 2017年8—12月于三峽大學第三臨床醫(yī)學院動物實驗中心進行實驗。小鼠適應性喂養(yǎng)3 d后,按照完全隨機法分為空白對照組、模型組及右美托咪定(Dex)組,每組12只。模型組和Dex組小鼠按照LPS 20 mg/kg腹腔注射,以構(gòu)建膿毒癥小鼠模型,當小鼠出現(xiàn)寒戰(zhàn)發(fā)抖、抱團取暖、呼吸頻率加快、口唇發(fā)紫發(fā)青、抓取時反抗無力時視為造模成功,空白對照組小鼠腹腔注射等量生理鹽水。造模成功后Dex組小鼠腹腔注射Dex 40 μg/kg,24 h后斷頭處死各組小鼠,沿胸線逐層分開組織,打開腹腔及胸膜,取出肺組織于-80℃的液氮中保存待用。

        1.3 觀測指標與方法

        1.3.1 肺組織病理切片染色:將各組小鼠肺組織切片脫蠟后,乙醇脫水處理,加入蒸餾水后用蘇木精水溶液進行染色,持續(xù)數(shù)分鐘,再用氨水進行分色處理,沖洗1 h加入蒸餾水,乙醇再次脫水10 min,伊紅溶液進行染色,持續(xù)2~3 min,乙醇脫水后透明封片,觀察各組小鼠肺組織標本染色情況;并根據(jù)肺泡浸潤、出血、間隔水腫及纖維蛋白沉積程度進行肺損傷評分[5]:肺泡浸潤、出血、間隔水腫及纖維蛋白沉積程度每項計0~3分,無為0分,輕微為1分,中度為2分,重度為3分,總分為各項得分累加,總分越高,肺損傷程度越重。

        1.3.2 肺組織濕干重比(W/D)檢測:將小鼠肺組織擦干后用電子天平稱重,得到肺組織濕重(wet weight,W),再將肺組織置于高溫烤箱中烘烤至干透后再次稱重,得到肺組織干重(dry weight,D),計算W/D。

        1.3.3 肺組織炎性因子檢測:小鼠肺組織稱重后,加入裂解液進行裂解,4℃下離心取上清液。采用酶聯(lián)免疫吸附試劑盒檢測IL-6、IL-1β和TNF-α、MPO,嚴格按試劑盒要求操作。

        1.3.4 肺組織MGB1-TLR4-NF-κB信號通路蛋白檢測:采用Western-blot法檢測。小鼠肺組織經(jīng)勻漿機處理后離心,棄上清液,加入含有1%苯甲基磺酰氟(PMSF)的裂解液(RIPA)1 000 μl,冰上裂解30 min,4℃下離心收集總蛋白,根據(jù)BCA試劑盒說明書測量各組乳腺球蛋白(mammaglobin,MGB1)-Toll樣受體4(toll-like receptor 4,TLR4)-核因子κB(nuclear factor kappa-B,NF-κB)信號通路的蛋白表達。取各組蛋白30 mg共20 μl進行聚丙烯酰胺凝膠電泳后電轉(zhuǎn)至聚偏二氟乙烯膜(PVDF)上,脫脂奶粉封膜1 h后,再與MGB1、TLR4、NF-κB、β-actin一抗在4℃下孵育過夜(抗體濃度為1∶1 000)。用磷酸鹽緩沖液洗膜多次,加入稀釋比為1∶2 000的羊抗兔二抗共同孵育1 h,洗膜3次后曝光成像,Image J軟件分析各組MGB1-TLR4-NF-κB蛋白的灰度值。

        2 結(jié) 果

        2.1 各組小鼠肺組織病理形態(tài)變化 空白對照組小鼠肺組織染色均勻且清晰可見,結(jié)構(gòu)完整,排列緊密且有序,無明顯炎性反應浸潤;模型組肺組織染色較深,邊緣模糊,形態(tài)結(jié)構(gòu)不完整,排列雜亂,毛細血管內(nèi)皮細胞受損出血,肺泡空腔內(nèi)觀察到大量炎性反應浸潤;Dex組肺組織較為清晰,結(jié)構(gòu)相對完整,排列較為整齊,較模型組炎性反應程度顯著減輕,且無彌漫性出血,見圖1。

        圖1 各組小鼠肺組織病理形態(tài)變化比較(HE染色,×200)

        2.2 各組小鼠肺損傷指標比較 與空白對照組比較,模型組小鼠W/D比值、肺損傷評分顯著升高(t=14.587、15.013,P均<0.01);與模型組比較,Dex組小鼠W/D比值、肺損傷評分均顯著降低(t=12.405、7.696,P均<0.01),見表1。

        表1 各組小鼠肺損傷相關指標比較

        2.3 各組小鼠肺組織內(nèi)炎性因子水平比較 與空白對照組比較,模型組IL-6、IL-1β、TNF-α和MPO水平顯著升高(t=98.601、18.049、33.506、5.929,P均<0.01);與模型組比較,Dex組L-6、IL-1β、TNF-α和MPO水平顯著降低(t=50.881、9.054、9.490、4.515,P均<0.01),見表2。

        表2 各組小鼠肺組織內(nèi)炎性因子水平比較

        2.4 各組小鼠肺組織內(nèi)MGB1-TLR4-NF-κB通路蛋白表達比較 與空白對照組比較,模型組MGB1-TLR4-NF-κB通路的蛋白表達顯著上調(diào)(t=24.779、22.033、22.642,P均<0.01);與模型組比較,Dex組上述分子的蛋白表達均顯著下調(diào)(t=21.394、18.644、17.781,P均<0.01),見圖2、圖3。

        3 討 論

        近些年來,膿毒癥已經(jīng)成為全球性的公共衛(wèi)生問題,也是現(xiàn)階段臨床感染致死的主要原因之一,病死率高達40%[6]。膿毒癥是由細菌、真菌及病毒引起的,其發(fā)病機制極其復雜,包括機體炎性反應失衡、凝血及免疫障礙、線粒體功能受損及自噬等病理生理過程,最終引發(fā)全身性循環(huán)及器官功能障礙,甚至可進一步進展為膿毒性休克,對患者生命安全造成極大威脅[7]。肺部是人體重要免疫器官,通過先天免疫細胞和適應性免疫細胞誘導免疫反應。肺部是多種空氣傳播病原體、氣溶膠及炎性反應過敏原的主要靶器官,可致肺炎、急性呼吸窘迫綜合征、急性肺損傷(ALI),膿毒癥患者幾乎都伴有ALI[8-9],減輕ALI已成為治療膿毒癥的關鍵步驟。目前針對膿毒癥缺乏專門的治療方案,主要通過加強疾病源頭控制、抗生素及器官功能支持來避免感染[10]。膿毒癥患者機體內(nèi)的炎性因子大量釋放,肺內(nèi)組織液生成及回流失調(diào),從毛細血管內(nèi)外滲,積聚于肺泡及肺間質(zhì)內(nèi),引起肺組織水腫,同時血氧飽和度迅速下降,引起呼吸衰竭及心臟驟停等嚴重后果[11-12]。因此,抑制炎性反應,減輕急性肺損傷對于膿毒癥患者的臨床治療十分關鍵。

        注:A.空白對照組;B.模型組;C.Dex組

        注:與空白對照組比較,aP<0.01;與模型組比較,bP<0.01

        右美托咪定常用于兒科鎮(zhèn)靜,臨床效果較好,且安全性較高,對于外周血管收縮及交感神經(jīng)溶解也有較好的促進作用[13]。證據(jù)表明,Dex等α2腎上腺素受體激動劑可抑制膿毒癥等需要體外循環(huán)支持患者的炎性反應及交感神經(jīng)過度興奮,從而保護心血管、肺臟、腎臟及大腦等重要器官[14],減輕膿毒癥患者急性肺損傷。本結(jié)果發(fā)現(xiàn),Dex可顯著抑制膿毒癥模型小鼠肺組織內(nèi)的炎性因子水平,減輕炎性反應,改善肺損傷。Dex對模型小鼠炎性反應的抑制和對肺損傷的保護作用原因可能在于Dex優(yōu)異的抗炎生物活性及器官保護作用。IL-6、IL-1β、TNF-α和MPO是經(jīng)典的炎性因子標志物,Dex通過抑制IL-6、TNF-α和MPO等炎性介質(zhì)的過度表達,抑制炎性反應的激活,阻斷炎性級聯(lián)放大效應,避免因膿毒癥導致的器官損傷,發(fā)揮保護肺功能的作用[15-17]。Meng等[18]研究發(fā)現(xiàn),Dex可顯著抑制脂多糖誘導的全身性炎性反應,降低肺損傷評分和肺組織濕干重比,減輕膿毒癥大鼠的急性肺損傷,這也與本結(jié)果相符。

        MGB1作為乳腺和腫瘤特異性標志物,參與介導乳腺癌、子宮內(nèi)膜癌等惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展,同樣也是炎性級聯(lián)反應中的重要蛋白質(zhì),在膿毒癥等炎性反應中高表達[19]。TLR4-NF-κB則是經(jīng)典的炎性反應通路,可調(diào)節(jié)IL-1β、TNF-α和MPO等多種炎性因子的水平,參與調(diào)控炎性反應,進而導致膿毒癥等炎性反應性疾病的發(fā)生[20]。本研究發(fā)現(xiàn),Dex可抑制MGB1-TLR4-NF-κB信號通路的激活,抑制膿毒癥小鼠的炎性反應,下調(diào)IL-6、IL-1β、TNF-α和MPO等炎性介質(zhì)的表達水平。

        綜上所述,Dex通過抑制MGB1-TLR4-NF-κB信號通路的激活,減輕膿毒癥小鼠肺組織炎性細胞浸潤等炎性反應,對膿毒癥小鼠急性肺損傷起到良好的保護效果,提示MGB1-TLR4-NF-κB通路可能與膿毒癥急性肺損傷有關,為Dex臨床治療膿毒癥急性肺損傷的可行性提供了更多數(shù)據(jù)支撐。

        利益沖突:所有作者聲明無利益沖突

        作者貢獻聲明

        吳華兵:設計研究方案,實施研究過程,論文撰寫;肖秀英、詹瑋瑋:提出研究思路,分析試驗數(shù)據(jù),論文審核;隗莉、胥春梅:實施研究過程,資料搜集整理,論文修改

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