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        基于NF-κB信號(hào)通路探討針刺緩解干眼豚鼠淚腺炎癥的機(jī)制

        2021-12-04 07:40:56鄭曉駿丁寧徐倩高衛(wèi)萍
        中醫(yī)藥信息 2021年11期
        關(guān)鍵詞:淚腺豚鼠干眼

        鄭曉駿,丁寧,徐倩,高衛(wèi)萍

        (南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院,江蘇 南京 210029)

        干眼是臨床常見(jiàn)的眼表疾病,在該病的發(fā)生和演變過(guò)程中與炎癥因子之間關(guān)系密切,炎癥是干眼的主要發(fā)病機(jī)制之一[1]。針刺治療干眼,除了能夠有效降低角膜染色評(píng)分、增加淚液分泌量、延長(zhǎng)淚膜破裂時(shí)間之外,也可減輕炎癥反應(yīng)[2];相比西藥不僅臨床療效較好,同時(shí)毒副作用也較少。為此,積極展開(kāi)關(guān)于針刺治療干眼的抗炎作用機(jī)制研究,具有重要的意義。

        研究顯示,針刺療法可通過(guò)增加α7nAChR,下調(diào)NF-κB 信號(hào)通路中p65 的表達(dá),從而有效抑制炎癥,減輕各組織損傷[3]。但目前關(guān)于針刺可降低干眼動(dòng)物淚腺組織中炎癥因子表達(dá)的研究較少[2]。為此,本研究基于NF-κB 信號(hào)通路,以豚鼠進(jìn)行干眼動(dòng)物造模,通過(guò)檢測(cè)干眼豚鼠淚腺組織中相關(guān)炎癥因子的表達(dá)情況,探討針刺對(duì)干眼的抗炎作用和NF-κB 信號(hào)通路之間存在的相關(guān)性。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        氫溴酸東莨菪堿注射劑(成都普菲德生物技術(shù)有限公司,批號(hào):19011407);酚紅棉線(遼寧美滋林藥業(yè)有限公司);一次性使用無(wú)菌針灸針(φ0.18 × 13 mm,北京中研太和醫(yī)療器械有限公司,批號(hào):200628);熒光素鈉眼科檢驗(yàn)試紙(天津伊諾新康醫(yī)療器械科技有限公司);蛋白裂解液(上海碧云天生物技術(shù)有限公司);J3692-A 豚鼠白細(xì)胞介素-4(IL-4)、白細(xì)胞介素-10(IL-10)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)ELISA 檢測(cè)試劑盒(江蘇晶美生物技術(shù)有限公司,批號(hào):2021.03)。

        1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

        健康雄性英格蘭短毛三花豚鼠24 只(南京市浦口區(qū)萊芙養(yǎng)殖場(chǎng),SCXK-蘇2019-0005),體質(zhì)量(300±50)g,常規(guī)喂養(yǎng),飼養(yǎng)環(huán)境:溫度24~26 ℃,濕度50%~65%。裂隙燈顯微鏡查眼表無(wú)明顯異常。

        1.3 動(dòng)物模型制備與分組

        將上述24 只實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,隨機(jī)分為空白組、模型組、針刺組及假針刺組,每組各6只(12只眼)。其中,模型組、針刺組、假針刺組每日8:00、11:00、14:00、17:00皮下注射1 次氫溴酸東莨菪堿溶液,每日4 次,劑量為0.6 mg/(0.2 mL·次)[4-5]。第12 天,各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的Prtt 檢測(cè)結(jié)果同實(shí)驗(yàn)前及空白組相比,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),表明干眼動(dòng)物模型建立。實(shí)驗(yàn)遵循《國(guó)家實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理保護(hù)條例》,并通過(guò)南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號(hào):2021DW0201)。

        1.4 實(shí)驗(yàn)方法

        空白組常規(guī)飼養(yǎng),不做任何造模處理及治療。模型組、針刺組及假針刺組每日4次皮下注射東莨菪堿,直至實(shí)驗(yàn)結(jié)束,共26 d。其中,在第12 天造模成功后,模型組不做任何處理。針刺組每日給予針刺治療,穴位取雙側(cè)睛明、攢竹、絲竹空、太陽(yáng)、瞳子髎。穴位定位參照《實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)》[6]。睛明針尖向內(nèi)下方斜刺入皮下,攢竹向下平刺,太陽(yáng)直刺,瞳子髎直刺,均不行針,留針15 min。絲竹空透太陽(yáng),每日1次,連續(xù)治療14 d。假針刺組則以鈍針頭每天淺刺激本組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物眼周穴位,取穴方法及治療天數(shù)均同針刺組。

        1.5 干眼相關(guān)指標(biāo)檢測(cè)方法

        分別于實(shí)驗(yàn)第0 天(實(shí)驗(yàn)前)、實(shí)驗(yàn)第12 天(造模后)、實(shí)驗(yàn)第26天(治療后)對(duì)各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的BUT、FL及Prtt進(jìn)行檢測(cè)。具體方法如下:

        1.5.1 BUT檢測(cè)

        將濕潤(rùn)的熒光素鈉染色試紙輕點(diǎn)于實(shí)驗(yàn)動(dòng)物下穹隆部,輔助動(dòng)物眨眼后,使用裂隙燈觀察,記錄首個(gè)角膜干燥斑出現(xiàn)所用的時(shí)間,每只眼均檢測(cè)3次,取平均值。

        1.5.2 FL檢測(cè)

        將濕潤(rùn)的熒光素鈉染色試紙輕點(diǎn)于實(shí)驗(yàn)動(dòng)物下眼瞼穹窿部,輔助動(dòng)物眨眼后進(jìn)行計(jì)分。計(jì)分標(biāo)準(zhǔn):采取角膜病變劃分法,使用裂隙燈觀察,以角膜中心為垂直和水平兩條線的交點(diǎn),將角膜劃分為四等份,每等份分別計(jì)0~3 分,不染色時(shí)計(jì)0 分,5 個(gè)以下點(diǎn)染計(jì)1 分,5 個(gè)以上的點(diǎn)染計(jì)2 分,塊狀染色計(jì)3 分,最后將各等份內(nèi)的分?jǐn)?shù)進(jìn)行相加,滿(mǎn)分為12分。

        1.5.3 Prtt檢測(cè)

        把酚紅棉線一端少許輕折,用眼科鑷小心輕夾反折處后,小心放入動(dòng)物結(jié)膜囊內(nèi),輔助動(dòng)物閉眼,并計(jì)時(shí)20 s,再取出棉線,測(cè)量其被浸潤(rùn)的實(shí)際長(zhǎng)度。

        1.6 免疫組織化學(xué)染色檢測(cè)

        實(shí)驗(yàn)第26 天處死所有豚鼠,立即從各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中,隨機(jī)取3 只左眼部分淚腺組織,通過(guò)多聚甲醛固定和常規(guī)石蠟包埋。用PBS 液沖洗3 次后,以正常山羊血清封閉,室溫孵育10 min。傾去血清,勿洗,滴加p65(1∶200),4 ℃孵育過(guò)夜,PBS 沖洗5 min×3 次,滴加新鮮配制的DAB 顯色劑。自來(lái)水充分沖洗,蘇木精復(fù)染,自來(lái)水沖洗返藍(lán),梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹(shù)膠封片,顯微鏡觀察。

        1.7 Western Blot檢測(cè)

        實(shí)驗(yàn)第26 天,處死各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物后,取下各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的右側(cè)淚腺,剪碎加入裂解混合液于冰上裂解30 min,待裂解完畢后離心5 min 取上清液,用BCA 法提取蛋白、濃度測(cè)定。樣品經(jīng)上樣緩沖液稀釋后于12% SDS-PAGE 分離膠電泳,轉(zhuǎn)膜后用5%脫脂奶室溫封閉2 h。洗膜后,加入α7nAChR(1∶1 000),p65(1∶2 000)抗體4 ℃孵育過(guò)夜,二抗室溫下孵育2 h,洗膜10 min×3 次后曝光。以GAPDH 作為內(nèi)參,對(duì)條帶進(jìn)行光密度分析。

        1.8 ELISA檢測(cè)

        用上述提取的蛋白按照IL-4、IL-10、TNF-α ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)檢測(cè)各組淚腺組織中因子的含量。

        1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

        采用SPSS26軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)據(jù)用±s進(jìn)行表示,采用單因素方差分析法,隨后進(jìn)一步采用LSD進(jìn)行多組兩兩對(duì)比。P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 各組不同時(shí)段BUT比較

        實(shí)驗(yàn)前各組BUT 比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。造模后,除空白組外,其余各組的BUT同實(shí)驗(yàn)前相比均有所下降,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,P<0.01);治療后,模型組和空白組相比明顯下降,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);針刺組同模型組相比明顯上升,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);假針刺組同針刺組相比明顯下降,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)果見(jiàn)表1。

        表1 各組不同時(shí)間段BUT比較(±s,s)

        表1 各組不同時(shí)間段BUT比較(±s,s)

        注:與空白組比較,*P <0.05;與模型組比較,#P <0.05;與針刺組比較,▲P <0.05;與實(shí)驗(yàn)前比較,△P <0.05,△△P <0.01;與造模后比較,¥P <0.05。

        實(shí)驗(yàn)前空白組模型組針刺組假針刺組n 6 6 6 6實(shí)驗(yàn)前7.17±2.69 8.50±3.26 9.83±4.26 8.93±3.96造模后7.25±2.80 5.33±3.31Δ 6.17±3.79Δ 4.75±2.83ΔΔ治療后8.00±3.28 2.58±1.51*¥6.50±3.09#3.33±2.02▲

        2.2 各組不同時(shí)段FL比較

        實(shí)驗(yàn)前各組FL 比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。造模后,各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的角膜染色評(píng)分和實(shí)驗(yàn)前相比均呈現(xiàn)上升趨勢(shì),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);并且模型組、針刺組、假針刺組同空白組相比明顯上升,差異也均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);治療后,空白組和造模后相比有所下降(P<0.05),但與實(shí)驗(yàn)前相比,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);模型組同空白組對(duì)比上升顯著(P<0.01);針刺組同模型組相比顯著下降(P<0.01);假針刺組同針刺組相比,高于針刺組(P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表2。

        表2 各組不同時(shí)間段FL比較(±s,分)

        表2 各組不同時(shí)間段FL比較(±s,分)

        注:與空白組比較,**P <0.01;與模型組比較,##P <0.05;與針刺組比較,▲▲P <0.01;與實(shí)驗(yàn)前比較,△△P <0.01;與造模后比較,¥P <0.05,¥¥P <0.01。

        組別空白組模型組針刺組假針刺組n6 6 6 6實(shí)驗(yàn)前1.17±0.94 1.00±0.85 1.17±1.45 1.42±1.56造模后3.43±2.94ΔΔ 7.17±3.79ΔΔ**7.08±2.58ΔΔ**7.00±3.13ΔΔ**治療后1.75±1.29¥8.33±1.86**3.42±1.83¥¥##6.75±3.23**▲▲

        2.3 各組不同時(shí)段Prtt比較

        實(shí)驗(yàn)前各組之間的Prtt 比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);造模后,除空白組之外,其余各組的Prtt同實(shí)驗(yàn)前對(duì)比均顯著下降(P<0.01);并且,同空白組對(duì)比,模型組、針刺組、假針刺組均顯著下降,差異亦存在統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);治療后,模型組和空白組對(duì)比顯著下降(P<0.01);針刺組同模型組相比上升明顯(P<0.01);假針刺組和針刺組相比顯著下降(P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表3。

        表3 各組不同時(shí)間段Prtt比較(±s,mm/20 s)

        表3 各組不同時(shí)間段Prtt比較(±s,mm/20 s)

        注:與空白組比較,**P <0.01;與模型組比較,##P <0.01;與針刺組比較,▲▲P <0.01;與實(shí)驗(yàn)前比較,△△P <0.01;與造模后比較,¥¥P <0.05。

        組別空白組模型組針刺組假針刺組n6 6 6 6實(shí)驗(yàn)前10.21±5.00 9.63±2.37 10.21±2.35 9.33±3.31造模后9.96±5.67 4.17±1.27ΔΔ**5.38±1.60ΔΔ**4.96±3.00ΔΔ**治療后10.21±5.00 2.83±3.43**9.50±3.78ΔΔ##1.42±2.39ΔΔ**▲▲

        2.4 各組淚腺中NF-κBp65 蛋白的免疫組織化學(xué)染色檢測(cè)結(jié)果

        與空白組對(duì)比,模型組淚腺組織中NF-κBp65 相對(duì)表達(dá)量顯著升高(P<0.01);與模型組對(duì)比,針刺組淚腺組織中NF-κBp65 蛋白的相對(duì)表達(dá)量顯著下降(P<0.01);與針刺組對(duì)比,假針刺組淚腺組織中NFκBp65 的相對(duì)表達(dá)量則明顯升高(P<0.05)。結(jié)果見(jiàn)圖1。

        圖1 各組豚鼠淚腺中NF-κBp65蛋白的相對(duì)表達(dá)量(×200)

        2.5 各組淚腺中α7nAChR 及NF-κBp65 的Western Blot檢測(cè)結(jié)果

        與空白組對(duì)比,模型組淚腺組織中α7nAChR 的相對(duì)表達(dá)量明顯降低(P<0. 01),NF-κBp65 則顯著升高(P<0. 01);與模型組對(duì)比,針刺組中的α7nAChR 的 相對(duì)表達(dá) 量顯著升 高(P<0. 01),NF-κBp65 則顯著下降(P<0. 01);與針刺組對(duì)比,假針刺組淚腺組織中α7nAChR 的相對(duì)表達(dá)量有所下降,而NF-κBp65 則顯著升高(P<0. 01)。結(jié)果見(jiàn)圖2 和圖3。

        圖2 各組豚鼠淚腺中α7nAChR的表達(dá)水平

        圖3 各組豚鼠淚腺組織中NF-κBp65蛋白的表達(dá)水平

        2.6 各組淚腺中IL-4、TNF-α和IL-10的含量比較

        與空白組對(duì)比,模型組淚腺組織中IL-4 的含量高于空白組(P<0.01);與模型組對(duì)比,針刺組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中IL-4 的含量顯著下降(P<0.01);與針刺組對(duì)比,假針刺組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中IL-4 的含量升高(P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)圖4。

        圖4 各組豚鼠淚腺中IL-4的含量對(duì)比情況

        與空白組對(duì)比,模型組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中TNFα的含量高于空白組(P<0.01);與模型組對(duì)比,針刺組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中TNF-α 的含量明顯下降(P<0.05);與針刺組對(duì)比,假針刺組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中TNF-α的含量升高(P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)圖5。

        圖5 各組豚鼠淚腺中TNF-α的含量對(duì)比情況

        與空白組對(duì)比,模型組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中IL-10的含量高于空白組(P<0.05);與模型組對(duì)比,針刺組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中IL-10 的含量明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與針刺組對(duì)比,假針刺組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物淚腺組織中IL-10 的含量明顯上升(P<0.05)。結(jié)果見(jiàn)圖6。

        圖6 各組豚鼠淚腺中IL-10的含量對(duì)比情況

        3 討論

        在參與炎癥反應(yīng)的過(guò)程中,NF-κBp65 被激活后與目的基因相結(jié)合,從而促進(jìn)IL-4、TNF-α 和IL-10等炎癥因子的大量釋放[1]。而其上游的α7nAChR 在機(jī)體抗炎過(guò)程中,具有重要作用[3],具體為通過(guò)增加α7nAChR,可有效抑制NF-κBp65 的激活,減少I(mǎi)L-4、TNF-α 和IL-10 等炎癥因子的釋放,從而有效抑制炎癥反應(yīng),減輕機(jī)體組織損傷[1]。

        本研究以皮下注射東莨菪堿誘導(dǎo)干眼豚鼠模型,造模后的結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的角膜染色評(píng)分顯著上升,淚膜破裂時(shí)間、淚液分泌量明顯減少,表示造模成功。模型組淚腺組織中IL-4、TNF-α 和IL-10 含量明顯上升,NF-κBp65蛋白相對(duì)表達(dá)量顯著升高,表明在NF-κB 信號(hào)傳導(dǎo)通路被激活后,釋放炎癥因子,損傷淚腺細(xì)胞,促使淚腺腺泡細(xì)胞凋亡,導(dǎo)致淚液分泌減少,淚膜穩(wěn)定性下降,角膜熒光染色上升,從而誘發(fā)干眼[7]。經(jīng)針刺干預(yù)后,針刺組干眼豚鼠角膜染色評(píng)分下降、淚膜破裂時(shí)間延長(zhǎng)、淚液分泌量增多,淚腺組織中IL-4、TNF-α 和IL-10 含量明顯下降,NFκBp65 蛋白相對(duì)表達(dá)量明顯減少,α7nAChR 相對(duì)表達(dá)量明顯增多,表明通過(guò)針刺治療之后,可能存在增加淚腺組織中α7nAChR,下調(diào)NF-κBp65 表達(dá),從而抑制IL-4、TNF-α 和IL-10 等炎癥因子的釋放,緩解干眼癥狀。

        中醫(yī)學(xué)認(rèn)為,干眼屬“白澀癥”“神水將枯”等范疇,基本病理改變以“陰虛內(nèi)熱”為本[8-15]。通過(guò)針刺眼周穴位治療,可起到滋陰清熱,并促進(jìn)眼周經(jīng)絡(luò)氣血循環(huán),從而有效改善干眼不適癥狀[16-18]。在眼周穴位中,太陽(yáng)為經(jīng)外奇穴,主治目疾。《圣惠方》云太陽(yáng)“理風(fēng),赤眼頭痛,目眩澀”;晴明既是足太陽(yáng)經(jīng)穴,又是五脈之會(huì),乃治眼病要穴,可宣泄郁熱,主治目疾;瞳子髎為足少陽(yáng)膽經(jīng)頭面部的第一穴,有祛風(fēng),泄熱,明目之功效;攢竹為膀胱經(jīng)之穴,取之以資調(diào)眼部氣血,滋陰清熱,《銅人》云攢竹“治眼中赤痛及瞼膶動(dòng)”;絲竹空為手少陽(yáng)之穴,主目赤腫痛。因此,將以上各穴聯(lián)用,可共奏滋陰清熱的功效。本研究發(fā)現(xiàn),針刺眼周穴位,能夠起到較好的滋陰清熱及促進(jìn)眼周氣血循環(huán),從而有效改善干眼癥狀。

        綜上,本研究基于NF-κB 信號(hào)通路,初步探討了關(guān)于針刺對(duì)干眼動(dòng)物淚腺組織中炎癥因子的調(diào)控機(jī)制。但本研究同樣存在其局限性和不足,如樣本量較小等,而這些也有待日后進(jìn)一步完善和改進(jìn)。

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