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        miR-182-5p和自噬在外周血單個核細(xì)胞和THP-1細(xì)胞痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎模型炎癥反應(yīng)中的研究

        2021-10-22 10:22:40黃玉琴謝艷李濤黃倩青玉鳳鄭建雄張全波
        關(guān)鍵詞:水平

        黃玉琴,謝艷,李濤,黃倩,青玉鳳,鄭建雄,4,張全波

        (川北醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院,1.高尿酸血癥與痛風(fēng)研究所;2.老年科;3.風(fēng)濕免疫科;4.川北醫(yī)學(xué)院臨床醫(yī)學(xué)系;5.儀隴縣人民醫(yī)院,四川 南充 637000)

        痛風(fēng)是機體持續(xù)高尿酸水平和尿酸鹽(monosodium urate,MSU)晶體析出并沉積于關(guān)節(jié)、肌腱和/或其他組織器官中而引起組織損傷的一組臨床綜合征。急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎(acute gout,AG)是MSU晶體沉積在骨關(guān)節(jié)、皮下及軟組織中引起的急性和極度疼痛的一種嚴(yán)重表型炎癥反應(yīng)。研究證實,痛風(fēng)的急性炎癥反應(yīng)與Toll樣受體(Toll like receptor,TLR)4-核因子(nuclear fator,NF)-κB信號通路被激活,促進(jìn)白細(xì)胞介素(IL)-1β等炎癥因子釋放密切相關(guān)[1]。自噬是一個進(jìn)化保守的,通過包繞隔離細(xì)胞質(zhì)成分,包括受損的或功能減退的細(xì)胞器及錯誤折疊的蛋白質(zhì)及大分子物質(zhì),并與溶酶體融合水解膜內(nèi)成分的現(xiàn)象[2]。研究[3]發(fā)現(xiàn)原發(fā)性急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎患者自噬通量增加、自噬被激活,提示自噬在調(diào)控痛風(fēng)患者炎癥反應(yīng)過程中具有重要意義。

        MiRNAs是一個短的、小的、非編碼RNAs家族。近年來研究發(fā)現(xiàn),miRNA可作為一種競爭性內(nèi)源性RNA(competing endogenous RNA,ceRNA)與LncRNA相互作用,參與靶基因的表達(dá)調(diào)控,并在多種疾病的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要的作用[4]。最近,miR-182在各種炎癥性疾病中被發(fā)現(xiàn)。如miR-182-5p通過調(diào)節(jié)TLR4/NF-κB信號通路來抑制脂多糖誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞的炎癥反應(yīng)[5],通過靶向TLR4抑制氧化低密度脂蛋白誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激[6]。在小鼠關(guān)節(jié)炎模型中,使用miR-182拮抗劑可顯著降低炎癥和組織破壞的組織學(xué)評分[7]。然而,miR-182-5p在痛風(fēng)中的作用仍然鮮為人知。綜合數(shù)據(jù)庫和芯片分析的結(jié)果,本研究通過對急性期痛風(fēng)患者、間歇期痛風(fēng)患者及健康對照者(各5例)的PBMCs全基因組表達(dá)芯片分析挑選出差異最顯著的miR-182-5p,再挑選出具有miR-182-5p識別序列的linc00173和linc00963,擬通過模擬體內(nèi)痛風(fēng)發(fā)作過程,探討miR-182-5p與自噬及痛風(fēng)關(guān)節(jié)炎可能存在的關(guān)聯(lián)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 主要儀器及試劑 LightCycler?96 PCR儀(Roche公司,瑞士),人淋巴細(xì)胞分離液(天津灝洋生物公司),反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara公司,日本),實時熒光定量PCR試劑盒(Takara公司,日本),Trizol提取總RNA試劑盒(Invitrogen公司,美國),低溫高速離心機5417R(Eppendrof公司,美國),紫外分光光度儀(Thermo fisher公司,美國),RPMI培養(yǎng)基(Thermo公司,美國),胎牛血清(浙江天杭生物,中國),人白介素1β檢測試劑盒(USCN公司,中國),GAPDH rabbit mAb(美國Cell Signaling公司),LC3-2 rabbit mAb(美國Cell Signaling公司),IL-1β rabbit mAb(美國Cell Signaling公司),miR-182-5p primer(美國GeneCopoeia公司),U6內(nèi)參(美國GeneCopoeia公司),All-in-one TM miRNA qRT-PCR Detection Kit(美國GeneCopoeia公司),GAPDH內(nèi)參及自噬相關(guān)基因引物(上海生工生物工程有限公司,中國)。

        1.1.2 引物設(shè)計及合成 根據(jù)相關(guān)基因的CDS序列,基因引物由上海生工生物工程公司設(shè)計及合成,基因序列。見表1。

        表1 引物序列

        1.2 方法

        1.2.1 MSU刺激健康男性外周靜脈血 抽取5例健康男性外周靜脈血24 mL(4 mL/管),肝素鈉抗凝,使用濃度為100 μg/mL MSU刺激后置于含5 % CO2的37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育,按照0、1、2、4、6、8 h不同時間點分離血漿及提取外周血單個核細(xì)胞(peripheral lood mononuclear cells,PBMCs)進(jìn)行下一步實驗。

        1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng) 人髓系白血病單核細(xì)胞(THP-1)購自于American Type Culture Collection,用含10 %胎牛血清的RPMI培養(yǎng)基培養(yǎng),置于37℃ 5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),視細(xì)胞生長情況24~48 h更換培養(yǎng)基,當(dāng)細(xì)胞生長于培養(yǎng)皿中密度達(dá)到70~80 %時,1 200 rpm離心5 min后棄去上清液,將重懸細(xì)胞按1∶3的體積比傳代。

        1.2.3 THP-1細(xì)胞痛風(fēng)炎癥造模 將THP-1細(xì)胞接種于6 cm培養(yǎng)皿內(nèi)(細(xì)胞約3.6×106個/皿),待細(xì)胞融合至70~80 %時,用100 ng/mL佛波脂(37℃、5 % CO2培養(yǎng)48 h)誘導(dǎo)THP-1細(xì)胞成為貼壁的巨噬細(xì)胞。待細(xì)胞貼壁后棄培養(yǎng)基,加入新的含有100 μg/mL MSU的培養(yǎng)基并置于含5 % CO2的37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育0、3、6、9、12 h后,收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液500 μL,3 000 rpm離心10 min,留上清,棄沉淀。培養(yǎng)皿細(xì)胞用PBS液清洗3次,3 min/次,清除MSU后得巨噬細(xì)胞進(jìn)行下一步實驗。

        1.2.4 RNA的提取及檢測 采用Trizol法提取PBMC/THP-1細(xì)胞中總RNA,紫外分光光度儀測定RNA濃度,選取吸光度為1.8~2.0用于反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。RT-qPCR總體積為20 μL。反應(yīng)體系:10 μL Power SYBR Green PCR Master Mix,7.4 μL去離子水,正向及反向引物各0.3 μL,2 μL cDNA。反應(yīng)條件為:第一步:95℃ 30 s 1個循環(huán)→95℃ 5 s→60℃ 34 s 40個循環(huán)。第二步:95℃ 5 s→60℃ 60 s→95℃ 15 s 1個循環(huán)。每份標(biāo)本均設(shè)2個復(fù)孔,反應(yīng)結(jié)束后作溶解曲線。以目的基因的Ct值減去內(nèi)參的Ct值為△Ct,2-△△Ct值表示目的基因mRNA表達(dá)的高低。采用All-in-one試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄miR-182-5p為cDNA,以U6為內(nèi)參。PCR反應(yīng)體系:2×All-in-one qPCR Mix 10 μL,All-in-one TM qPCR Primer(2 μM)2 μL,Universal Adaptor PCR Primer 2 μL,RNase free water 4.0 μL,F(xiàn)irst-stand cDNA 2.0 μL,將上述20 μL反應(yīng)體系加入96孔PCR板中。在LightCycler?96 PCR儀上按照95℃預(yù)變性10 min 1個循環(huán);變性95℃10 min,退火60℃ 20 min,延伸72℃ 1 min,共45個循環(huán)。U6作為內(nèi)參照,△Ct=(目的基因-內(nèi)參對照U6)的Ct值。目的基因序列相對表達(dá)量用2-△△Ct表示。

        1.2.5 酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA法)檢測THP-1培養(yǎng)基中及人上清液IL-1β蛋白濃度 按照USCN公司生產(chǎn)的人IL-1β酶ELISA試劑盒說明書使用,A值用SPSS軟件繪出標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算各樣本的值。

        1.2.6 蛋白免疫印記法(Western Blot)MSU刺激THP-1和PBMC細(xì)胞后的LC3、IL-1β蛋白水平的表達(dá) 向THP-1和PBMC細(xì)胞中加入含有1 % PMSF的RIPA(強效)裂解液,取上清液,用BCA法進(jìn)行蛋白定量。嚴(yán)格按照Western Blot方法操作,ELC顯色。用Image J軟件對圖片中條帶的灰度值進(jìn)行分化計算目的基因蛋白條帶與GAPDH蛋白條帶灰度值的相對比值,各組實驗重復(fù)5次。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

        2 結(jié)果

        2.1 MSU刺激健康男性外周血PBMCs

        2.1.1 MSU刺激后不同時間點IL-1β表達(dá)水平比較 經(jīng)MSU刺激0、1、2、4、6、8 h后,6組IL-1β mRNA表達(dá)水平、IL-1β蛋白濃度及IL-1β蛋白表達(dá)水平比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(F=88.559、351.325、51.086,P<0.001),且1、2、4、6、8 h IL-1β mRNA水平均高于0 h(P<0.05),1、2、4、6 h IL-1Β蛋白濃度均高于0 h(P<0.01),2、4、6、8 h IL-1β蛋白表達(dá)水平均高于0 h(P<0.05)。見表2。

        表2 MSU刺激后不同時間點IL-1β表達(dá)水平比較

        2.1.2 MSU刺激后不同時間點linc00173、linc00963、miR-182-5p及LC3-2 mRNA表達(dá)水平比較 經(jīng)MSU刺激0、1、2、4、6、8 h后,6組linc00173、linc00963、miR-182-5p及LC3-2 mRNA表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=16.985、40.858、3.676、12.547,P<0.05),且1、2、4 h linc00173水平高于0 h(P<0.05),1、2 h linc00963水平高于0 h(P<0.01),8 h miR-182-5p水平高于0 h(P<0.05),4、6、8 h LC3-2 mRNA表達(dá)水平高于0 h(P<0.05)。見表3。

        表3 MSU刺激后不同時間點linc00173、linc00963、miR-182-5p及LC3-2表達(dá)水平比較

        2.1.3 MSU刺激后不同時間LC3-2蛋白表達(dá)水平比較 經(jīng)MSU刺激0、1、2、4、6、8 h后,6組LC3-2蛋白表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=6.643,P<0.05),且6、8 h表達(dá)水平高于0 h(P<0.01)。見表4及圖1。

        表4 MSU刺激后不同時間點LC3-2蛋白表達(dá)水平比較

        2.2 MSU刺激THP-1細(xì)胞

        2.2.1 MSU刺激后不同時間IL-1β表達(dá)水平比較 經(jīng)MSU刺激0、3、6、9、12 h后,5組IL-1β mRNA表達(dá)水平、IL-1β蛋白濃度及IL-1β蛋白表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=14.792、54.072、7.806,P<0.01),且3、6、9、12 h IL-1β mRNA水平及IL-1β蛋白濃度高于0 h(P<0.05),9、12 h IL-1β蛋白水平高于0 h(P<0.01)。見表5。

        表5 MSU刺激后不同時間點IL-1β表達(dá)水平的比較

        2.2.2 MSU刺激后不同時間linc00173、linc00963、miR-182-5p及LC3-2 mRNA表達(dá)水平比較 經(jīng)MSU刺激0、3、6、9、12 h后,5組linc00173、miR-182-5p及LC3-2表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=4.084、2.885、21.173,P<0.05,),且9、12 h linc00173水平高于0 h(P<0.05),6 h miR-182-5p低于0 h(P<0.05),6、9、12 h LC3-2 mRNA水平高于0 h(P<0.01);5組linc00963表達(dá)水平比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(F=0.904,P=0.477)。見表6。

        表6 MSU刺激后不同時間點linc00173、linc00963、miR-182-5p及LC3-2表達(dá)水平比較

        2.2.3 MSU刺激后不同時間LC3-2蛋白表達(dá)水平 經(jīng)MSU刺激0、3、6、9、12 h后,5組LC3-2蛋白表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=4.157,P<0.05)。見表7及圖2。

        表7 MSU刺激后不同時間點LC3-2蛋白表達(dá)水平比較

        3 討論

        痛風(fēng)是由于體內(nèi)嘌呤代謝異常和/或尿酸排泄異常導(dǎo)致的,當(dāng)尿酸超過血液飽和濃度并沉積在關(guān)節(jié)滑液中形成MSU時,會誘發(fā)急性關(guān)節(jié)炎發(fā)作。急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎是由免疫細(xì)胞和MSU之間的相互作用引起的炎性反應(yīng)[8]。痛風(fēng)發(fā)作的機制尚未完全了解,但普遍認(rèn)為中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞在其中起著至關(guān)重要的作用。MSU刺激巨噬細(xì)胞表面的TLR激活NF-κB信號通路產(chǎn)生炎癥小體,然后,MSU通過促進(jìn)細(xì)胞內(nèi)K+外排激活NLRP3炎性體從而誘導(dǎo)IL-1β的產(chǎn)生[9]。然而,自噬可降低NLRP3的蛋白表達(dá)減慢炎癥反應(yīng)[10],自噬的喪失激活炎癥小體介導(dǎo)的IL-1β分泌[11],表明自噬具有抑制炎癥的能力。近年來,隨著對非編碼RNA的深入研究發(fā)現(xiàn)占轉(zhuǎn)錄組98%的非編碼RNA的突變可能是導(dǎo)致疾病發(fā)生的“罪魁禍?zhǔn)住?,甚至可能是某些疾病臨床預(yù)后的標(biāo)記分子。研究[12]表明,miR-182-5p與自噬相關(guān)基因相互作用參與疾病發(fā)展。中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞在痛風(fēng)的發(fā)生中起重要作用,可能通過miR-182-5p介導(dǎo)痛風(fēng)的炎癥過程。

        本研究發(fā)現(xiàn),MSU刺激健康男性PBMCs后,經(jīng)RT-qRCR、Elisa、Western blot檢測發(fā)現(xiàn),IL-1β在不同時間點都有所升高,且隨著刺激時間的延長有下降趨勢,提示MSU已經(jīng)誘導(dǎo)出炎癥,且可能存在負(fù)反饋調(diào)節(jié)。miR-182-5p在8 h明顯升高,linc00173和linc00963均在2 h達(dá)到最大值,隨后下降,表明miR-182-5p可能參與了痛風(fēng)炎癥的調(diào)節(jié),在痛風(fēng)模型中下調(diào)IL-1β mRNA水平的同時還下調(diào)了linc00173和linc00963的表達(dá),但具體調(diào)控機制不詳。miR-182是miR-183簇的一員,在多種疾病中發(fā)揮重要作用和影響,如miR-182間皮瘤通過靶向叉頭盒O1(Forkhead box O1,FOXO1)增殖和侵襲[13]。miR-182通過調(diào)節(jié)FOXO3增加非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞的抗輻射性[14]。miR-182-5p是酒精性肝炎中表達(dá)最高的miRNA,miR-182-5p的過度表達(dá)導(dǎo)致膽汁細(xì)胞中炎癥介質(zhì)的上調(diào)[15]。

        先天免疫途徑在痛風(fēng)的發(fā)病機制中起著關(guān)鍵作用,尤其是NLRP3型炎癥小體的激活,導(dǎo)致IL-1β和其他促炎細(xì)胞因子的釋放。然而,自噬參與了NLRP3的降解。自噬通過抑制NLRP3炎癥小體減輕線粒體潮濕所致的急性肺損傷[16]。紫甘薯色素通過增強細(xì)胞自噬減弱了NLRP3炎癥小體的活性,最終延緩了內(nèi)皮細(xì)胞的衰老,從而改善了心血管并發(fā)癥[17]。研究發(fā)現(xiàn),miR-182-5p過表達(dá)增加了促炎基因誘導(dǎo),啟動了巨噬細(xì)胞增加自噬[18]。本研究觀察到,LC3-2 mRNA和蛋白隨著刺激時間的延長有所增加,提示自噬可能參與抑制MSU誘導(dǎo)的致炎因子的釋放,并可能受miR-182-5p的調(diào)節(jié),可能是痛風(fēng)患者自發(fā)緩解的機制。

        Hu等[19]發(fā)現(xiàn),lncRNA ANRIL通過ceRNA機制與miRNA-122-5p結(jié)合從而激活NLRP3炎性體并加速尿酸誘導(dǎo)的炎癥的發(fā)展。本研究首先確定了linc00173、linc00963、miR-122-5p和自噬與痛風(fēng)相關(guān)。盡管沒有清楚地證明它們在痛風(fēng)中存在ceRNA機制,但大量研究表明miRNA可以與lnRNA或mRNA相互作用。因此,可以合理假設(shè)ceRNA的機制可能在痛風(fēng)中發(fā)生。首先,綜合數(shù)據(jù)庫和芯片分析的結(jié)果,挑選出了痛風(fēng)患者中差異最顯著的miR-182-5p,在挑選出具有miR-182-5p識別序列的linc00173和linc00963。其次,通過功能學(xué)細(xì)胞實驗進(jìn)一步證實了它們在痛風(fēng)中確實存在差異表達(dá)。這也是本小組未來要重點研究的內(nèi)容。

        此外,通過比較THP-1細(xì)胞經(jīng)MSU刺激后上述指標(biāo)的變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn),miR-182-5p、linc00173、linc00963和LC3-2 mRNA都出現(xiàn)了不同的改變。雖然和健康男性MSU刺激結(jié)果變化趨勢不完全一致,但更進(jìn)一步說明痛風(fēng)患者ncRNA和自噬存在異常,其在痛風(fēng)炎癥反應(yīng)過程中發(fā)揮了重要的作用。而變化趨勢不一致可能為THP-1為懸浮單核細(xì)胞,誘導(dǎo)為巨噬細(xì)胞需要佛波酯的干預(yù),佛波酯對細(xì)胞存在一定毒性作用;THP-1長期體外培養(yǎng)可能改變細(xì)胞活力。

        綜上,miR-182-5p及自噬在痛風(fēng)中起著重要作用,可能作為痛風(fēng)關(guān)鍵病理過程的中央調(diào)節(jié)劑,用于痛風(fēng)的診斷、治療及預(yù)測臨床結(jié)局,但目前尚不清楚其在痛風(fēng)的發(fā)生及自發(fā)緩解中的具體機制,miR-182-5p和自噬的特定作用仍然需要大量挖掘。

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