劉世鋒 羅玉霜 劉佩琳 康信聰 王蕾伍 睿宇 劉東波
摘 要:目的:通過人體腸道微生物生態(tài)模擬系統(tǒng)(SHIME),探究黃芩提取物對人體腸道菌群中的厭氧菌菌群豐度和短鏈脂肪酸(SCFA)的影響。方法:采用體外模擬系統(tǒng)模擬人體腸道微生態(tài)。大腸模擬罐中接種人體糞便樣本,待糞便中的微生物維持穩(wěn)定后,添加黃芩提取物(3.2 g/d)連續(xù)干預(yù)7 d,使用平板計數(shù)法分析模擬系統(tǒng)中的總厭氧菌及乳酸菌的菌群豐度變化,分別使用腦心浸液培養(yǎng)基(BHI)、MRS培養(yǎng)基(MRS)接種菌液,并在厭氧箱中倒置培養(yǎng)48 h。使用氣相色譜分析黃芩提取物干預(yù)前后的腸道菌群代謝產(chǎn)物SCFA(乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸、異戊酸、戊酸、異己酸和己酸)的含量變化。結(jié)果:與第6天取樣結(jié)果相比,第14天的取樣結(jié)果黃芩提取物增加了乳酸菌在內(nèi)的厭氧菌菌群豐度。SCFA中的丁酸含量顯著上升(P<0.01),而異戊酸含量顯著下降(P<0.01)。乙酸沒有顯著差異。結(jié)論:黃芩提取物可能通過改善乳酸菌及總厭氧菌的菌群豐度,提高丁酸含量,達到治療腸道疾病的功效,為中草藥黃芩提取物的體內(nèi)研究奠定基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞:人體微生物生態(tài)系統(tǒng)模擬器;黃芩提取物;腸道菌群;短鏈脂肪酸
腸道菌群與宿主相互依存、共同進化,在維持機體免疫和代謝穩(wěn)態(tài)以及抵御病原體方面發(fā)揮著至關(guān)重要的作用[1]。腸道菌群組成的改變(生態(tài)失調(diào))與肥胖、糖尿病以及心腦血管等疾病的發(fā)生密切相關(guān)[2]。短鏈脂肪酸(SCFA)是人體腸道菌群代謝的主要終產(chǎn)物,主要由厭氧微生物發(fā)酵難消化的碳水化合物產(chǎn)生。SCFA包括乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸、異戊酸、戊酸、異己酸和己酸等,其中乙酸、丙酸、丁酸占比最高,達到總SCFA的90%以上。SCFA可以降低結(jié)腸內(nèi) pH 值,提高其酸性環(huán)境從而抑制有害菌的生長;維持水電解質(zhì)平衡[3];抑制組蛋白去乙?;负图せ頖蛋白偶聯(lián)受體GPR41、GPR43和GPR109α[4],調(diào)節(jié)腸道、神經(jīng)、內(nèi)分泌和血液等不同系統(tǒng)的功能,成為調(diào)節(jié)代謝紊亂和免疫的關(guān)鍵因子。另外,SCFA還可以通過激活核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)來抑制細胞因子的產(chǎn)生(如IL-6、IL-8、IL-1β、TNF-α)[5]從而減少炎癥反應(yīng)的發(fā)生;炎癥過程中,SCFA通過激活GPR43[6],調(diào)節(jié)中性粒細胞產(chǎn)生活性氧和吞噬作用來刺激中性粒細胞遷移[7],從而促進粘膜炎癥的修復(fù),降低結(jié)腸病變的發(fā)生。因此,越來越多的證據(jù)支持SCFA在形成局部和外周免疫系統(tǒng)中發(fā)揮了關(guān)鍵作用,并通過炎癥途徑影響宿主的代謝。
現(xiàn)代藥理學研究發(fā)現(xiàn),黃芩具有抗炎、抑菌、抗病毒、抗抑郁等作用[8]。劉曉曦等[9]研究發(fā)現(xiàn),黃芩水提液可以緩解腸炎小鼠的炎癥反應(yīng)來促進腸道的損傷修復(fù)。然而,目前針對人體腸道菌群的干預(yù)研究尚欠缺。人體腸道微生物生態(tài)模擬系統(tǒng)(SHIME ),是由比利時根特大學Verstraete研制出來的一套包含胃、小腸以及大腸的完整模擬消化系統(tǒng)。SHIME系統(tǒng)的設(shè)計著重于模擬結(jié)腸微生物群落,因其穩(wěn)定性好、采集樣品方便、節(jié)省時間等優(yōu)點,是研究體外胃腸道不同部位營養(yǎng)對腸道菌群組成影響的有效工具[10]。本研究應(yīng)用SHIME模擬人體胃腸道系統(tǒng),通過使用黃芩提取物對模擬腸道微生態(tài)進行干預(yù),對系統(tǒng)產(chǎn)出的消化液進行檢測與分析,分析黃芩水提物對腸道菌群及其代謝產(chǎn)物SCFA的影響,探究黃芩對預(yù)防與治療腸道炎癥的作用機理。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 儀器 LABOROTA 4001旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,德國Heidolph公司;XS205十萬分之一分析天平,德國METTLER TOLEDO公司;PL403分析天平,METTLER TOLEDO;LDZX-75KBS立式壓力蒸汽滅菌器,上海申安醫(yī)療器械廠;雙列六孔水浴鍋、DHG-9246A型電熱恒溫鼓風干燥箱,上海精宏實驗設(shè)備有限公司;冰箱,海爾;KQ-52008超聲波清洗器,昆山美美超聲儀器有限公司;SHIME系統(tǒng),北京佳德精密科技有限公司;YQX-II型厭氧培養(yǎng)箱,金壇區(qū)白塔安瑞實驗儀器廠;SW-CJ-2F型雙人雙面凈化工作臺,蘇州凈化設(shè)備有限公司;PYX-300G-B光照培養(yǎng)箱、QL-901 Vortex渦混儀,海門市其林貝爾儀器制造有限公司;2-16R高速冷凍離心機,湖南恒諾儀器設(shè)備有限公司;GC-2010氣相色譜儀,日本島津公司;RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,上海雅榮生化儀器設(shè)備有限公司。
1.1.2 試劑 黃芩,購自九芝堂股份有限公司長沙店;阿拉伯半乳聚糖、木聚糖、淀粉、葡萄糖、碳酸氫鈉、酵母提取物、蛋白胨、半胱氨酸、吐溫80、氯化鈉、果膠、一水硫酸錳、七水硫酸鐵、七水硫酸鈷、七水硫酸鋅、五水硫酸銅、磷酸氫二鉀、氯化鈣、七水硫酸鎂、血紅素、對-氨基苯甲酸、氯化鈉、胃蛋白酶、36.5%濃鹽酸、氫氧化鈉、胰蛋白酶、硫酸鋁鉀、硼酸、鉬酸鈉、氯化鎳、亞硒酸鈉、生物素、泛酸鹽、煙酰胺、維生素B12、硫胺、甲萘醌、豬膽鹽、碳酸氫鈉、PBS固體粉末、無菌蒸餾水。
標準品:乙酸、丙酸、異丁酸、正戊酸、異戊酸、己酸、2-乙基丁酸,上海阿拉丁生化科技股份有限公司;正丁酸,上海源葉生物科技有限公司。
1.2 方法
1.2.1 黃芩的處理 稱量85 g黃芩,以10倍量的沸水提取1.5 h,分離料液與殘渣,殘渣再以8倍量的沸水繼續(xù)提取1 h,合并料液,減壓濃縮,再冷凍干燥,得黃芩提取物凍干樣品 28.45 g。
1.2.2 模擬消化方法 系統(tǒng)模擬實驗方法包括系統(tǒng)時間、速度及其他參數(shù)設(shè)定,糞便接種液制備,腸道微生態(tài)的增殖和穩(wěn)定,胃和小腸消化液、營養(yǎng)液制備,以及模擬消化步驟均借鑒于暨南大學邵鑫[11]的試驗方法。為使系統(tǒng)內(nèi)菌群增殖并達到穩(wěn)定狀態(tài),設(shè)定周期內(nèi)的第1~6天為穩(wěn)定期,穩(wěn)定期內(nèi)每日9∶00、15∶00、21∶00 給予260 mL混合營養(yǎng)液。第7~14天為加入黃芩提取物的干預(yù)期,干預(yù)期內(nèi)9∶00的喂料需混入3.2 g黃芩提取物凍干粉,其余操作均與穩(wěn)定期相同。
1.2.3 菌種的培養(yǎng)計數(shù) 每天第1次喂食前對大腸消化液取樣,取樣的樣品分別存放于4 ℃和-80 ℃冰箱。消化液中菌群豐度采用平板菌落計數(shù)法進行菌群數(shù)量的測定,分析總厭氧菌、乳酸菌群落數(shù)量的變化。(1)菌種的培養(yǎng):分別取同一天存儲于4 ℃冰箱的大腸消化液樣品1 mL,用無菌PBS緩沖液進行梯度稀釋??倕捬蹙?、乳酸菌的每個稀釋度分別涂布3個平板,每皿1 mL稀釋樣品,分別做好標記。接種結(jié)束后及時分別將15~20 mL BHI、MRS瓊脂培養(yǎng)基傾注到相應(yīng)標記的每個平板中。其中,總厭氧菌采用BHI瓊脂培養(yǎng)基計數(shù),乳酸菌采用MRS瓊脂培養(yǎng)基計數(shù),將總厭氧菌、乳酸菌轉(zhuǎn)移到厭氧培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)(48±2)h。(2)菌種的計數(shù):培養(yǎng)(48±2)h后,計數(shù)每個平板上的菌落數(shù),計數(shù)時選取菌落數(shù)在30~300 之間的平板(SN標準要求為25~250個菌落),若有二個稀釋度均在30~300 之間時,按國家標準方法要求應(yīng)以二者比值決定,比值≤2取平均數(shù),比值>2則取其較小數(shù)字。在記下各平板的菌落總數(shù)后,求出同稀釋度的各平板平均菌落數(shù),計算出原始樣品每毫升中的菌落數(shù)。到達規(guī)定培養(yǎng)時間,應(yīng)立即計數(shù)。如果不能立即計數(shù),應(yīng)將平板放置于0~4 ℃處儲存,但不得超過24 h。
1.2.4 GC檢測SCFA (1)GC分析條件:DB-FATWAX UI(30 m×0.250 mm×0.25 μm)毛細管色譜柱,載氣為高純氮氣,柱流量1.5 mL/min,升溫程序為:初始溫度70 ℃,保持1 min,以15 ℃/min升至160 ℃,保持6 min,再以30 ℃/min升至210 ℃,保持5 min;進樣口溫度250 ℃,檢測器溫度250 ℃,分流比19∶1,進樣量0.5 μL。(2)標準品溶液制備:對8個SCFA混合標準溶液的制備,稱量乙酸20.9 mg、丙酸20.5 mg、異丁酸9.9 mg、丁酸12.0 mg、異戊酸9.5 mg、戊酸9.2 mg、己酸9.0 mg、2-乙基丁酸9.6 mg,并用含有1%甲酸水定容至10 mL,制成混合標準品母液,分別移取該母液稀釋1、2、5、10、100、500、100倍,配制成不同濃度的混標,用一次性0.45 μm水膜過膜后,在4 ℃冰箱存放備用。(3)樣品溶液制備:取穩(wěn)定期、干預(yù)期最后一天的大腸消化液2 mL至離心管中,加入1%甲酸水,渦混儀上混勻30 s,加入內(nèi)標2-乙基丁酸1 μL,混勻1 min,再以8 000 r/min離心10 min,移取上清液過0.45 μm水膜進行氣相色譜分析。
2 結(jié)果與分析
2.1 黃芩提取物對腸道菌群豐度的影響
2.1.1 總厭氧菌數(shù)量變化 總厭氧菌數(shù)量在前6天的穩(wěn)定期內(nèi)出現(xiàn)波動,但整體仍維持相對穩(wěn)定,從第7天開始進入干預(yù)期后,總厭氧菌的數(shù)量明顯上升,從第9天開始總厭氧菌的數(shù)量基本保持穩(wěn)定,數(shù)量約為109.03~109.07CFU(圖1)。
2.1.2 乳酸菌的數(shù)量變化 穩(wěn)定期內(nèi),乳酸菌的數(shù)量在前3天顯著上升后維持基本穩(wěn)定,從第7天進入干預(yù)期開始,乳酸菌的數(shù)量增至最大,并在維持期內(nèi)基本保持穩(wěn)定,數(shù)量約為106.78~106.90CFU(圖2)。
3 短鏈脂肪酸含量變化分析
取SHIME運行周期中穩(wěn)定期、干預(yù)期最后一天的大腸消化液,對其中的7種SCFA(乙酸、丙酸、正丁酸、異丁酸、正戊酸、異戊酸、己酸)含量進行檢測分析。如圖3所示,消化液中的SCFA以乙酸、丙酸、丁酸為主,占總含量的96.76%。經(jīng)黃芩提取物干預(yù)后,大腸中的丁酸含量上升了650.57%,為0.48 mg/mL;異戊酸含量下降了84.60%,為0.004 mg/mL;其余組分含量的變化不呈現(xiàn)顯著性差異。
4 討論
SHIME系統(tǒng)是基于人體體內(nèi)消化環(huán)境而建立起的人體體外消化模型,可預(yù)測食物、藥物在人體內(nèi)的消化代謝,研究和理解營養(yǎng)物質(zhì)、藥物和非營養(yǎng)化合物的變化、相互作用以及生物可及性[12]。本研究參考邵鑫[11]的試驗方法,建立胃腸道消化模擬系統(tǒng),并參照《藥典》記錄的黃芩推薦單日攝入量,給予系統(tǒng)等當量的黃芩提取物進行混合干預(yù),旨在探究黃芩提取物對人體胃腸道消化系統(tǒng)中厭氧菌及菌群產(chǎn)物-短鏈脂肪酸的影響。
本研究結(jié)果表明,黃芩提取物增加了大腸發(fā)酵罐中總厭氧菌及乳酸菌的豐度,并促進了丁酸的產(chǎn)生。厭氧菌包含了普拉梭菌(Faecalibacterium prausnitzii)、直腸真桿菌(Eubacterium rectale)、霍氏真桿菌(Eubacterium hallii)、布氏瘤胃球菌(Ruminococcus bromii)等菌屬,這些菌屬可產(chǎn)生大部分的丁酸[13]。丁酸鹽不僅可以抑制NF-κB,激活巨噬細胞,而且能夠抑制組蛋白去乙?;富钚裕℉DAC)[14],產(chǎn)生抗炎作用。乳酸菌是腸道內(nèi)不同于革蘭氏陽性菌的一類細菌的統(tǒng)稱,乳酸菌可以通過分泌各種代謝產(chǎn)物及細菌素抑制腸內(nèi)腐敗菌的生長,或與腸內(nèi)致病菌群競爭消化道附著位點和營養(yǎng)等從而維持腸內(nèi)的菌群微生態(tài)平衡[15]。本研究發(fā)現(xiàn),黃芩提取物干預(yù)后乳酸菌豐度顯著上升。因此,黃芩常用于治療腸道疾病可能與其增加大腸內(nèi)乳酸菌、丁酸產(chǎn)生菌的豐度,以及提高丁酸含量有關(guān)。
蛋白質(zhì)發(fā)酵可產(chǎn)生支鏈脂肪酸,如分別來自于支鏈氨基酸纈氨酸、異亮氨酸和亮氨酸的異丁酸、2-甲基丁酸和異戊酸酯[16]。異戊酸可以通過抑制Na+/K+-ATPase9(一種維持正常神經(jīng)傳遞所必需的基礎(chǔ)電位膜的關(guān)鍵酶)[17],減少AMPA受體中GluR2亞基的比例,進而減少Na+流入,最終導致抑郁癥的發(fā)生。有研究發(fā)現(xiàn),黃芩苷能通過影響AMPA受體的表達,起到抗抑郁的作用[18];前期試驗表明,黃芩苷是黃芩提取物中的主要成分,在本試驗干預(yù)期內(nèi)異戊酸產(chǎn)出量顯著降低,推測黃芩提取物可能通過抑制異戊酸的合成,進而上調(diào)AMPA受體的表達,發(fā)揮其抗抑郁作用。
本研究建立了黃芩提取物-腸道菌群-丁酸功能軸,從腸道微生物及代謝產(chǎn)物的角度闡述了中藥黃芩干預(yù)腸道生態(tài)的基本機制。未來本課題組將使用糖尿病人的腸道菌群進行下一步試驗,本研究為進一步開展黃芩提取物的人群試驗奠定基礎(chǔ)。
參考文獻
[1]Dupont H,Jiang Z,Dupont A,et al.The intestinal microbiome in human health and disease [J].Transactions of the American Clinical and Climatological Association,2020,131:178-197.
[2]Zackular J,Baxter N,Iverson K,et al.The gut microbiome modulates colon tumorigenesis [J].Mbio,2013,4(6):e00692-13.
[3]Morrison D,Preston T.Formation of short chain fatty acids by the gut microbiota and their impact on human metabolism [J].Gut Microbes,2016,7(3):189-200.
[4]Bhutia Y,Ganapathy V.Short,but smart:SCFA train T cells in the gut to fight autoimmunity in the brain [J].Immunity,2015,43(4):629-631.
[5]Lin M,de Zoete M,van Putten J,et al.Redirection of epithelial immune responses by short-chain fatty acids through inhibition of histone deacetylases [J].Frontiers in Immunology,2015,6:554.
[6]Vinolo M,Rodrigues H,Hatanaka E,et al.Short-chain fatty acids stimulate the migration of neutrophils to inflammatory sites [J].Clinical Science (London,England:1979),2009,117(9):331-338.
[7]Vinolo M,Hatanaka E,Lambertucci R,et al.Effects of short chain fatty acids on effector mechanisms of neutrophils [J].Cell Biochemistry and Function,2009,27(1):48-55.
[8]Yoon S,Lee Y,Park S,et al.Anti-inflammatory effects of Scutellaria baicalensis water extract on LPS-activated RAW 264.7 macrophages [J].Journal of Ethnopharmacology,2009,125(2):286-290.
[9]劉曉曦,董杰,李敏霞,等.黃芩水提液對腸炎模型小鼠空腸損傷修復(fù)的作用 [J].畜牧獸醫(yī)學報,2020,51(2):392-398.
[10]Wu R,Tang X,Kang X,et al.Effect of a Chinese medical nutrition therapy diet on gut microbiota and short chain fatty acids in the simulator of the human intestinal microbial ecosystem (SHIME)[J].Journal of Functional Foods,2019,62:103555.
[11]邵鑫.人體胃腸道微生態(tài)消化模擬系統(tǒng)的構(gòu)建及其穩(wěn)定性評估 [D].廣州:暨南大學,2016.
[12]Lucas-González R,Viuda-Martos M,Pérez-Alvarez J,et al.In vitro digestion models suitable for foods:Opportunities for new fields of application and challenges [J].Food Research International (Ottawa,Ont),2018,107:423-436.
[13]Louis P,Young P,Holtrop G,et al.Diversity of human colonic butyrate-producing bacteria revealed by analysis of the butyryl-CoA:acetate CoA-transferase gene [J].Environmental Microbiology,2010,12(2):304-314.
[14]Akimova T,Beier U,Liu Y,et al.Histone/protein deacetylases and T-cell immune responses [J].Blood,2012,119(11):2443-2451.
[15]Vinderola G,Matar C,Perdigon G.Role of intestinal epithelial cells in immune effects mediated by gram-positive probiotic bacteria:involvement of toll-like receptors [J].Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology,2005,12(9):1075-1084.
[16]Smith E,Macfarlane G.Dissimilatory amino acid metabolism in human colonic bacteria [J].Anaerobe,1997,3(5):327-337.
[17]Ribeiro C,Leipnitz G,Amaral A,et al.Creatine administration prevents Na+,K+-ATPase inhibition induced by intracerebroventricular administration of isovaleric acid in cerebral cortex of young rats [J].Brain Research,2009,1262:81-88.
[18]Yu H,Yin Z,Yang S,et al.Baicalin reverse AMPA receptor expression and neuron apoptosis in chronic unpredictable mild stress rats [J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2014,451(4):467-472.