王偉軒，李爽，陳松，曹福源，張學彥，張洋，龐淑蘭，張艷淑，

華北理工大學 a.公共衛(wèi)生學院 b.實驗動物中心，河北 唐山 063210

中國是世界鉛生產(chǎn)和消費大國，長期慢性鉛暴露可導致神經(jīng)炎癥，腦組織中促炎因子腫瘤壞死因 子-α（tumor necrosis factor-α，TNF-α）、白介素-6（interleukin-6，IL-6）、白介素-1β（interleukin-1β，IL-1β）等表達升高，引起學習記憶等能力缺陷或下降［1-2］。此外，日常生活中革蘭氏陰性菌感染比較廣泛，如食物污染、水源污染等。革蘭氏陰性菌感染導致的疾病與其釋放的內毒素脂多糖（lipopolysaccharide，LPS）密切相關。研究顯示脂多糖也可引起神經(jīng)炎癥［3-4］，然而，環(huán)境中鉛和LPS 共同暴露是否可以導致神經(jīng)炎癥加劇還未見報道。

神經(jīng)炎癥的重要標志之一是小膠質細胞過度活化。小膠質細胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中固有免疫細胞，參與大腦發(fā)育、神經(jīng)環(huán)境維持、損傷反應和修復。研究顯示小膠質細胞具有兩種明顯不同的極化方式：一是經(jīng)典激活途徑，即M1 表型，釋放TNF-α、IL-6、IL-1β等，促進誘導型一氧化氮合酶（induced nitric oxide synthase，iNOS）、NADPH 氧化酶2（NADPH oxidase 2，NOX2）、趨化因子受體7（chemokine receptor 7，CCR7）等高表達，加重炎癥反應，破壞血腦屏障，促進神經(jīng)元死亡；二是替代激活途徑，即M2 表型，釋放轉化生長因子-β（transforming growth factor-β，TGF-β）、白介素-10（interleukin-10，IL-10）等，并高表達精氨酸-1（arginase 1，Arg-1）、趨化因子受體2（chemokine receptor 2，CCR2）等，抑制炎癥反應、促進神經(jīng)修復、保護神經(jīng)元［5-6］。小膠質細胞活化過程中，髓樣細胞觸發(fā)受體2（triggering receptor expressed on myeloid cells 2，TREM2）可參與其過程且主要在小膠質細胞膜上特異表達［7］，可通過促進小膠質細胞向M2 表型轉化，從而維持腦環(huán)境穩(wěn)定，參與阿茲海默癥、帕金森病等神經(jīng)退行性病變［8-9］。TREM2 的表達變化可受微小RNA（microRNAs，miRNAs）的調控，有研究顯示，微小RNA-34a（microRNA-34a，miR-34a）靶向TREM2mRNA 3’非翻譯區(qū)，并顯著下調小膠質細胞中TREM2的表達［10］。然而，miR-34a在鉛和LPS 聯(lián)合暴露小鼠皮質中的變化未見報道。

本研究通過建立鉛和LPS 聯(lián)合暴露小鼠模型，探討鉛和LPS 聯(lián)合暴露后皮質中炎癥因子和小膠質細胞M1、M2 標志物及TREM2 和miR-34a表達的變化，以期為鉛和LPS 聯(lián)合暴露導致的神經(jīng)損傷防治提供理論依據(jù)。

1 對象與方法

1.1 實驗動物分組及處理

SPF 級雄性C57 小鼠64 只，適應性喂養(yǎng)1 周后將小鼠隨機均分為對照組、LPS組、低鉛組、中鉛組、高鉛組、低鉛+LPS組、中鉛+LPS組和高鉛+LPS組，每組8只。鉛染毒劑量為：0.25、0.50、1.00 g·L-1乙酸鉛飲水，共9周，對照組給予等量的雙蒸水。LPS處理方式：在鉛染毒結束前一周，每天腹腔注射一次LPS（250 g·kg-1，以體重計），共7 次，末次注射24 h 后處死動物。小鼠麻醉處死，迅速分離腦組織，并在冰上分離出皮質，-80℃保存?zhèn)溆?。本研究已獲華北理工大學實驗動物倫理委員會批準（審批號：LAEC-NCST-2020082）。

1.2 ELISA法檢測小鼠皮質組織中炎癥因子

采用ELISA 試劑盒（Solarbio，中國），檢測皮質組織中炎癥因子TNF-α、IL-1β 和IL-6 的水平，具體操作步驟嚴格按照試劑盒說明書進行。最低檢出限為31.25 ng·L-1。

1.3 實時熒光定量PCR 法檢測M1、M2 型標志物和TREM2 mRNA、miR-34a 的表達水平

取小鼠皮質30 mg，采用Trizol 法提取總RNA，反轉錄為cDNA，進行實時熒光定量PCR 分析。miR-34a購買于廣州銳博生物科技有限公司。內參基因為U6、β-actin，引物由上海生工生物技術服務有限公司合成，各引物序列見表1。擴增反應條件為：95℃預熱60 s，然后按95℃ 10 s，60℃ 15 s，72℃ 10 s進行50個循環(huán)，最后72℃延伸10 min。

表1 目的基因引物序列Table 1 Primer sequences of target genes

1.4 Western blotting法檢測TREM2、iNOS和Arg-1蛋白表達

將皮質組織充分裂解并研磨，4℃、12 000 r·min-1離心（離心半徑為4 cm）15 min后取上清液，取2 μL樣品放入96孔板，加入18 μL的PBS稀釋，最終體積為20 μL，將200 μL BCA工作液（BCA試劑∶Cu 體積比=50∶1，提前配制，室溫穩(wěn)定2 h）分別加入標準品和樣品孔中，使其充分混勻后于37℃孵育箱孵育30 min。冷卻至室溫后用酶標儀在波長為592 nm 處檢測各孔的光密度（D）值，將96 孔板放進酶標儀，搖板5 s。根據(jù)各孔D值繪制標準曲線，在標準曲線中計算各組樣品蛋白濃度。采用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白（分離膠和濃縮膠體積分數(shù)分別為10.00%和5.00%），轉膜后進行封閉，洗膜，加入TREM2、Arg-1和iNOS 抗體，4℃過夜，洗膜，加二抗37℃孵育2 h，顯影。內參蛋白為β-actin。

1.5 統(tǒng)計學分析

所有數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標準差表示。采用SPSS 23.0軟件進行統(tǒng)計學分析，組間比較采用單因素方差分析，LPS 組、低鉛組、中鉛組和高鉛組與對照組比較，低鉛+LPS 組、中鉛+LPS 組和高鉛+LPS 組與相應劑量的鉛暴露組比較采用LSD-t檢驗。采用析因分析法探討鉛與LPS之間的關系。檢驗水準α=0.05。

2 結果

2.1 炎癥因子TNF-α、IL-1β和IL-6的表達

與對照組相比，LPS 組、中鉛組和高鉛組皮質中TNF-α、IL-1β 和IL-6 表達均升高，低鉛組TNF-α、IL-1β 表達升高（P＜0.05）。與LPS 組相比，中鉛+LPS組和高鉛+LPS 組小鼠皮質中TNF-α、IL-1β 和IL-6 表達增加（P＜0.05）。分別與低鉛組、中鉛組和高鉛組相比，低鉛+LPS組、中鉛+LPS組、高鉛+LPS組的TNF-α、IL-1β 和IL-6 表達均升高。結果見表2。析因分析研究結果顯示，低鉛、中鉛、高鉛與LPS 在TNF-α、IL-1β 和IL-6炎癥因子中均不存在交互作用（P＞0.05）。

表2 鉛和LPS暴露對皮質中炎癥因子的影響（±s，n=8）Table 2 Effects of lead and LPS exposures on inflammatorycytokines in the cortex of mice (±s,n=8) 單位（Unit）：ng·g-1

表2 鉛和LPS暴露對皮質中炎癥因子的影響（±s，n=8）Table 2 Effects of lead and LPS exposures on inflammatorycytokines in the cortex of mice (±s,n=8) 單位（Unit）：ng·g-1

［注］a：與對照組比較，P＜0.05；b：與LPS 組比較，P＜0.05；c：與低鉛組比較，P＜0.05；d：與中鉛組比較，P＜0.05；e：與高鉛組比較，P＜0.05。中鉛組的IL-1β 有2個異常值故剔除。

組別 IL-1β TNF-α IL-6對照組 2.04±0.20 2.41±0.32 1.88±0.09 LPS 組 7.76±0.88a 6.50±0.79a 6.28±0.71a低鉛組 2.80±0.53a 3.15±0.43a 2.11±0.22中鉛組 3.99±0.63a 4.34±0.66a 3.32±0.12a高鉛組 5.65±0.54a 5.98±0.75a 4.97±0.59a低鉛+LPS 組 7.83±0.93c 7.21±1.18c 6.72±1.24c中鉛+LPS 組 8.80±0.95bd 7.82±0.60bd 7.53±0.90bd高鉛+LPS 組 11.18±0.92be 8.79±1.62be 8.66±0.93be

2.2 iNOS、NOX2、CCR7 mRNA變化

與對照組相比，LPS 組、中鉛組和高鉛組小鼠皮質中iNOS、NOX2、CCR7mRNA 表達升高（P＜0.05），低鉛組中NOX2mRNA 表達也增加（P＜0.05）。與LPS 組相比，中鉛+LPS 組和高鉛+LPS 組iNOS、NOX2、CCR7mRNA表達增加。與低鉛組相比，低鉛+LPS組中iNOS、NOX2mRNA 表達未見明顯升高。與中鉛組相比，中鉛+LPS組iNOS、CCR7mRNA表達升高（P＜0.05），NOX2未見明顯變化。與高鉛組相比，高鉛+LPS 組iNOS、NOX2、CCR7mRNA表達均增加。結果見圖1。

圖1 各組小鼠皮質中M1 標志物iNOS（A）、NOX2（B）、CCR7（C） mRNA 表達情況（n=6）Figure 1 Expressions of M1 markers iNOS (A),NOX2 (B),and CCR7 (C) mRNA in the cortex of mice (n=6)

2.3 Arg-1、TGF-β、CCR2 mRNA變化

與對照組相比，低鉛組Arg-1mRNA 表達未見明顯變化，LPS 組、中鉛組和高鉛組Arg-1、TGF-β、CCR2mRNA 表達降低（P＜0.05）。與LPS 組相比，中鉛+LPS組和高鉛+LPS 組中Arg-1mRNA 表達明顯減少。與鉛暴露組相比，鉛和LPS 聯(lián)合暴露組中Arg-1mRNA表達降低最為明顯，未見TGF-β、CCR2mRNA 表達有明顯差異。結果見圖2。

圖2 各組小鼠皮質中M2 標志物Arg-1（A）、TGF-β（B）和CCR2（C）mRNA 表達情況（n=6）Figure 2 Expressions of M2 markers Arg-1 (A),TGF-β (B),and CCR2 (C)mRNA in the cortex of mice (n=6)

2.4 iNOS 和Arg-1蛋白變化

與對照組相比，鉛暴露組iNOS 蛋白表達量升高；與LPS 組、同劑量鉛暴露組相比，LPS 和鉛聯(lián)合暴露組中iNOS 蛋白表達量升高。與對照組相比，LPS 組和鉛暴露組Arg-1蛋白表達降低（P＜0.05）；與LPS組相比，聯(lián)合暴露組Arg-1 蛋白表達降低；與低鉛組相比，低鉛+LPS 組Arg-1蛋白表達明顯減少，中鉛+ LPS組和高鉛+LPS 組差異無統(tǒng)計學意義。結果見圖3。

圖3 各組小鼠皮質中iNOS（A）和Arg-1（B）蛋白表達（n=3）Figure 3 Expressions of iNOS (A) and Arg-1 (B) protein in the cortex of mice (n=3)

2.5 TREM2 mRNA 和蛋白表達

與對照組相比，LPS 組、低鉛組、中鉛組和高鉛組TREM2mRNA 和蛋白表達降低（P＜0.05）。與LPS 組相比，低鉛+LPS、中鉛+LPS 和高鉛+LPS 組TREM2mRNA和蛋白表達降低明顯。分別與低鉛組、中鉛組和高鉛組相比，低鉛+LPS、中鉛+LPS、高鉛+LPS 組TREM2mRNA和蛋白表達減少（P＜0.05）。結果見圖4。

圖4 各組小鼠皮質中TREM2 mRNA（A）和蛋白（B、C）表達Figure 4 Expressions of TREM2 mRNA (A) and protein (B and C)in the cortex of mice in each group

2.6 對皮質中miR-34a 表達的影響

與對照組相比，LPS 組、低鉛組、中鉛組和高鉛組miR-34a表達升高（P＜0.05）。與LPS 組相比，低鉛+LPS 組、中鉛+LPS 組和高鉛+LPS 組miR-34a表達升高1.5倍多。分別與低鉛組、中鉛組和高鉛組相比，低鉛+LPS 組、中鉛+LPS 組和高鉛+LPS 組miR-34a表達增加。結果見圖5。

圖5 各組小鼠皮質中miR-34a 表達情況（n=6）Figure 5 Expressions of miR-34a in the cortex of mice in each group (n=6)

3 討論

中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥以神經(jīng)膠質細胞的異常激活和中樞系統(tǒng)微環(huán)境中炎癥介質的存在為特征。神經(jīng)炎癥的特征為在腦組織中積累大量的炎癥細胞因子TNF-α、IL-1β和IL-6等，這些炎癥因子長期積累在大腦中可引發(fā)神經(jīng)炎癥級聯(lián)反應，進而加速中樞神經(jīng)系統(tǒng)的病變過程。TNF-α在腦組織中過度積累會損傷神經(jīng)元，IL-1β可誘導小膠質細胞的活化，分泌TNF-α 和IL-6 等促炎因子，進一步引發(fā)神經(jīng)炎癥反應，加速腦損傷。本研究結果顯示鉛和LPS單獨暴露后小鼠皮質中炎癥因子TNF-α、IL-1β和IL-6表達均升高。這與胡蒙蒙等［11］研究中LPS暴露后腦組中TNF-α、IL-1β表達升高的結果是一致的。本研究結果還顯示鉛和LPS聯(lián)合暴露后皮質中炎癥因子TNF-α、IL-1β和IL-6表達高于單獨暴露組，提示鉛和LPS聯(lián)合暴露加劇了神經(jīng)炎癥損傷。

小膠質細胞是中樞神經(jīng)炎癥反應的重要招募者和執(zhí)行者。在健康的大腦中，小膠質細胞表現(xiàn)出“穩(wěn)態(tài)”表型，其表達表面分子和分泌可溶性因子影響其他神經(jīng)細胞，促進細胞碎片和聚集蛋白的清除，維持中樞神經(jīng)系統(tǒng)穩(wěn)態(tài)。但外環(huán)境發(fā)生改變時或者刺激反應發(fā)生時，小膠質細胞表型可由穩(wěn)態(tài)（M0）型轉變?yōu)镸1或者M2。在疾病的不同發(fā)展階段，小膠質細胞對外界刺激的反應在炎癥、組織修復、突觸可塑性及神經(jīng)再生中起著不同的作用［12］。在神經(jīng)退行性病變中，小膠質細胞呈M1型，釋放炎癥介質，誘導神經(jīng)元丟失。M1型小膠質細胞增加，可促進神經(jīng)退行性疾病如阿爾茨海默病、帕金森病的發(fā)生發(fā)展［13-14］。有研究顯示鉛和LPS可以引起小膠質細胞活化［2，4］，促進小膠質細胞向M1型極化，釋放出大量炎癥細胞因子、抗炎因子、趨化因子、生長因素等，維持中樞神經(jīng)系統(tǒng)的慢性炎癥［15-16］，本研究結果顯示，中劑量鉛（0.50 g·L-1）和高劑量鉛（1.00 g·L-1） 以及LPS單獨暴露后，M1型標志基因和iNOS蛋白表達增加，而M2 標志基因和Arg-1 蛋白表達下降；這與Li等［17］的研究中LPS處理原代小膠質細胞后呈M1型，iNOS、IL-1β等表達增加的結果一致。而鉛和LPS聯(lián)合暴露與單獨暴露相比，M1型小膠質細胞標志物升高，M2型標志物明顯降低，推測鉛和LPS聯(lián)合暴露加劇了小膠細胞向M1型轉變，進而加劇神經(jīng)炎癥。

小膠質細胞極化受到TREM2 等關鍵蛋白的調控。TREM2 僅表達于小膠質細胞上，且在神經(jīng)退行性病變不同階段發(fā)揮不同作用［18］。有研究顯示TREM2 在M2 型小膠質細胞上表達升高，而在M1 型小膠質細胞上表達降低，且上調TREM2 的表達促進小膠質細胞向M2 型轉變，而下調TREM2 促進小膠質細胞向M1 型轉變。在本研究中，LPS和鉛單獨暴露后，皮質中TREM2mRNA和蛋白表達下降；鉛和LPS聯(lián)合暴露后TREM2表達更加降低。推測在鉛和LPS暴露后TREM2調控小膠質細胞向M1極化，而且鉛和LPS聯(lián)合暴露加劇了極化程度，加速了神經(jīng)炎癥的發(fā)生。這與伍敏［19］的研究中LPS 刺激后TREM2 表達下降，BV-2 細胞M1標志物表達增加一致。TREM2 的表達受到非編碼RNA的調控，本研究中鉛和LPS 單獨暴露可使miR-34a表達量升高，且聯(lián)合暴露后miR-34a表達明顯增加，推測鉛和LPS 暴露后miR-34a增加，從而調控TREM2 的表達下降。這Bhattacharjee 等［20］的研究在老年性黃斑變性中miR-34a靶向TREM2 mRNA 3’非編碼區(qū)，并下調小膠質細胞中TREM2 的發(fā)現(xiàn)一致。

綜上所述，鉛和LPS 聯(lián)合暴露后小鼠炎癥損傷加劇，小膠質細胞M1 標志物表達增加，小膠質細胞可能向M1 極化，推測其機制可能與miR-34a表達升高和TREM2表達降低有關。