鄒學(xué)紅,汪俊,王芳,謝環(huán)
子宮內(nèi)膜癌是女性常見的惡性腫瘤之一,其發(fā)病率呈逐年上升趨勢,但關(guān)于子宮內(nèi)膜癌的發(fā)病機(jī)制仍不明確。有研究發(fā)現(xiàn)紫杉醇(paclitaxel,PTX)可抑制乳腺癌等腫瘤細(xì)胞,PTX 可聯(lián)合順鉑用于子宮內(nèi)膜癌的治療。有多項研究表明miRNAs 可影響癌細(xì)胞對PTX 藥物敏感性,如miRNA-101 增強(qiáng)乳腺癌MDA-MB-231 細(xì)胞對PTX 的藥物敏感性。有報道稱 miR-338-3p 可靶向 FOXP4 抑制肝癌細(xì)胞的增殖,miR-338-3p 通過調(diào)控 ZEB2 和MACC1 信號通路影響胃癌細(xì)胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化,但關(guān)于miR-338-3p 在子宮內(nèi)膜癌的表達(dá)相關(guān)研究仍較少。有研究發(fā)現(xiàn)高遷移率蛋白B1(high-mobilitygroupboxprotein-1,HMGB1)在子宮內(nèi)膜癌中表達(dá)上調(diào),發(fā)揮促癌基因作用。但 miR-338-3p 是否通過調(diào)控HMGB1 表達(dá)增強(qiáng)子宮內(nèi)膜癌對PTX 的敏感性仍未可知。本研究自2019年1-6月通過流式細(xì)胞術(shù)和CCK-8 實驗,探討miR-338-3p 調(diào)控人子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞HEC-1B 和ishikawa 對PTX 敏感性的影響分子機(jī)制,為深入探討人子宮內(nèi)膜癌發(fā)病和耐藥機(jī)制以及改善子宮內(nèi)膜癌患者的預(yù)后提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 試劑及儀器
DMEM 培養(yǎng)基(C11965500BT)、青霉素和鏈霉素(15140122)為美國Gibco 公司產(chǎn)品;ECL 試劑(P0018)、RIPA 蛋白裂解液(P0013B)、HMGB1 抗體(AF1174)和蛋白印跡法(Western blottingting)所用試劑為碧云天公司產(chǎn)品;β-肌動蛋白(β-actin)為德國Merck 公司產(chǎn)品(A4700);Trizol 試劑為英濰捷基公司產(chǎn)品(15596026);CCK-8 試劑盒(CA1210)為索萊寶公司產(chǎn)品;mirPremiemicro RNA Isolation Kit(SNC50)為德國 Merck 公司產(chǎn)品;一步法miRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(D1801)為新?;蚬井a(chǎn)品;mirVana實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(qRTPCR)miRNA detection Kit(AM1558)為賽默飛公司產(chǎn)品;雙熒光素酶報告基因質(zhì)粒(E1751)為美國Promega 公 司 產(chǎn) 品 ;Annexin V-FITC/PI 檢 測 試 劑(CA1020)、CCK8 試劑盒(CA1210)為北京 Solarbio公司產(chǎn)品;PTX(33069-62-4,純度≥98%)為成都德銳可生物科技有限公司;實驗中所用引物、質(zhì)粒均由江蘇金唯智公司合成制備。1.2 方法
1.2.1
細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染 人子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞株Ishikawa 細(xì)胞株由中國人民解放軍武漢總醫(yī)院醫(yī)院婦產(chǎn)科實驗室保存,人正常子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞ESC和子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞株HEC-1B 購于北京細(xì)胞中心,細(xì)胞培養(yǎng)于含有10%胎牛血清、100 U/mL 青霉素和100 μg/mL 鏈霉素的 DMEM 培養(yǎng)基中,在 37 ℃、5%二氧化碳及飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng);將細(xì)胞分為如下5組:miR-338-3p組(轉(zhuǎn)染miR-338-3p mimics組)、miR-NC(轉(zhuǎn)染miRNA陰性對照組)、si-HMGB1組(轉(zhuǎn)染干擾RNA)、si-NC 組(轉(zhuǎn)染siRNA 陰性對照)和miR-338-3p+HMGB1 組(共轉(zhuǎn)染 miR-338-3pmimics和pcDNA3.0 HMGB1 組),將各組用轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染至 Ishikawa 和 HEC-1B 細(xì)胞,培養(yǎng) 6 h 后更換為完全培養(yǎng)基用于后續(xù)實驗。1.2.2
Ishikawa 和 HEC-1B 細(xì) 胞 PTX 敏 感 性 的 檢測 將上述轉(zhuǎn)染組細(xì)胞接種至96孔板中,細(xì)胞密度為 8×10個/mL,24 h 后,各孔加入相應(yīng)濃度的 PTX(終濃度分別為 0 、0.5、1.0、1.5、2.0 μg/mL)繼續(xù)培養(yǎng)24 h 后,棄去培養(yǎng)基,加入完全培養(yǎng)基100 μL 和10 μL CCK-8溶液繼續(xù)培養(yǎng)1 h,按照1.2.4 中方法檢測細(xì)胞增殖,并計算細(xì)胞存活分?jǐn)?shù),繪制擬合曲線。1.2.3
RT-qPCR 檢測 miR-338-3p mRNA 水平 采用 TRIZOL 法提取細(xì)胞總 RNA,mirPremiemicro RNA Isolation Kit 分離miRNA,利用一步法miRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,用mirVanaqRT-PCR miRNA detection 試劑盒進(jìn)行RT-qPCR 檢測,以U6為內(nèi)參,2法檢測 miR-338-3p mRNA 水平,步驟參照各試劑盒方法。MiRNA-338-3p(退火溫度為60 ℃)的SRT 引物:TCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAAT-TCAGTTGAGCAACAA;特異性性引物:AUGACUCAGGCGACTCCAGC-ATCAGTGATT;通用引物:TGGTGTCGTGGAGTCG;U6(退火溫度為58 ℃)引 物 :F:GCGGTCTGCGCGATCAAG,R:TTCCCCTCGAGCTCATTGCC。1.2.4
CCK-8 法檢測細(xì)胞增殖 將上述處理組細(xì)胞消化后接種至96 孔板中,每孔100 μL,每孔細(xì)胞為 6×10個,每組設(shè)置 5 個復(fù)孔,待細(xì)胞培養(yǎng) 0 、24、48、72 h 后,每孔加入10 μL CCK-8 溶液,繼續(xù)培養(yǎng)1 h,在酶標(biāo)儀選擇450 nm 波長,測定并記錄各孔吸光度值(OD),實驗重復(fù)3 次,求平均值,繪制細(xì)胞增殖曲線。1.2.5
雙熒光素酶報告基因?qū)嶒?采用TargetScan預(yù)測HMGB1 可能是miR-338-3p 的靶基因。分別將含有與 miR-338-3p 結(jié)合位點的 HMGB1 3’UTR 片段及突變體插入到pGL3 熒光報告載體基因下游,分別記為HMGB1-WT(野生型)和HMGB1-Mut(突變型)。將測序鑒定正確的HMGB1-WT 和HMGB1-Mut 質(zhì)粒分別與 miR-NC 和 miR-338-3p mimics 共轉(zhuǎn)染 Ishikawa 和 HEC-1B 細(xì)胞,常規(guī)培養(yǎng) 24 h 后,參照雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒說明書步驟進(jìn)行檢測。1.2.6
Annexin V-FITC/PI 檢測細(xì)胞凋亡 收集上述處理組細(xì)胞,用胰蛋白酶將細(xì)胞消化,取1×10個細(xì)胞,加入 300 μL 的 DMEM 重懸細(xì)胞,加入 5 μL Annexin V-FITC,室溫避光孵育 15 min,加入 5 μL PI 混勻,再補(bǔ)加 200 μL 的 DMEM 后,上流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測,重復(fù)3次,求平均值。1.2.7
Western blotting 檢測HMGBI 蛋白表達(dá) 將上述處理組細(xì)胞用預(yù)冷PBS 洗滌3 遍,加入含有PMSF(100 倍稀釋)的細(xì)胞裂解液,利用BCA 蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度,然后進(jìn)行SDS-PAGE電泳,采用濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)至PVDF 膜上,用5% 脫脂奶粉4 ℃過夜封閉,用HMGB1和β-actin的一抗進(jìn)行4 ℃過夜孵育,用辣根過氧化物標(biāo)記山羊抗鼠二抗進(jìn)行37 ℃溫箱孵育,PBST 洗膜3 次,用混好的ECL 化學(xué)發(fā)光液滴加至膜上,化學(xué)發(fā)光成像儀下掃描并拍照,同時以β-actin 為內(nèi)參,對目的蛋白HMGB1做相對定量分析。2.1 miR
-338
-3p 在子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞中低表達(dá)
RT-qPCR 檢測miR-338-3p 在人正常子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞ESC 及子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞HEC-1B 和Ishikawa 的表達(dá),結(jié)果顯示,與人正常子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞ESC相比,miR-338-3p 在子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞HEC-1B 和Ishikawa 中表達(dá)顯著下調(diào)[(1.00±0.10)比(0.51±0.04),(0.46±0.04),F
=182.114,P
=0.000;t
=13.649,P
=0.000,t
=15.041,P
=0.000]。2.2 過表達(dá)miR
-338
-3p 抑制子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖、促進(jìn)凋亡和增加子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞對PTX 的敏感性
將miR-338-3p mimics 轉(zhuǎn)染至HEC-1B 和Ishikawa 細(xì)胞中,RT-qPCR 檢測結(jié)果顯示,miR-338-3p 在HEC-1B[(1.00±0.10)比(4.87±0.31),t
=35.643,P
=0.000]和Ishikawa[(1.00±0.09)比(6.11±0.43),t
=34.895,P
=0.000]細(xì)胞中表達(dá)顯著上調(diào);CCK-8 法檢測結(jié)果和流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示:與miR-NC 組相比,miR-338-3p 組細(xì)胞的增殖能力降低(表1),而細(xì)胞凋 亡 率 顯 著 增 加[HEC-1B :(10.02±0.86 ) 比(23.10±1.86),t
=19.149,P
=0.001;Ishikawa :(10.01±0.91)比(25.43±2.01),t
=20.966,P
=0.000];不同濃度的PTX 聯(lián)合miR-338-3p 對子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖能力的影響:CCK-8 實驗結(jié)果顯示,HEC-1B 和Ishikawa 細(xì)胞的存活分?jǐn)?shù)隨著紫杉醇濃度的增加而逐漸下降,與miR-NC 組相比,miR-338-3p 組細(xì)胞存活分?jǐn)?shù)均明顯下降(HEC-1B:t
=1.401,P
=0.925,t
=1.234,P
=0.051,t
=5.152,P
=0.006,t
=14.787,P
=0.004,t
=14.482 ,P
=0.004,t
= 15.614,P
=0.000,t
=14.221,P
=0.003,t
=0.152,P
=0.473),(Ishikawa:t
=1.663,P
=0.825,t
=3.35,P
=0.041,t
=6.176,P
=0.012,t
=7.944,P
=0.008,t
=15.013 ,P
=0.001,t
=16.063,P
=0.000,t
=15.022,P
=0.001,t
=0.676,P
=0.758)。表1 CCK-8檢測細(xì)胞增殖活力/(,n=9)
2.3 miR
-338
-3p 的
靶
基
因
HMGB1
RT-qPCR 檢測HMGB1 表達(dá),與人正常子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞ESC相比,HMGB1 在子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞HEC-1B 和ishikawa 中表達(dá)上調(diào)[(1.00±0.10)比(4.31±0.32)、(3.24±0.26),F
=64.240,P
=0.000];生物學(xué)在線預(yù)測分析軟件 Targetscan 預(yù) 測 到 miR-338-3p 與 HMGB1 的 3’UTR 存在結(jié)合位點(圖1A);雙熒光素報告基因?qū)嶒烌炞CmiR-338-3p 與HMGB1 之間的靶向關(guān)系,結(jié)果顯示:miR-338-3p 能顯著降低野生型HMGB1-3’UTR WT 的 熒 光 活 性[HEC-1B:(1.00±0.11 ) 比(0.44±0.03),t
=17.709,P
=0.000;ishikawa:(1.00±0.11)比(0.47±0.04),t
=13.584,P
=0.000],但卻不影響 HMGB1-3’UTR MUT 的熒光活性[HEC-1B:(1.00±0.12)比(1.01±0.10),t
=0.212,P
=0.835;ishikawa:(1.00±0.12 ) 比(1.01±0.10),t
=0.192,P
=0.850];Western blotting 檢測結(jié)果顯示,與 miR-NC組相比,過表達(dá)miR-338-3p 可顯著降低HMGB1 在HEC-1B[(1.00±0.10)比(0.44±0.03),t
=16.091,P
=0.000]和 ishikawa[(1.02±0.11)比(0.47±0.04),t
=14.097,P
=0.000]細(xì)胞中的表達(dá)(圖1B)。圖1 miR-338-3p與HMGB1之間的靶向關(guān)系驗證:A為miR-338-3p與HMGB1的3’UTR存在結(jié)合位點;B為過表達(dá)miR-338-3p對HMGB1表達(dá)的影響
2.4 敲低HMGB1 抑制子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖、促進(jìn)凋亡和增加子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞對PTX 的敏感性
將si-HMGB1 轉(zhuǎn)染至 HEC-1B 和 ishikawa 細(xì)胞,Western blotting 結(jié)果顯示,與 si-NC 組相比,si-HMGB1 組細(xì)胞中HMGB1 表達(dá)顯著降低[HEC-1B:(1.00±0.10)比(0.44±0.03),t
=16.091,P
=0.000;ishikawa:(1.00±0.09)比(0.48±0.04),t
=15.839,P
=0.000];CCK-8法檢測結(jié)果和流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示:與si-NC 組相比,si-HMGB1 組細(xì)胞的增殖能力降低(表2),而細(xì)胞 凋 亡 率 顯 著 增 加[HEC-1B:(10.02±0.91 ) 比(24.30±1.96),t
=19.825,P
=0.000,ishikawa:(10.01±1.01)比(22.72±1.76),t
=18.791,P
=0.000];不同濃度的PTX 聯(lián)合si-HMGB1 對子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖能力的影響:CCK-8 實驗結(jié)果顯示,HEC-1B 和Ishikawa 細(xì)胞的存活分?jǐn)?shù)隨著紫杉醇濃度的增加而逐漸下降,與si-NC組相比,si-HMGB1組細(xì)胞存活分?jǐn)?shù)均明顯下降(HEC-1B:t
=1.332,P
=0.657,t
=1.742,P
=0.146,t
=5.243,P
=0.024,t
=5.342,P
=0.011,t
=14.522,P
=0.000,t
=16.162,P
=0.001,t
=13.594,P
=0.001,t
=0.152,P
=0.421;Ishikawa:t
=1.356,P
=0.745,t
=3.321,P
=0.086,t
=6.313,P
=0.016,t
=8.224,P
=0.016,t
=15.175,P
=0.000,t
=16.394,P
=0.000,t
=14.943,P
=0.001,t
=0.974,P
=0.343)。表2 CCK-8檢測細(xì)胞增殖活力/(,n=9)
2.5 HMGB1 部分逆轉(zhuǎn)miR
-338
-3p 對子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖、凋亡及對PTX 敏感性的影響
將miR-338-3p 和 pcDNA3.0HMGB1 共 轉(zhuǎn) 染 至 HEC-1B 和ishikawa 細(xì)胞,與 miR-338-3p 組相比,miR-338-3p+HMGB1 組細(xì)胞增殖能力升高(表3),細(xì)胞凋亡率降低(表4);不同濃度的PTX 聯(lián)合pcDNA3.0 HMGB1和miR-338-3p mimics 對子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖能力的影響:CCK-8 實驗結(jié)果顯示,HEC-1B 和 Ishikawa細(xì)胞的存活分?jǐn)?shù)隨著紫杉醇濃度的增加而逐漸下降,與miR-338-3p組相比,miR-338-3p+HMGB1組細(xì)胞存活分?jǐn)?shù)升高(HEC-1B:F
=1.021,P
=0.6425,F
=0.493,P
=0.326,F
=22.943,P
=0.000,F
=42.070,P
=0.000,F
=85.374,P
=0.000,F
=188.411,P
=0.000,F
=90.020,P
=0.000,F
=0.682,P
=0.216;ishikawa :F
=1.011,P
=0.689,F
=0.301,P
=0.281,F
=19.020,P
=0.000,F
=35.882,P
=0.000,F
=83.360,P
=0.000,F
=243.824,P
=0.000,F
=127.017,P
=0.000,F
=0.694,P
=0.846)。表3 CCK-8檢測細(xì)胞增殖活力/(,n=9)
表4 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡/(,n=9)
MiRNAs 是 一類長度 約為 19 至 23 個 nt 的 高 度保守的內(nèi)源性非編碼小分子RNA,能夠通過與靶基因的mRNA 的3’UTR 不完全互補(bǔ)配對進(jìn)而影響mRNA 的降解或抑制其翻譯。研究表明有多種miRNAs 通過調(diào)控子宮內(nèi)膜癌的增殖,遷移侵襲和凋亡等種生物學(xué)過程,參與癌癥的發(fā)生發(fā)展。miR-338-3p 在多種癌癥中發(fā)揮多種調(diào)控作用,如Ju等發(fā)現(xiàn) miR-338-3p 可抑制胃癌細(xì)胞的發(fā)展,Peng等發(fā)現(xiàn)miR-338-3p 可通過IRS2 抑制非小細(xì)胞肺癌的增殖和侵襲,但 miR-338-3p 在子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞中的研究較少。本研究以人子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞HEC-1B和ishikawa為研究對象,RT-qPCR檢測發(fā)現(xiàn),與人正常子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞ESC 相比,miR-338-3p 在HEC-1B 和ishikawa 細(xì)胞中的表達(dá)顯著下調(diào),提示我們miR-338-3p 可能在子宮內(nèi)膜癌的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用。后續(xù)研究中在HEC-1B 和ishikawa 細(xì)胞中過表達(dá)miR-338-3p,檢測發(fā)現(xiàn)過表達(dá)miR-338-3p 可抑制 HEC-1B 和 ishikawa 細(xì)胞增殖,促進(jìn)其凋亡,提示miR-338-3p 可能成為子宮內(nèi)膜癌潛在的治療靶點。PTX 是一種來自紫衫樹皮的提取物,通過影響腫瘤細(xì)胞的有絲分裂和細(xì)胞周期發(fā)揮作用,是臨床一線抗腫瘤藥物,不斷有研究表明PTX 可聯(lián)合其它化療藥物抑制子宮內(nèi)膜癌的進(jìn)展。在本研究中,首先檢測了不同濃度的PTX 聯(lián)合miR-338-3p對HEC-1B和ishikawa細(xì)胞增殖的影響,結(jié)果與前人研究一致,隨著 PTX 的提高,HEC-1B 和 ishikawa 細(xì)胞的增殖能力降低,表明PTX 可抑制HEC-1B 和ishikawa 細(xì)胞的增殖,同時,與 miR-NC 組相比,miR-338-3p 組的細(xì)胞增殖能力降低,表明過表達(dá)miR-338-3p 可增加 HEC-1B 和 ishikawa 細(xì)胞對 PTX 的敏感性。
有研究表明HMGB1 參與多種癌癥的發(fā)生發(fā)展過程。本研究首先檢測了HMGB1在HEC-1B和ishikawa 細(xì)胞中的表達(dá),結(jié)果發(fā)現(xiàn),與人正常子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞 ESC 相比,HMGB1 在 HEC-1B 和 ishikawa 細(xì)胞中的表達(dá)顯著上調(diào),提示我們HMGB1 可能在子宮內(nèi)膜癌的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用。而HMGB1 對其他癌癥的影響前人早有報道,如miR34a可靶向HMGB1抑制人宮頸癌和結(jié)腸癌細(xì)胞的增殖、遷移和侵襲,HMGB1 促進(jìn)骨肉瘤細(xì)胞增殖和侵襲,抑制細(xì)胞凋亡。這些數(shù)據(jù)表明HMGB1在多種癌癥中可能扮演著促癌基因的角色。為了驗證miR-338-3p 是否可靶向HMGB1 參與子宮內(nèi)膜癌的發(fā)生發(fā)展以及其對PTX 的敏感性,本研究通過生物信息學(xué)在線分析軟件預(yù)測到HMGB1 的3’UTR與miR-338-3p 存在結(jié)合位點,雙熒光素酶報告基因?qū)嶒炞C實HMGB1 是miR-338-3p 的靶基因,且過表達(dá)miR-338-3p 可抑制HMGB1 表達(dá),表明miR-338-3p 可靶向并負(fù)性調(diào)節(jié)HMGB1 表達(dá)。后續(xù)研究中在HEC-1B 和 ishikawa 細(xì) 胞 中 敲 低 HMGB1,敲 低HMGB1 可抑制 HEC-1B 和 ishikawa 細(xì)胞增殖,促進(jìn)其凋亡,同時增加HEC-1B和ishikawa細(xì)胞對PTX的敏感性,與過表達(dá)miR-338-3p結(jié)果相一致。HMGB1和miR-338-3p共轉(zhuǎn)染至HEC-1B和ishikawa細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)HMGB1 可部分逆轉(zhuǎn)miR-338-3p 對子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞增殖,凋亡以及對PTX敏感性的影響。
綜上所述,本研究首次發(fā)現(xiàn)miR-338-3p 靶向HMGB1可促進(jìn)人子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞HEC-1B和ishikawa凋亡、抑制增殖,同時增加其對PTX 的敏感性,為臨床上miR-338-3p 聯(lián)合PTX 治療人子宮內(nèi)膜癌提供了理論依據(jù)。