伏東寧,邵 杰
(1.南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬連云港市中醫(yī)院,江蘇 連云港222004;2.江蘇康緣藥業(yè)股份有限公司,江蘇 連云港222001)
兒咳靈糖漿由麻黃、苦杏仁、生石膏、黃芩、鮮竹瀝等15味中藥材制成,是連云港市中醫(yī)院院內(nèi)制劑(批準文號為蘇藥制字Z04000017),具有清肺化痰、止咳平喘功效,用于治療上呼吸道感染和急性支氣管炎引起的咳嗽。目前,缺少工藝指標,無法保證大生產(chǎn)的每批產(chǎn)品的質(zhì)量穩(wěn)定?,F(xiàn)行制劑工藝中苦杏仁采用溫水浸泡24 h后加熱蒸餾,收集蒸餾液。文獻[1-3]報道,沸水提取比常溫浸泡更能提高苦杏仁苷的轉(zhuǎn)移率。本研究中探討了苦杏仁和麻黃等14味藥材提取過程中的主要影響因素,以苦杏仁苷、麻黃堿、黃芩苷的轉(zhuǎn)移率和干浸膏得率為指標性成分,優(yōu)化兒咳靈糖漿的制備工藝,為其大生產(chǎn)提供參數(shù)指導(dǎo)?,F(xiàn)報道如下。
DZTW型調(diào)溫電熱套(北京永光明醫(yī)療儀器有限公司);FA1104型電子分析天平(上海精密科學(xué)儀器有限公司,精度為0.1 mg);AS30600B型超聲波清洗器(功率為600 W,頻率為40 kHz);Ultimate 3000型高效液相色譜儀(美國賽默飛世爾科技公司)。
麻黃、苦杏仁、黃芩等14味藥材均由連云港和興堂飲片廠提供,經(jīng)連云港康濟大藥房連鎖有限公司吳舟執(zhí)業(yè)藥師鑒定為正品;苦杏仁苷對照品(批號為110820-201303,含量以99.6%計),鹽酸麻黃堿對照品(批號為171241-201508,含量以98.6%計),黃芩苷對照品(批號為110715-201418,含量以99.9%計),均購于中國食品藥品檢定研究院;甲醇和乙腈為色譜純,其他試劑均為分析純。
2.1.1 正交試驗設(shè)計[4]
本試驗在提取2次的前提下,將藥材煎煮方法(因素A)、加水量(因素B)和提取時間(因素C)作為考察因素,在前期預(yù)試驗基礎(chǔ)上,每個因素確定3個水平。以苦杏仁苷含量的3次平均值為考察指標,采用L9(34)正交試驗。因素水平見表1。
表1 苦杏仁苷L9(34)正交試驗因素水平表Tab.1 Factors and levels of L9(34)orthogonal test for amygdalin
2.1.2 苦杏仁苷含量測定[5]
1)色譜條件與系統(tǒng)適用性試驗
色譜柱:Kromasil C18柱(250 mm×4.6 mm,5μm);流動相:乙腈-0.1%磷酸溶液(8∶92,V/V);流速:1.0 mL/min;柱溫:30℃;檢測波長:210 nm。理論板數(shù)按苦杏仁苷峰計不低于7 000。在此色譜條件下,陰性對照品溶液色譜中,在與供試品溶液色譜相應(yīng)保留時間處無色譜峰出現(xiàn),陰性對照無干擾。色譜圖見圖1。
2)溶液制備
對照品溶液:取苦杏仁苷對照品適量,精密稱定,加甲醇制成每1 mL含0.402 5 mg的溶液,即得。
供試品溶液:按處方比例稱取苦杏仁50 g,粉碎成粗粉,按表2中設(shè)計水平完成9次試驗,合并每次提取液,濃縮至500 mL,作為試驗用樣品溶液,供含量測定用。精密量取試驗用樣品溶液5 mL,蒸干,加甲醇稀釋,搖勻,定容至100 mL容量瓶中,0.45μm微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液,即得。
表2 L9(34)正交試驗設(shè)計與結(jié)果Tab.2 Design and results of L9(34)orthogonal test
陰性對照品溶液:按照處方工藝,制備不含苦杏仁的陰性樣品,并按供試品溶液制備方法制備溶液,即得。
3)方法學(xué)考察
圖1 苦杏仁高效液相色譜圖1.amygdalinA.Reference solution B.Test solution C.Negative reference solutionFig.1 HPLC chromatograms of Semen Armeniacae Amarum
線性關(guān)系考察:精密吸取2)項下制備的對照品溶液1.0,2.0,4.0,8.0,10.0 mL,分別置10 mL容量瓶中,用甲醇稀釋,定容,搖勻,得0.040 25,0.080 5,0.161,0.322,0.402 5 mg/mL系列質(zhì)量濃度的苦杏仁苷對照品溶液。吸取上述溶液各10μL,注入高效液相色譜儀,按1)項下色譜條件測定。以峰面積(Y)為縱坐標、進樣質(zhì)量濃度(X,mg/mL)為橫坐標繪制標準曲線,得苦杏仁苷對照品溶液的回歸方程Y=0.068X+0.362(r=0.999 0,n=5)。結(jié)果表明,苦杏仁苷質(zhì)量濃度在0.040 25~0.402 5 mg/mL范圍內(nèi)與峰面積線性關(guān)系良好。
精密度試驗:精密吸取苦杏仁苷對照品溶液(質(zhì)量濃度為0.402 5 mg/mL)10μL,按1)項下色譜條件連續(xù)進樣6次,記錄色譜圖。結(jié)果苦杏仁苷峰面積的RSD為0.98%(n=6),表明儀器精密度良好。
穩(wěn)定性試驗:取1號試驗樣品溶液,依法制備供試品溶液,分別于0,2,4,8,12,16,24 h時進樣測定。結(jié)果苦杏仁苷峰面積的RSD為1.25%(n=7),表明供試品溶液在室溫(25℃)條件下24 h內(nèi)穩(wěn)定。
重復(fù)性試驗:取1號試驗樣品溶液,依法制備供試品溶液6份,按1)項下色譜條件進樣10μL測定,記錄色譜峰。結(jié)果苦杏仁苷峰面積含量的RSD為0.67%(n=6),表明方法重復(fù)性良好。
加樣回收試驗:精密吸取1號試驗樣品(苦杏仁苷含量為1.25 mg/mL)9份,各5 mL,按相當于樣品中苦杏仁苷含量50%,100%,150%的比例加入苦杏仁苷對照品,平行制備3份,依法制成系列供試品溶液,按1)項下色譜條件進樣10μL,測定峰面積,計算回收率。結(jié)果苦杏仁苷的平均加樣回收率為98.90%,RSD為0.97%(n=9)。
2.1.3 苦杏仁苷轉(zhuǎn)移率計算及工藝驗證
精密吸取各供試品溶液10μL,按1)項下色譜條件進樣測定,每個樣品平行測定3次,計算轉(zhuǎn)移率??嘈尤受辙D(zhuǎn)移率=(供試品中苦杏仁苷總量/原藥材中苦杏仁苷總量)×100%。結(jié)果見表2。由表3可見,因素A對試驗有顯著影響(P<0.01),因素B、因素C對試驗結(jié)果無顯著影響,各因素對苦杏仁苷含量的影響效果大小順序為A>C>B。最佳提取工藝為A3B1C2,即苦杏仁沸水入藥,加6倍量水,煎煮2次,每次1 h。
表3 方差分析結(jié)果Tab.3 Rusults of ANOVA
2.2.1 正交試驗設(shè)計
本試驗將加水量(因素A)、提取時間(因素B)和提取次數(shù)(因素C)作為考察因素,在前期預(yù)試驗基礎(chǔ)上,每個因素確定3個水平。以鹽酸麻黃堿、黃芩苷含量的3次平均值為考察指標,采用L9(34)正交試驗。因素水平見表4。
表4 鹽酸麻黃堿、黃芩苷L9(34)正交試驗因素水平表Tab.4 Factors and levels of L9(34)orthogonal test for ephedrine hydrochloride and baicalin
2.2.2 鹽酸麻黃堿含量測定
1)色譜條件[6]與系統(tǒng)適用性試驗
色譜柱:Kromasil C18柱(250 mm×4.6 mm,5μm);流動相:乙腈-0.1%磷酸溶液(3∶97,V/V);流速:1.0 mL/min;柱溫:30℃;檢測波長:210 nm。理論板數(shù)按鹽酸麻黃堿峰計不低于3 000。在此色譜條件下,陰性對照品溶液色譜中,在與供試品溶液色譜相應(yīng)保留時間處無色譜峰出現(xiàn),陰性對照無干擾。色譜圖見圖2。
2)溶液制備
對照品溶液:取鹽酸麻黃堿對照品適量,精密稱定,加甲醇制成每1 mL含0.520 mg的溶液,即得。
供試品溶液:將2.1.1項下苦杏仁沸水提取過濾后的藥渣,按處方比例投入麻黃等13味藥材中加水提取,合并煎液,濾過,靜置,取上清液濃縮至500 mL,作為試驗用樣品溶液,供含量測定用。精密量取試驗用樣品溶液5 mL,蒸干,加甲醇稀釋,搖勻,定容至10 mL容量瓶中,0.45μm微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液,即得。
陰性對照品溶液:按照處方工藝,制備不含麻黃的陰性樣品,并按供試品溶液制備方法制備溶液,即得。
3)方法學(xué)考察
線性關(guān)系考察:精密吸取2)項下鹽酸麻黃堿對照品溶液1.0,2.0,4.0,8.0,10.0 mL,分別置10 mL容量瓶中,用甲醇稀釋定容,搖勻,制成系列不同質(zhì)量濃度的對照品溶液。吸取上述溶液各10μL注入高效液相色譜儀,按1)項下色譜條件測定。以峰面積(Y)為縱坐標、進樣量(X,μg)為橫坐標進行線性回歸,得鹽酸麻黃堿對照品溶液的回歸方程Y=0.299X+0.205(r=0.999 4,n=5)。結(jié)果鹽酸麻黃堿進樣量在0.520~5.200μg范圍內(nèi)與峰面積線性關(guān)系良好。
精密度試驗:精密吸取鹽酸麻黃堿對照品溶液10μL,按1)項下色譜條件連續(xù)進樣6次,記錄色譜圖。結(jié)果鹽酸麻黃堿峰面積的RSD為0.88%(n=6),表明儀器精密度良好。
圖2 麻黃高效液相色譜圖1.ephedrine hydrochlorideA.Reference solution B.Test solution C.Negative reference solutionFig.2 HPLC chromatograms of Ephedra sinica
圖3 黃芩高效液相色譜圖1.baicalinA.Reference solution B.Test solution C.Negative reference solutionFig.3 HPLC chromatograms of Scutellaria baicalensis
穩(wěn)定性試驗:取1號試驗樣品溶液10μL,依法制備供試品溶液,分別于0,2,4,8,12,16,24 h時進樣測定。結(jié)果鹽酸麻黃堿峰面積的RSD為0.85%(n=7),表明供試品溶液在室溫(25℃)條件下24 h內(nèi)穩(wěn)定。
重復(fù)性試驗:精密吸取1號試驗樣品溶液,依法制備供試品溶液6份,按1)項下色譜條件進樣10μL測定,記錄色譜峰。結(jié)果鹽酸麻黃堿峰面積含量的RSD為1.67%(n=6),表明方法重復(fù)性良好。
加樣回收試驗:精密吸取1號試驗樣品(鹽酸麻黃堿含量為2.65 mg/mL)9份,各5 mL,按相當于樣品中鹽酸麻黃堿含量50%,100%,150%的比例加入鹽酸麻黃堿對照品,平行制備3份,依法制成系列供試品溶液,按1)項下色譜條件進樣10μL,測定峰面積,計算回收率。結(jié)果鹽酸麻黃堿的平均加樣回收率為97.80%,RSD為0.95%(n=9)。
2.2.3 黃芩苷含量測定
1)色譜條件[7]與系統(tǒng)適用性試驗
色譜柱:Kromasil C18柱(250 mm×4.6 mm,5μm);流動相:甲醇-0.1%磷酸溶液(47∶53,V/V);流速:1.0 mL/min;柱溫:30℃;檢測波長:280 nm。理論板數(shù)按黃芩苷峰計不低于2 500。在此色譜條件下,陰性對照品溶液色譜中,在與供試品溶液色譜相應(yīng)保留時間處無色譜峰出現(xiàn),陰性對照無干擾。詳見圖3。
2)溶液制備
對照品溶液:取黃芩苷對照品適量,精密稱定,加甲醇制成每1 mL含0.254 mg的溶液,即得。
供試品溶液[8-9]:精密量取“鹽酸麻黃堿”項下試驗用樣品溶液5 mL,蒸干,加甲醇稀釋搖勻,定容至100 mL容量瓶中,0.45μm微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液,即得。
陰性對照品溶液:按照處方工藝,制備不含黃芩的陰性樣品,并按供試品溶液制備方法制備溶液,即得。
3)方法學(xué)考察
線性關(guān)系考察:精密吸取2)項下制備的對照品溶液1.0,2.0,4.0,8.0,10.0 mL,分別置10 mL容量瓶中,用甲醇稀釋,定容,搖勻,制成系列不同質(zhì)量濃度的對照品溶液。吸取上述溶液各10μL,注入高效液相色譜儀,按1)項下色譜條件測定。以峰面積(Y)為縱坐標、進樣量(X,μg)為橫坐標進行線性回歸,得黃芩苷對照品溶液的回歸方程Y=0.024X+0.388(r=0.999 5,n=5)。結(jié)果黃芩苷進樣量在0.254~2.540μg范圍內(nèi)與峰面積線性關(guān)系良好。
精密度試驗:精密吸取黃芩苷對照品溶液10μL,按1)項下色譜條件連續(xù)進樣6次,記錄色譜圖。結(jié)果黃芩苷峰面積的RSD為1.32%(n=6),表明儀器精密度良好。
穩(wěn)定性試驗:取1號試驗樣品溶液,依法制備供試品溶液,分別于0,2,4,8,12,16,24 h時進樣測定。結(jié)果黃芩苷峰面積的RSD為1.56%(n=7),表明供試品溶液在室溫(25℃)條件下24 h內(nèi)穩(wěn)定。
重復(fù)性試驗:取1號試驗樣品溶液,依法制備供試品溶液6份,按1)項下色譜條件進樣10μL測定,記錄色譜峰。結(jié)果黃芩苷峰面積含量的RSD為1.67%(n=6),表明方法重復(fù)性良好。
加樣回收試驗:精密吸取1號試驗樣品(黃芩苷含量為8.74 mg/mL)9份,各5 mL,按相當于樣品中黃芩苷含量50%,100%,150%的比例加入黃芩苷對照品,平行制備3份,依法制成系列供試品溶液,按1)項下色譜條件進樣10μL,測定峰面積,計算回收率。結(jié)果黃芩苷的平均加樣回收率為92.60%,RSD為1.45%(n=9)。
2.2.4 干浸膏得率測定
取正交試驗表中樣品溶液,過濾,置干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,105℃干燥3 h,置干燥器內(nèi)冷卻0.5 h,稱定質(zhì)量,計算干浸膏得率。
2.2.5 正交試驗設(shè)計及結(jié)果[10-11]
根據(jù)兒咳靈糖漿制備工藝,將2.1.1項下苦杏仁沸水提取過濾后的藥渣,按處方比例投入麻黃等13味藥材中加水提取。以鹽酸麻黃堿轉(zhuǎn)移率、黃芩苷轉(zhuǎn)移率和干浸膏得率為指標,采用L9(34)正交試驗,對加水量、提取時間和提取次數(shù)進行考察。在前期預(yù)試驗基礎(chǔ)上,確定每個因素的3個水平,設(shè)計生成9次試驗,每個試驗重復(fù)3次。試驗設(shè)計與結(jié)果見表5。可見,A因素對3種考察指標的影響最大。根據(jù)表6中各指標下最佳工藝水平組合,選擇2個或2個以上的相同因素和水平作為優(yōu)選工藝,得出最佳優(yōu)選工藝為A3B1C2,即苦杏仁藥渣與麻黃等13味藥材加10倍量水,煎煮2次,每次1 h。
表5 L9(34)正交試驗設(shè)計與結(jié)果Tab.5 Design and results of L9(34)orthogonal test
稱取10倍處方量藥材,按2.1.1項下苦杏仁沸水入藥提取最佳工藝條件重復(fù)制備3批,過濾,濾液備用;藥渣和麻黃等其他13味藥材按2.2.5項下最佳工藝條件重復(fù)制備3批,過濾,合并濾液。對苦杏仁苷、鹽酸麻黃堿、黃芩苷的轉(zhuǎn)移率及干浸膏得率6個指標進行考察。結(jié)果見表7。可見,通過正交試驗得出的最佳工藝較穩(wěn)定,可用于兒咳靈糖漿各藥材的提取。
麻黃為方中主藥,具有發(fā)汗散寒、宣肺平喘、利水消腫作用,其主要有效成分為麻黃堿;苦杏仁有效成分為苦杏仁苷,具有鎮(zhèn)咳平喘作用;黃芩主要有效成分為黃芩苷,具有清熱解毒功效[12]。故采用麻黃堿、苦杏仁苷和黃芩苷3個有效成分作為考察指標對兒咳靈糖漿提取工藝進行優(yōu)化。
表6 各因素對考察指標的影響分析結(jié)果(%)Tab.6 The influence of various factors on the inspection indicators(%)
表7 工藝驗證試驗結(jié)果Tab.7 Results of the verification tests
2017年,江蘇省食品藥品監(jiān)督管理局認證審評中心發(fā)布《關(guān)于對平喘止咳糖漿等制劑品種質(zhì)量標準提高相關(guān)事項的函》(藥事便函〔2017〕117號),公布兒咳靈糖漿的制備工藝為苦杏仁50 g,溫水浸泡24 h,加熱蒸餾,收集蒸餾液50 mL。文獻[13-14]報道,溫水條件下,苦杏仁酶會促進苦杏仁苷水解,降低苦杏仁苷含量。故在不改變原有水提工藝前提下,增加沸水入藥提取和常規(guī)煎煮(即直接加水煎煮提?。,F(xiàn)行版要求苦杏仁是在溫水浸泡加熱蒸餾后,收集蒸餾液,檢測苦杏仁苷的含量;另取藥渣過濾后的濾液檢測苦杏仁苷的含量。結(jié)果2種溶液都能檢測出苦杏仁苷的含量,且含量一致,故正交試驗設(shè)計時收集濾液,不再收集蒸餾液。以苦杏仁苷的含量為指標,比較3種水提方法進行工藝優(yōu)化。預(yù)試驗中分別考察了8,10,12倍加水量對苦杏仁提取效果的影響。結(jié)果表明,加水量增大到12倍,并不能提高苦杏仁苷的轉(zhuǎn)移率。可能是苦杏仁屬種子類藥材,吸水率不高。為節(jié)約成本,正交設(shè)計中加水量因素設(shè)計為6,8,10倍量3個水平。考察了提取次數(shù)對苦杏仁苷轉(zhuǎn)移率的影響,結(jié)果表明,增加提取次數(shù),并不能提高苦杏仁苷的轉(zhuǎn)移率,故正交設(shè)計中確定為提取2次。