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        凍融循環(huán)過程中鮰魚片K值的近紅外預(yù)測模型研究

        2021-01-25 05:23:02錢曉慶石鋼鵬熊光權(quán)吳文錦汪訓(xùn)枝丁安子
        食品與機(jī)械 2021年1期
        關(guān)鍵詞:魚片新鮮度凍融循環(huán)

        錢曉慶 朱 萌 石鋼鵬 熊光權(quán) 石 柳 吳文錦 汪 蘭 汪訓(xùn)枝 丁安子

        (1.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工與核農(nóng)技術(shù)研究所,湖北 武漢 430064;2.湖北工業(yè)大學(xué)生物工程與食品學(xué)院,湖北 武漢 430064;3.湖北省農(nóng)業(yè)科技創(chuàng)新中心,湖北 武漢 430064;4.陽新縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,湖北 黃石 435200)

        鮰魚(Channelcatfish)學(xué)名長吻鮠,是中國名貴的淡水魚類,2018年產(chǎn)量為23.04萬t。鮰魚肉質(zhì)嫩滑不肥膩、味美不腥,且無肌間刺,深受消費者青睞。為保證較好的食用品質(zhì),常采用冷藏、冰藏、微凍貯藏等方式對鮰魚進(jìn)行低溫貯運。貯運銷售過程中,常通過監(jiān)測鮰魚原料的新鮮度以確保其食用品質(zhì)處于較佳狀態(tài)。

        鮰魚等水產(chǎn)品新鮮度評價指標(biāo)包括細(xì)菌總數(shù)[1]、揮發(fā)性鹽基氮(TVB-N)[2]、2-硫代巴比妥酸值(TBARS)[3]和K值[4],其中K值反映水產(chǎn)品中核苷酸分解產(chǎn)物含量變化[5],最能體現(xiàn)水產(chǎn)品新鮮度變化[6]。付奧等[7]研究了冷藏條件下草魚三磷酸腺苷(ATP)關(guān)聯(lián)產(chǎn)物的含量及K值的變化;戚曉玉等[8]研究了冰藏條件下日本沼蝦ATP降解產(chǎn)物的含量變化及其對鮮度的影響;張龍騰等[9]研究了微凍貯藏條件下鰱魚片品質(zhì)指標(biāo)、ATP關(guān)聯(lián)產(chǎn)物及ATP關(guān)聯(lián)酶活性的變化規(guī)律。實際貯運中,鮰魚從產(chǎn)地→冷鏈物流→賣場→消費者,伴隨著長距離的運輸、環(huán)境溫度的變化等多種不確定因素,其貯運過程類似于凍融循環(huán)過程。目前有關(guān)凍融循環(huán)貯藏相關(guān)研究較少,且側(cè)重于對水產(chǎn)品肌肉品質(zhì)的影響研究[10-11],對水產(chǎn)品新鮮度影響及預(yù)測研究尚未見報道。

        近紅外光譜法是一種新興的光譜分析方法,利用有機(jī)物中含氫基團(tuán)(C—H、O—H、N—H等)的倍頻與合頻吸收,對特定化合物(如蛋白質(zhì)、水分等)實現(xiàn)快速、無損的定性/定量分析[12-15]。因此,近紅外光譜法在水產(chǎn)品新鮮度分析領(lǐng)域也得到廣泛研究,其對鯽魚[16]、鯉魚[17]、金槍魚[18]、鱈魚[19]和大馬哈魚[20]的新鮮度均具有較好的預(yù)測能力。而利用近紅外光譜技術(shù)分析檢測鮰魚新鮮度的研究尚未見報道。試驗擬以鮰魚為研究對象,采用高效液相色譜法(HPLC)分析凍融循環(huán)貯藏條件下ATP關(guān)聯(lián)產(chǎn)物含量的變化及其對新鮮度K值的影響,并利用偏最小二乘法建立新鮮度K值的近紅外定量預(yù)測模型,以期為水產(chǎn)品在運輸、貯藏和銷售過程中保持較佳新鮮度提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        斑點叉尾鮰:魚體規(guī)格為(2.00±0.30) kg,共24條(依次編號為A~X),帶水運輸至實驗室進(jìn)行后續(xù)處理,市售;

        氫氧化鈉、磷酸、磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀、高氯酸:分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;

        三磷酸腺苷(ATP)、二磷酸腺苷(ADP)、腺苷酸(AMP)、肌苷酸(IMP)、次黃嘌呤核苷(HxR)、次黃嘌呤(Hx):色譜級,美國Sigma-Aldrich公司;

        聚乙烯袋:上海廣佳信息技術(shù)有限公司;

        旋渦混合器:WH966型,上??等A生化儀器制造有限公司;

        pH計:FE20型,梅特勒—托利多儀器(上海)有限公司;

        高速冷凍離心機(jī):GL-25Ms型,上海盧湘儀實驗室儀器有限公司;

        超純水機(jī):YLY-100BU型,深圳市億利源水處理設(shè)備有限公司;

        高效液相色譜儀:LC-20A型,日本島津公司;

        傅里葉變換近紅外光譜儀:AntarisⅡ型,美國Thermo公司。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 原料預(yù)處理 鮰魚覆冰致暈后宰殺,去頭去尾后對半剖切,去除魚皮及紅肉,按圖1所示取背部肌肉約30 g,并切割為5份,每塊魚肉分別編號為1A、1B、…、5X,共計120份魚肉。用純水洗凈魚肉表面血跡,瀝干后放入聚乙烯袋中,-18 ℃下冷凍48 h,然后轉(zhuǎn)入4 ℃下解凍24 h,視為一次凍融循環(huán)處理,分別凍融循環(huán)處理1~5次。凍融循環(huán)處理后的120份鮰魚片樣品根據(jù)隨機(jī)抽取的原則,將其中100份作為校正集,其余20份作為驗證集。每份鮰魚片樣品先進(jìn)行近紅外光譜采集,隨后迅速剁碎制備新鮮度樣品。

        1.2.2 近紅外光譜采集 將凍融循環(huán)處理后的120份鮰魚片放入樣品盒內(nèi),用傅里葉變換近紅外光譜儀進(jìn)行光譜測定,每個樣品測量3次取平均值。

        1.2.3 新鮮度測定

        (1) 樣品處理:將采集完光譜學(xué)數(shù)據(jù)的鮰魚片在預(yù)冷過的砧板上剁碎混勻。準(zhǔn)確稱取2.000 g魚肉樣品于50 mL 離心管中,加入20 mL預(yù)冷過的10%高氯酸溶液旋渦振蕩1 min,低溫離心10 min(4 ℃,8 000 r/min)后保留上清液。沉淀物加入10 mL預(yù)冷過的5%高氯酸溶液旋渦振蕩1 min,低溫離心10 min(4 ℃,8 000 r/min)保留上清液,重復(fù)上述操作1次,合并上清液。用1 mol/LNaOH溶液調(diào)節(jié)pH至6.0~6.4,再用預(yù)冷過的超純水定容至50 mL。定容后的樣液用0.22 μm水相微孔濾膜過濾,濾液移入1.5 mL樣品瓶中,保存于-18 ℃待測。

        圖1 鮰魚片取樣示意圖Figure 1 Catfish sampling

        (2) 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制:準(zhǔn)確稱取ATP、ADP、AMP、IMP、HxR和Hx等標(biāo)準(zhǔn)品,用超純水配制成濃度為1.00 mg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,其中Hx標(biāo)準(zhǔn)儲備液的濃度為0.50 mg/mL。用流動相配制混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,使ATP、ADP、AMP、IMP、HxR的濃度梯度為0.2,0.5,1.0,5.0,15.0,40.0,100.0 μg/mL,Hx的濃度梯度為0.10,0.25,0.50,2.50,7.50,20.00,50.00 μg/mL,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,其曲線方程見表1。

        表1 ATP關(guān)聯(lián)產(chǎn)物的標(biāo)準(zhǔn)曲線Table 1 Thestanard curves of ATP-related compound composition

        (3) 色譜條件:色譜柱為月旭Ultimate AQ-C18,250 mm×4.6 mm,5 μm;流動相為0.02 mol/L KH2PO4溶液和0.02 mol/L K2HPO4溶液等體積混合后用85%磷酸調(diào)節(jié)pH至6.0;流速1.0 mL/min;柱溫35 ℃;檢測波長254 nm;進(jìn)樣量20 μL。

        (4) ATP關(guān)聯(lián)化合物含量計算:繪制ATP、ADP、AMP、IMP、HxR和Hx標(biāo)準(zhǔn)曲線,參照Yokoyama等[21]的方法,按式(1)計算ATP關(guān)聯(lián)化合物含量。

        (1)

        式中:

        X——樣品中ATP關(guān)聯(lián)化合物含量,μmol/g;

        C——標(biāo)準(zhǔn)工作液中ATP關(guān)聯(lián)化合物質(zhì)量濃度,μg/mL;

        V——樣品提取液定容后體積,mL;

        m——稱取樣品質(zhì)量,g;

        M——6種ATP關(guān)聯(lián)化合物的分子質(zhì)量。

        (5) K值計算:參照SC/T 3048—2014,按式(2)計算K值[22]。

        (2)

        式中:

        K——新鮮度K值,%;

        nATP——三磷酸腺苷的質(zhì)量摩爾濃度,μmol/g;

        nADP——二磷酸腺苷的質(zhì)量摩爾濃度,μmol/g;

        nAMP——腺苷酸的質(zhì)量摩爾濃度,μmol/g;

        nIMP——肌苷酸的質(zhì)量摩爾濃度,μmol/g;

        nHxR——次黃嘌呤核苷的質(zhì)量摩爾濃度,μmol/g;

        nHx——次黃嘌呤的質(zhì)量摩爾濃度,μmol/g。

        一般認(rèn)為K值在20%以下為優(yōu)良鮮度指標(biāo),20%~50%為中等鮮度指標(biāo),超過60%為不可接受[23]。

        1.2.4 數(shù)據(jù)處理 采用Excel 2013軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,采用SPSS 16.0軟件進(jìn)行顯著性分析,顯著性水平為P<0.05。參照管驍?shù)萚24]的方法,采用Unscrambler 9.7軟件對120份鮰魚片近紅外光譜數(shù)據(jù)進(jìn)行預(yù)處理,并采用偏最小二乘法(PLS)建立模型,通過校正決定系數(shù)(R2)、校正均方根誤差(RMSEC)、交叉驗證決定系數(shù)(R2)和預(yù)測均方根誤差(RMSEP)對模型預(yù)測能力進(jìn)行評價,優(yōu)化預(yù)測模型。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 凍融循環(huán)過程中ATP關(guān)聯(lián)產(chǎn)物含量的變化

        由圖2(a)可知,隨著凍融循環(huán)次數(shù)的增加,ATP含量先顯著下降(P<0.05)后穩(wěn)定維持在較低濃度,這是由于ATP酶活隨貯藏時間的延長而迅速降低,與吳依蒙等[25]的結(jié)果一致。凍融循環(huán)5次后,ATP含量由初始的2.15 μmol/g降至0.02 μmol/g。在ATP酶的作用下,ATP迅速分解為ADP和AMP。前2次凍融循環(huán)過程中,魚肉內(nèi)ATP酶活性較高,ATP含量顯著下降。Watabe等[26]研究發(fā)現(xiàn),低溫條件下魚肉肌漿內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(Sarcoplasmicreticulum)吸收鈣離子的能力下降,肌原纖維中鈣離子濃度增加,從而激活Mg2+-ATP酶使ATP降解。

        由圖2(b)可知,IMP含量隨凍融循環(huán)次數(shù)的增加先升高后降低。第1次凍融循環(huán),IMP含量由初始的4.07 μmol/g 顯著上升(P<0.05)至5.98 μmol/g;第2~5次凍融循環(huán),IMP含量顯著降低(P<0.05),由4.51 μmol/g 降至0.04 μmol/g。IMP是由AMP在其脫氨酶的作用下分解產(chǎn)生,隨后被核苷酸酶降解。凍融循環(huán)初期,ATP、ADP、AMP各自對應(yīng)的降解酶活性非常高,各種前體物質(zhì)被迅速降解為IMP,造成IMP含量的迅速升高。第2次凍融循環(huán),IMP含量依然維持在一個較高的水平,處于蓄積狀態(tài),與楊文鴿等[27]的結(jié)果一致;第3~5次凍融循環(huán),IMP含量顯著降低。Songsaeng等[28]研究發(fā)現(xiàn),貯藏中嗜冷菌的生長繁殖會造成IMP含量降低,如革蘭氏陽性菌(Gram-positivebacteria)和芽孢桿菌(Spore-formingbacteria)。5次凍融循環(huán)貯藏,鮰魚在4 ℃ 下共貯藏5 d,IMP含量僅為最高值的0.67%,降解速率遠(yuǎn)大于冰藏、冷藏和微凍條件。如大黃魚冰藏5 d后的IMP含量約為最高值的60%[27];中華絨螯蟹冷藏5 d 后的IMP含量約為最高值的50%[29];鰱魚微凍貯藏5 d后的IMP含量約為最高值的70%[9]。

        小寫字母不同表示存在顯著性差異(P<0.05)圖2 凍融循環(huán)過程中鮰魚肉片ATP關(guān)聯(lián)產(chǎn)物含量的變化Figure 2 Changes of ATP-related compound composition in catfish fillets during the freeze-thaw cycles

        由圖2(c)可知,Hx含量隨凍融循環(huán)次數(shù)的增加而顯著升高(P<0.05),第5次凍融循環(huán)時,Hx含量由初始的0.08 μmol/g上升至19.65 μmol/g。Hx是由HxR在核糖水解酶的作用下脫去核糖生成,是導(dǎo)致魚肉產(chǎn)生苦澀味的主要物質(zhì)[30]。根據(jù)魚肉中HxR與Hx含量變化的不同,可分為3種類型:HxR含量隨時間顯著增加為HxR型,如鰹魚(Katsuwonuspelamis)[26];Hx含量顯著增加為Hx型,如棕點石斑魚(Epinephelusfuscoguttatus)[31];HxR、Hx含量均增加為中間型,如日本沼蝦(Macrobrachiumnipponense)[8]。故試驗鮰魚片中Hx含量屬于Hx型。

        2.2 凍融循環(huán)過程中K值的變化

        由圖3可知,隨著凍融循環(huán)次數(shù)的增加,K值呈顯著上升趨勢(P<0.05)。宰殺時,鮰魚片K值為5.33%;第1次凍融循環(huán),K值為15.33%,鮰魚片處于優(yōu)良鮮度范圍內(nèi);第2次凍融循環(huán),K值達(dá)到28.94%,鮰魚片處于中等鮮度范圍內(nèi);第3次凍融循環(huán),K值變化極顯著(P<0.01),達(dá)到67.95%,鮰魚片已進(jìn)入腐敗階段;第5次凍融循環(huán),K值為93.96%,鮰魚片已完全腐敗。

        小寫字母不同表示存在顯著性差異(P<0.05)圖3 凍融循環(huán)過程中鮰魚片K值的變化Figure 3 Change of K value in catfish fillets during the freeze-thaw cycle

        凍融循環(huán)過程中,各種內(nèi)源性酶的作用及嗜冷微生物的生長繁殖造成ATP關(guān)聯(lián)化合物含量的變化,進(jìn)而造成K值的變化。其中,IMP含量的下降和Hx含量的上升是K值變化的主要因素。第3次凍融循環(huán),由于IMP顯著下降,Hx顯著上升,最終造成K值極顯著升高(P<0.01)。姜楊等[1]研究表明,草魚冷藏15 d,新鮮度K值達(dá)80%,與鮰魚凍融循環(huán)4次的相當(dāng);蔣晨毓等[31]研究表明,鳙魚冷藏16 d,新鮮度K值達(dá)90%,與鮰魚凍融循環(huán)5次的相當(dāng)。

        2.3 新鮮度近紅外模型的建立及驗證

        2.3.1 新鮮度近紅外模型的建立 120份凍融循環(huán)鮰魚片樣品的新鮮度K值最小為4.88%,最大為95.10%,校正集和驗證集的K值數(shù)據(jù)范圍均符合建立近紅外定量建模的需求。

        由圖4可知,不同樣本的譜圖形狀極其相似,1 000~2 500 nm內(nèi)均有明顯吸收峰,其中2 000~2 500 nm范圍內(nèi)較為分散,1 000~1 400 nm范圍內(nèi)較為接近。1 150~1 200,1 400~1 450,1 900~1 950 nm處吸收峰為O—H鍵的倍頻及合頻吸收,受樣品中水分的影響,因魚肉中水分含量遠(yuǎn)超蛋白質(zhì)及脂肪等,因此O—H鍵的吸收峰非常明顯;1 500~1 550 nm處為N—H鍵伸縮振動產(chǎn)生的合頻吸收,受樣品中蛋白質(zhì)或氨基酸相關(guān)組分的影響;1 170~1 250 nm處為C—H鍵的倍頻吸收,受樣品中脂肪的影響。魚肉新鮮度的變化往往伴隨著水分、蛋白質(zhì)和脂肪含量的變化,其光譜變化為這些官能團(tuán)吸收峰的綜合表現(xiàn)。

        圖4 120份鮰魚片樣品近紅外光譜圖Figure 4 NIR spectra of 120 catfish samples

        由表2可知,濾波擬合法(SG)聯(lián)合標(biāo)準(zhǔn)正態(tài)變換(SNV)處理的模型的校正和預(yù)測決定系數(shù)最高,校正和預(yù)測均方根誤差最低,模型預(yù)測效果最佳。

        由圖5可知,模型預(yù)測決定系數(shù)R2為0.938 1,預(yù)測均方根誤差RMSEP為1.49,說明預(yù)測值和實測值差距較小,模型效果較好。

        表2 建模條件優(yōu)化Table 2 Optimization of conditions for establishing calibration model

        圖5 鮰魚片新鮮度校正模型和交叉驗證模型的實測值和預(yù)測值相關(guān)圖Figure 5 Correlation graph of measured and predicted values of the corrected model and cross-validation model for catfish fillets freshness

        利用近紅外定量模型對樣品集的近紅外光譜數(shù)據(jù)進(jìn)行預(yù)測,計算該樣品的新鮮度K值,并與該樣品的實測值進(jìn)行比較,驗證該模型的準(zhǔn)確性。20份驗證集樣品的t=0.964 272

        2.3.2 新鮮度近紅外模型的驗證 為驗證PLS模型的預(yù)測精確度,將未參與建模的20份驗證樣品組成的驗證集代入模型進(jìn)行驗證,并將模型預(yù)測值與實測值進(jìn)行比較分析,其結(jié)果見表3,樣本方差分析見表4。

        由表4可知,F(xiàn)

        表3 鮰魚片新鮮度模型預(yù)測值與實測值比較Table 3 Comparison of predicted value and measured value of freshness of catfish fillets %

        表4 雙樣本方差分析Table 4 Two-sample analysis of variance

        3 結(jié)論

        測定了凍融循環(huán)過程中鮰魚片的新鮮度并建立了近紅外預(yù)測模型。結(jié)果表明,隨著凍融循環(huán)次數(shù)的增加,鮰魚片樣本的三磷酸腺苷含量先急劇下降后維持在較低水平;肌苷酸含量先上升后下降,有一個蓄積過程;次黃嘌呤含量顯著上升;K值顯著上升(P<0.05),凍融循環(huán)3次后,K值>60%,鮰魚片開始腐敗。近紅外光譜數(shù)據(jù)經(jīng)濾波擬合法及標(biāo)準(zhǔn)正態(tài)變換預(yù)處理后,采用偏最小二乘法建立的預(yù)測模型的預(yù)測值決定系數(shù)最高(R2=0.938 1),預(yù)測均方根誤差最低(RMSEP=1.49),效果最佳。驗證集樣品的t

        研究尚未探討凍融循環(huán)處理鮰魚片新鮮度變化的原因,后續(xù)可圍繞凍融循環(huán)處理對魚肉組織中三磷酸腺苷降解關(guān)鍵酶的釋放及活性變化等方面進(jìn)行研究,闡明鮰魚片在凍融循環(huán)處理過程中的新鮮度變化機(jī)理。此外,研究所建立的模型只能根據(jù)測定的近紅外光譜數(shù)據(jù)快速預(yù)測鮰魚片當(dāng)前新鮮度(K值),后續(xù)可結(jié)合貯運過程中溫度數(shù)據(jù)預(yù)測鮰魚片新鮮度變化趨勢,實現(xiàn)對低溫貯運條件的優(yōu)化與控制。

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