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        西北酸菜中吸附黃曲霉毒素B1乳酸菌株的篩選鑒定及穩(wěn)定性研究

        2020-08-20 00:42:58唐瓔孟憲剛鄧展瑞馬芮萍黃佳
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2020年15期

        唐瓔, 孟憲剛, 鄧展瑞, 馬芮萍, 黃佳

        1(甘肅省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院,甘肅 蘭州,730050) 2(蘭州交通大學(xué) 化學(xué)與生物工程學(xué)院,甘肅 蘭州,730070)

        黃曲霉毒素(aflatoxin,AFT)是一類毒性很強的真菌毒素,它主要是黃曲霉(Aspergillusflavus)和寄生曲霉(Aspergillusparasiticus)次級代謝產(chǎn)生的二氫呋喃氧雜萘鄰?fù)苌铮渲掳┬詠碓词窍愣顾亟Y(jié)構(gòu),毒性來源是二氫呋喃環(huán)結(jié)構(gòu)[1]。黃曲霉毒素B1(aflatoxin B1,AFB1)是已發(fā)現(xiàn)的AFT中毒性及致癌性最強的,1993年國際癌癥研究機構(gòu)(International Agency for Research on Cancer,IARC)將AFB1劃分為I類致癌物。AFB1對人畜有很強的致癌、致突變、致畸性,對肝臟及免疫系統(tǒng)有強抑制性[2-3]。目前對AFB1有效的脫毒方式有物理、化學(xué)、生物和基因干預(yù)4種方式。物理、化學(xué)、基因干預(yù)等方法會產(chǎn)生有毒副產(chǎn)物或改變物質(zhì)原有性狀,破壞食品品質(zhì)[4-6]。生物脫毒法可以有效地去除AFB1,其有很強的特異性。

        TAHEUR等[12]從開菲爾培養(yǎng)物中分離出對AFB1吸附和生物轉(zhuǎn)化能力強的乳酸桿菌,當pH值為4.8時,其在牛奶中能吸附82%的AFB1,在解吸實驗后仍能吸附65%的AFB1。黃麗[13]從中國傳統(tǒng)乳制品中分離出1株植物乳桿菌,吸附率為59.44%,解吸后保留20.66%的吸附率。本實驗從西北酸菜中分離出AFB1脫毒菌株,豐富AFB1脫毒菌株種類,研究菌株吸附穩(wěn)定性,體外模擬胃液消化,探究菌株-AFB1復(fù)合體代謝過程穩(wěn)定性。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料

        1.1.1 菌株來源

        2019年7月~8月采集甘肅蘭州、天水、白銀、定西等地市售西北酸菜樣品,實驗室前期研究西北酸菜發(fā)酵主導(dǎo)菌株為乳酸菌、酵母菌。CARLOS等[14]研究發(fā)現(xiàn),乳酸菌對AFB1具有吸附能力,可以使AFB1脫毒;劉暢等[15]首次篩選出吸附率達81.16%的釀酒酵母Y1。試驗從樣品中分離純化具有典型菌落特征的菌株,初步篩選西北酸菜中具有AFB1脫毒性能的菌株[16-17]。

        1.1.2 主要試劑

        (1)基礎(chǔ)培養(yǎng)基

        MRS培養(yǎng)基(CM188)、莫匹羅星鋰鹽(P-109)、半胱氨酸鹽酸鹽(P-03)、MC培養(yǎng)基(CM156)、磷酸鹽緩沖液(CM1022)、乳酸桿菌生化鑒定套裝(S021)、嗜熱鏈球菌生化鑒定套裝(S022)、營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基(CM107)、馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(CM123)、馬鈴薯-葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(CM123A)、緩沖蛋白胨水(CM201),北京陸橋技術(shù)股份有限公司。

        (2)基因提取、擴增試劑

        DNA提取試劑盒、核酸多重PCR檢測試劑盒,大連寶生物工程有限公司;核酸染料GS101-01,GELStain;AFB1標準品,TMstandard;二氯甲烷、甲醇、乙晴、苯、鹽酸均為色譜純、Sigma;NaCl(分析純),科密歐。

        (3)酶類

        胃蛋白酶,Sigma,USA。

        1.2 儀器設(shè)備

        1300 SERLES A2-1379型生物安全柜,賽默白世爾(蘇州)儀器有限公司;QTRAP 4500超高效液相色譜儀串聯(lián)三重四級桿質(zhì)譜聯(lián)用儀,SCIEX;KH30R-II高速冷凍離心機,湖南凱達科學(xué)儀器有限公司;DJS-2016R全溫度恒溫搖床,上海世平實驗設(shè)備有限公司;PTY-623電子天平,梅特勒-托利多儀器上海有限公司;PYC-16恒溫培養(yǎng)箱,美國精騏有限公司;T100 PCR儀、PowerPac Basic電泳儀、GEL DOC XR+凝膠成像系統(tǒng),BIO-RAD。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 AFB1脫毒菌株的初篩

        AFB1-MRS溶液:將AFB1標準品用V(苯)∶V(乙晴)=96∶4的溶液稀釋到目標濃度,加入MRS(pH 7.4)溶液中,75 ℃水浴加熱20 min,蒸發(fā)溶液中苯-乙晴,制備質(zhì)量濃度為10 ng/mL的AFB1-MRS溶液。

        將具備典型菌落特征的菌株分離純化,懸浮于磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS) (pH 7.4)中,制備成活菌濃度為109CFU/mL的菌懸液,接種于質(zhì)量濃度為10 ng/mL的AFB1-MRS溶液中,孵育72 h后,離心(12 000 r/min,15 min,4 ℃),收集上清液,對上清液中殘留的AFB1含量用超高效液相色譜-三重四級桿串聯(lián)質(zhì)譜(ultra performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry,UPLC-MS/MS)方法進行分析,測量菌株脫去毒素的效率。選擇脫毒率最高的菌株進行下一步鑒定和脫毒機制研究。按公式(1)計算AFB1脫毒率:

        (1)

        式中:S,AFB1脫毒率,%;C,接種菌株孵育后樣品中殘留AFB1的峰面積;F,對照樣品AFB1的峰面積。

        1.3.2 樣品前處理方法及UPLC-MS/MS測定方法條件

        樣品前處理方法:12 000 r/min離心15 min分離發(fā)酵液,上清液經(jīng)0.22 μm濾膜過濾后過免疫親和柱,用超純水洗濾2遍,然后用甲醇洗脫,收集洗脫液。

        UPLC-MS/MS方法條件:

        液相色譜:C18柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm);柱箱溫度:40 ℃;流動相(乙酸銨/甲醇)液相色譜梯度洗脫條件見表1[18]。

        表1 液相色譜梯度洗脫條件Table 1 Gradient elution conditions for liquidchromatography

        質(zhì)譜條件:電離方式:電噴霧電離(electrospray ionization,ESI+);檢測方式:多反應(yīng)監(jiān)測模式(multiple reaction monitoring,MRM);氣簾氣(CUR):35 psi;碰撞氣(CAD):medium;離子化電壓(IS):5 500 V;離子源溫度:550 ℃;噴霧氣(GSI):55 psi;輔助加熱器(GS2):60 psi。MRM參數(shù)見表2。

        表2 AFB1的質(zhì)譜檢測條件Table 2 Mass spectrum parameter of AFB1

        1.3.3 制備熱滅活菌

        將活菌懸液樣品在121 ℃高壓濕熱滅活20 min,滅菌物同時涂布MRS平板,36 ℃培養(yǎng)48 h作對照,驗證滅菌效果。

        1.3.4 菌株生長曲線

        篩選菌株接種于MRS液體培養(yǎng)基中,36 ℃恒溫振蕩培養(yǎng),每隔2 h測定菌株發(fā)酵液OD600值,以培養(yǎng)時間為橫坐標,發(fā)酵液OD600值為縱坐標,繪制菌株生長曲線[19]。

        1.4 高效脫毒菌株的鑒定

        1.4.1 形態(tài)學(xué)鑒定

        將1.3.1中篩選到的AFB1脫毒能力最強的菌株,活化2代后接種到營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基、MRS瓊脂培養(yǎng)基,36 ℃培養(yǎng)48~72 h后,形成菌株單菌落,革蘭氏染色后,油鏡觀察菌株形態(tài)。

        1.4.2 菌株生理生化鑒定

        依據(jù)《伯杰氏細菌鑒定手冊》[20]、《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[21],采用細菌生化鑒定試劑盒,對篩選出的菌株進行生理生化鑒定試驗。

        1.4.3 16S rRNA基因序列分析及構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹

        依據(jù)細菌DNA提取試劑盒說明書提取目標菌株DNA,采用試劑盒提供通用引物27F(5′-AGACTATGATCGTCGCACTG-3′),1541R(5′-AAGGAGGTGTACCTGCC-3′)由大連寶生物工程有限公司PCR擴增試劑盒提供。PCR反應(yīng)體系見表3。

        表3 PCR反應(yīng)體系條件Table 3 PCR reaction system condition

        將PCR產(chǎn)物送到上海生工生物有限公司測序,測序結(jié)果提交到NCBI進行BLAST分析,將目標序列與搜索到的同源序列在GenBank下載其模式菌株,用MEGA軟件中的N-J法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

        1.5 菌株-AFB1復(fù)合體穩(wěn)定性研究

        根據(jù)HERNANDEZ-MENDOZA等[22]研究,多數(shù)乳酸菌、酵母菌對AFB1脫毒機制是利用細胞壁的某些成分吸附AFB1,形成菌體-AFB1復(fù)合體,起到脫毒的效果[23]。菌株吸附通過非共價鍵連接AFB1毒素,吸附穩(wěn)定性由菌株特異性決定,試驗通過PBS洗脫,體外模擬胃部消化環(huán)境,研究已篩選到的優(yōu)勢菌株吸附穩(wěn)定性。

        1.5.1 PBS洗脫對菌株吸附穩(wěn)定性影響

        將篩選到的菌株經(jīng)脫毒試驗,離心得到沉淀,重懸于等體積的PBS溶液(pH 7.4)中,30 ℃振蕩20 min,5 000 r/min離心15 min,收集上清液,重復(fù)上述步驟6次,累積收集上清液,用UPLC-MS/MS法測定其中AFB1質(zhì)量濃度。利用公式(2)計算菌株脫毒穩(wěn)定性:

        (2)

        式中:M,菌株保留吸附率,%;ρ1,累積上清液中AFB1質(zhì)量濃度,ng/mL;ρ2,初始菌株復(fù)合AFB1質(zhì)量濃度,ng/mL。

        1.5.2 模擬體外胃液消化對菌株吸附穩(wěn)定性影響

        將吸附率高的菌株脫毒試驗后離心得到的沉淀,重懸于胃液模擬物(體積分數(shù)90%生理鹽水、體積分數(shù)5% 3 mg/mL胃蛋白酶鹽酸溶液、體積分數(shù)5% 0.1 mol/L HCl溶液)[24],36 ℃,200 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)3 h,每隔0.5 h,累計收集上清液,用UPLC-MS/MS法測定其中AFB1含量。利用1.5.1公式(2)計算菌株脫毒穩(wěn)定性。

        1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

        2 結(jié)果與分析

        2.1 菌種的篩選

        從35份西北酸菜樣品中分離出37株具有菌落特征的菌株,初步篩選出20株具有AFB1脫毒能力的菌株。菌株脫毒效率在18.37%~65.06%,不同菌株對AFB1脫毒能力有差異。由表4可知,菌株C2、C6、L12、P25活菌脫毒能力略高于熱滅活菌株;其余菌株熱滅活菌株脫毒能力高于活菌株,菌株編號為L25-2、P6、P16、C26-1活菌株與熱滅活菌株在脫毒率存在統(tǒng)計學(xué)顯著差異(P<0.05)。編號為L34-2的菌株脫毒能力最強,活菌脫毒率為66.41%,熱滅活菌株脫毒率為65.06%,選擇L34-2菌株進行菌種鑒定和脫毒機制的進一步研究。

        表4 菌株AFB1脫毒效率 單位:%

        2.2 菌株形態(tài)學(xué)及生理生化鑒定

        從35份西北酸菜樣品中分離到1株活菌AFB1脫毒率為66.41%的菌株L34-2,菌落呈乳白色,表面光滑濕潤,半透明,中央凸起,MRS平板培養(yǎng)有溶鈣圈,菌落大小為0.2~0.6 mm、G+,細胞短桿狀或短桿狀,呈鏈狀排列,無芽孢。菌株L34-2依據(jù)《乳酸細菌分類鑒定及實驗方法》[26]、《伯杰細菌鑒定手冊》[20]及《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[21]進行生理生化鑒定,將L34-2菌株初步鑒定為乳酸桿菌。菌株形態(tài)學(xué)見圖1,生理生化反應(yīng)見表5。

        a-菌落形態(tài);b-革蘭氏染色菌株形態(tài)圖1 菌株L34-2形態(tài)學(xué)特征Fig.1 Morphological properties of L34-2

        表5 菌株L34-2生理生化特征Table 5 Physiological and biochemical characteristics ofstain L34-2

        2.3 菌株L34-2生長曲線

        菌株36 ℃培養(yǎng),0~2 h時,菌株處于生長延滯期,2~6 h處于生長對數(shù)期,8~20 h,菌株生長處于平衡期,20 h后菌株OD600值緩慢下降,見圖2。

        圖2 菌株L34-2生長曲線(36 ℃)Fig.2 Growth curve of L34-2

        2.4 菌株16S rRNA基因序列分析及系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建

        菌株16S rRNA基因序列經(jīng)PCR擴增后,有1條長度大約1 500 bp左右的核苷酸片段被擴增出,如圖3所示。

        圖3 L34-2菌株P(guān)CR 16S rRNA擴增產(chǎn)物Fig.3 PCR amplification of 16S rRNA sequencesof strain L34-2

        將PCR基因擴增片段分離純化后測序。測序基因序列運用BLAST程序比對,在GenBank中下載與L34-2同源性較高的模式菌株。通過MEGA 7軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,選用2%核苷酸置換率,用N-J法構(gòu)建發(fā)育樹,并用bootstrap進行1 000次重復(fù)支持率。系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果如圖4所示,菌株L34-2與布氏乳桿菌(Lactobacillusbuchneri)(登錄號:FJ867641.1)相似度達到99%,結(jié)合L34-2菌株形態(tài)學(xué)特征、生理生化特點,鑒定L34-2菌株為布氏乳桿菌(Lactobacillusbuchneri)。將L34-2基因序列提交GenBank數(shù)據(jù)庫,注冊號為:HM151332。

        圖4 菌株L34-2系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree of stain L34-2

        2.5 菌株脫毒穩(wěn)定性研究

        2.5.1 PBS洗脫對菌株L34-2 AFB1脫毒穩(wěn)定性研究

        用PBS反復(fù)洗滌菌體-AFB1復(fù)合物,檢測AFB1釋放量,菌體洗脫后殘留吸附AFB1含量評價菌種L34-2對AFB1吸附能力穩(wěn)定性。由圖5可知,第1次洗脫過程中,AFB1釋放量最大,從初始吸附率66.4%降至60.1%;洗脫3次后,菌體-AFB1復(fù)合物吸附率保留54.5%,PBS洗脫6次后,吸附率保留53.7%。洗脫3和6次,菌體-AFB1復(fù)合物吸附率相似,單因素方差分析第3次及第6次洗脫后吸附率,兩者沒有統(tǒng)計學(xué)上的顯著差異(P=0.06>0.05),如表6所示。洗脫3次后,復(fù)合物AFB1釋放量趨于平衡,再洗脫只有微量的AFB1釋放出來。布氏乳桿菌L34-2菌體吸附AFB1是一個可逆的過程,該菌株在洗脫6次后,仍保留較高的吸附率,吸附率為53.7%,菌體-AFB1復(fù)合物的穩(wěn)定性取決于菌株自身的結(jié)合能力,具有菌株特異性,菌體L34-2吸附AFB1具有較好的穩(wěn)定性。

        圖5 洗脫對AFB1吸附穩(wěn)定性影響Fig.5 Effect of elution on AFB1-strain complex

        表6 洗脫次數(shù)單因素方差分析Table 6 One factor analysis of variance for elution test

        2.5.2 體外模擬胃液消化對菌株吸附穩(wěn)定性的影響

        體外模擬胃液消化過程,研究動物消化過程對菌株-AFB1復(fù)合體穩(wěn)定性的影響,評估復(fù)合體在食用后的食品安全性能。由圖6可知,菌株L34-2-AFB1復(fù)合體模擬體外胃液消化0.5~1 h時,解吸出8%吸附的AFB1毒素,消化1.5 h時,菌株-AFB1復(fù)合體釋放率最大,解吸出19.3%吸附的AFB1霉素。消化2~3 h,菌株-AFB1復(fù)合物釋放量趨于穩(wěn)定。根據(jù)單因素方差分析消化2與3 h后保留吸附率,兩者沒有統(tǒng)計學(xué)上的顯著差異(P=0.07>0.05),如表7所示,說明復(fù)合體經(jīng)胃液消化后,會有一定量AFB1被釋放出來,但是仍有大部分菌株-AFB1復(fù)合體保持吸附,胃液消化2 h后,釋放量趨于平衡,胃液消化3 h后,保留吸附率為45.9%,占初始吸附的69.1%。體外模擬胃液消化實驗表明,菌株-AFB1復(fù)合體具有較好的穩(wěn)定性。

        圖6 胃液消化對AFB1吸附穩(wěn)定性影響Fig.6 Effect of gastric juice digestion on AFB1-strain complex

        表7 消化時間單因素方差分析Table 7 One factor analysis of variance for variance

        3 結(jié)論與討論

        本研究從35份西北酸菜樣品中篩選到1株活菌AFB1吸附率達66.41%的菌株L34-2,經(jīng)形態(tài)學(xué)、生理生化及基因測序,鑒定為布氏乳桿菌(Lactobacillusbuchneri)。菌株L34-2吸附穩(wěn)定性研究結(jié)果表明,菌株吸附AFB1有較好的穩(wěn)定性,菌株-AFB1復(fù)合體在消化過程中仍有較強的吸附性,能保障食品安全。本研究從日常食用的西北酸菜中篩選AFB1吸附率高的布式乳桿菌,與多數(shù)生物降解AFB1篩選枯草芽孢桿菌、假單胞菌屬等菌株比較,菌株更適合在食品及飼料中吸附AFB1,更適應(yīng)機體消化系統(tǒng)。與TAHEUR等[12]篩選高吸附率的乳酸桿菌比較,菌株L34-2未優(yōu)化吸附率為66.41%,后續(xù)研究將通過優(yōu)化菌株發(fā)酵條件,提高菌株吸附能力及穩(wěn)定性。

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