李群英,李盛建,須添翼,解李春子,趙 亮,須秋萍 (.上海市寶山區(qū)羅店醫(yī)院,上海 0908;.上海市寶山區(qū)大場鎮(zhèn)祁連社區(qū)衛(wèi)生服務(wù)中心,上海 00444)
中藥代煎使用自動煎藥機,機械化生產(chǎn)效率高,加水量、煎藥時間容易控制,能做到煎藥規(guī)范化、標準化、數(shù)字化管理[1-2]。中藥處方中經(jīng)常有“先煎”、“后下”的藥材,需要特殊煎法時特別處理,一般先按要求煎好,分裝后保存,用時加入到復(fù)方中混合。提取液的放置環(huán)境溫度及時間長短都會影響到有效成分的穩(wěn)定性從而降低復(fù)方湯劑的藥效。目前中藥“后下”品種預(yù)煎液尚無完整的質(zhì)量控制過程,缺少有效的質(zhì)量監(jiān)管措施,難以保證中藥代煎液臨床療效的一致性。
肉桂為樟科(Lauraceae)樟屬植物肉桂(Cinnamomum cassiaPresl)的干燥樹皮,因含有豐富的芳香族、萜類、脂肪族等揮發(fā)油化合物,長時間煎煮會導(dǎo)致藥性損失,故中藥傳統(tǒng)煎煮方法將其作為“后下”品種。肉桂酸作為肉桂主要的藥效成分,具有抗菌、抗癌、發(fā)汗等作用[3-5]。本研究以“后下”品種肉桂預(yù)煎液為例,以有效成分含量變化作為觀察指標,采用HPLC法測定有效成分肉桂酸的含量,研究不同儲存溫度及時間對肉桂袋裝預(yù)煮液質(zhì)量穩(wěn)定性的影響,并為今后制訂“后下”中藥預(yù)煎液儲存規(guī)范提供一定的科學(xué)依據(jù)。肉桂酸有多種含量測定方法,包括HPLC法[6]、近紅外定量校正法[7]、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法[8]等,其中,HPLC法具有較多優(yōu)點,如速度快、分辨率高等[9]。因此,筆者首先考慮使用HPLC法測定肉桂預(yù)煎液中有效成分肉桂酸的含量。
美國Agilent公司1100系列HPLC儀(在線脫氣機、四元泵、自動進樣器、柱溫箱、二極管陣列檢測器);瑞士梅特勒-托利多公司 METYLER AE240型十萬分之一電子天平;上??茖?dǎo)超聲儀器公司SB 3200-T超聲發(fā)生器。
肉桂酸對照品(批號:6648,上海詩丹德生物科技有限公司);甲醇和乙腈均為色譜純(美國Merck公司),甲酸為色譜純(SIGMA 公司),水為超純水;肉桂預(yù)煎液(批號:191213,上海同濟堂藥業(yè))。
色譜柱為Agilent Zorbax C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流動相:0.1% 甲酸溶液-乙腈(60:40),比例流速 1.0 ml/min,柱溫 25 ℃;進樣量 5 μl;檢測波長:275 nm,分析時間:16 min。
2.2.1 對照品溶液
精密稱取肉桂酸對照品 10.21 mg,置于 10 ml容量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,得濃度為1.021 mg/ml的肉桂酸對照品儲備液,置冰箱4 ℃保存。
2.2.2 供試品溶液
取適量肉桂預(yù)煎液,12 000×g離心 5 min,取上清液濾過,取續(xù)濾液,即得。
取供試品和對照品溶液,按“2.1 色譜條件”項下進樣分析,得液相色譜圖,見圖1,肉桂酸的保留時間為13.8 min,色譜峰分離度均大于1.5,理論塔板數(shù)大于5 000。結(jié)果表明,肉桂酸色譜峰與其他成分色譜峰得到較好的分離。
圖 1 肉桂酸 HPLC 色譜圖
采用逐級稀釋法,精密量取適量對照品溶液,置于10 ml容量瓶中,加入甲醇定容,得到肉桂酸的濃度分別為10.21、20.42、51.05、102.10、204.20 μg/ml系列的對照品溶液,按“2.1”項下進樣。以濃度為橫坐標(Χ),色譜峰面積值為縱坐標(Y)進行線性回歸,得到線性回歸方程:Y=48.32Χ+8.819,r=0.999 9。結(jié)果表明肉桂酸在10.21~204.20 μg/ml范圍內(nèi)線性良好。
取低、中、高3 個濃度(20.42、51.05、102.10 μg/ml)對照品溶液,按“2.1”項下進樣分析,1 d內(nèi)重復(fù)測定3次,連續(xù)3 d測定,記錄色譜峰面積,考察日內(nèi)和日間精密度,結(jié)果肉桂酸日內(nèi)精密度RSD值分別為0.36%、0.96%、0.81%(n=3),日間精密度RSD值分別為1.67%、1.20%、1.10%;結(jié)果顯示該方法精密度符合方法學(xué)要求,儀器精密度良好。
取同一批次肉桂預(yù)煎液,共6份,按“2.2.2”項下方法操作制備供試品溶液,按“2.1”項下進樣分析,記錄峰面積,結(jié)果肉桂酸預(yù)煎液中肉桂酸峰面積的RSD為1.12%,表明該方法的重復(fù)性良好。
按“2.2.2”項下方法操作制備供試品溶液,分別在 0、4、8、12、24、48 h測定供試品溶液中肉桂酸的含量,考察供試品常溫下放置穩(wěn)定性,肉桂酸RSD為1.13%,結(jié)果表明樣品溶液在48 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。
精密吸取 1 ml肉桂預(yù)煎液,置于含 51.05 μg肉桂酸(氮氣揮干)離心管中,渦旋30 s,平行操作5份,按“2.2.2”項下方法操作制備供試品溶液,按“2.1”項下進樣分析,計算加樣回收率,結(jié)果如表1所示,肉桂酸的平均加樣回收率為98.9%(RSD=1.9%,n=5),結(jié)果表明該方法回收率良好。
取3袋肉桂預(yù)煎液于當日(第0天)測定肉桂酸的含量,按“2.2.2”項下方法操作制備溶液,按“2.1”項下進樣分析,以峰面積外標法計算含量。剩余袋裝藥液分組保存在 4 ℃(冷藏組)、25 ℃(常溫組)、40 ℃(高溫組)恒溫條件下,1、3、7、14、21、30 d后重復(fù)上述步驟,檢測肉桂酸的含量。應(yīng)用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)以(±s)表示。多組間差異比較采用單因素方差分析,兩組間差異比較采用LSD法,檢驗水準(α)為 0.05。結(jié)果如表2所示,與儲存第0天相比,常溫儲存21、30 d,高溫溫儲存 14、21、30 d 測得的肉桂酸含量均顯著降低(P<0.01),其他組未發(fā)現(xiàn)明顯變化(P>0.05)。
中藥材從固體飲片變?yōu)橐后w煎劑,質(zhì)量處于不穩(wěn)定狀態(tài),其后期的質(zhì)控和管理顯得尤為重要[10]。本實驗以本院常用“后下”品種肉桂為例,建立有效成分肉桂酸的HPLC含量測定方法,在所確定的實驗條件下,該分析方法快速、準確、方便;應(yīng)用該方法對其不同放置條件和時間的穩(wěn)定性進行系統(tǒng)考察,為制訂本院“后下”品種預(yù)煎液內(nèi)部質(zhì)量控制標準提供了實驗依據(jù)。
預(yù)實驗中比較了水、甲醇、乙腈、甲酸、銨鹽溶液等不同的流動相體系,最終選擇0.1%甲酸-乙腈(60:40)作為流動相進行等度洗脫,樣品中肉桂酸的待測成分峰形較好,與其他成分可達到基線分離。通過DAD進行全波長掃描分析肉桂酸的紫外光譜,275 nm波長下肉桂酸有較高吸收峰,出峰處無干擾成分,因此選用275 nm作為檢測波長。
將有效成分含量變化作為觀察指標,兼顧普通患者家庭環(huán)境溫度,分析考察放置環(huán)境和時間對肉桂預(yù)煎液穩(wěn)定性的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn)冷藏(4 ℃)儲存的藥液在 30 d 內(nèi)基本穩(wěn)定;常溫(25 ℃)儲存 21、30 d后,肉桂酸的濃度顯著下降,分別降到最初濃度的 89.9% 和 80.4%;高溫(40 ℃)儲存 14、21、30 d后,肉桂酸的濃度分別降到最初濃度的93.7%、82.3%和70.5%。由此可見,低溫保存肉桂酸較穩(wěn)定,冷藏有利于肉桂預(yù)煎液的穩(wěn)定性。
綜上,本實驗建立的分析方法為肉桂預(yù)煎液的質(zhì)量控制提供了一種可靠的方法,為后續(xù)制訂含量的質(zhì)量控制范圍奠定了基礎(chǔ),并為今后制訂“后下”中藥預(yù)煎液儲存規(guī)范提供了一定的科學(xué)依據(jù)。
表 1 加樣回收試驗結(jié)果
表 2 不同儲存條件下肉桂預(yù)煎液中肉桂酸含量的變化(±s,n=3,μg/ml)
表 2 不同儲存條件下肉桂預(yù)煎液中肉桂酸含量的變化(±s,n=3,μg/ml)
** P<0.01,與第0天比較。
組別14 21 30冷藏組(4 ℃) 47.27±0.66 47.09±0.73 47.64±1.08 46.51±0.65 46.13±0.73 46.33±0.68 46.28±1.14常溫組(25 ℃) 47.27±0.66 47.66±0.27 47.54±1.14 47.62±0.63 47.15±0.69 42.49±0.54** 38.02±0.60**高溫組(40 ℃) 47.27±0.66 47.30±0.22 47.18±0.61 47.07±0.69 44.38±0.66** 38.90±0.41** 33.31±0.56**儲存時間(t/d)0 1 3 7