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        油橄欖葉多酚的酶法提取及穩(wěn)定性研究

        2020-03-20 08:31:00清源趙燕張萬明
        中國調味品 2020年3期
        關鍵詞:油橄欖果膠酶橄欖

        清源 ,趙燕 ,張萬明*

        (1.西昌學院 農業(yè)科學學院,四川 西昌 615013;2.德昌鴻源農林科技發(fā)展有限公司,四川 德昌 615500)

        油橄欖(Oleaeuropaea)又名齊墩果,是世界著名的木本油料樹種,現(xiàn)已廣泛種植于我國四川、甘肅等地[1]。葉片是油橄欖產業(yè)發(fā)展過程中的主要副產物,一般被廢棄,但因其富含多酚類物質,可被功能食品、現(xiàn)代醫(yī)藥和保健行業(yè)所利用[2-4]?,F(xiàn)有研究如芒果皮多酚用于食品保鮮,香蕉皮多酚用于食品輔色、調味、酒水的澄清,迷迭香多酚抑制食源性致病菌李斯特菌,甘蔗皮原花青素的提取及抗氧化活性研究等,均展示出植物多酚的重要應用價值[5-8]。因此,開展以橄欖葉為原料提取多酚的研究并應用于食品、化妝品等行業(yè),不僅能有效減少橄欖葉的環(huán)境污染問題,還能延長油橄欖產業(yè)發(fā)展的鏈條,更好地創(chuàng)造經濟效益。

        目前,多酚提取工藝主要有溶劑提取法、微波和超聲波輔助法等,而利用生物酶提取多酚的方法具有成本低、使用方便、反應條件溫和、綠色環(huán)保等優(yōu)點,非常適合于工業(yè)化生產[9]。目前關于橄欖葉多酚的酶法提取研究還較少,值得探討。此外,目前關于油橄欖葉中多酚類物質穩(wěn)定性的研究報道也較少,而多酚穩(wěn)定性是人們在加工利用過程中必須考慮的問題,因此本文還探討了食品添加劑對油橄欖葉多酚的加工穩(wěn)定性。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        油橄欖葉(品種為“配多靈”), 2018年3月采自德昌鴻源農林科技發(fā)展有限公司橄欖基地,粉碎后過80目篩備用;ULUP-IV-10T型優(yōu)普系列超純水。

        果膠酶(40 U/mg)、纖維素酶(3 U/mg)、中性蛋白酶(60 U/mg)、木瓜蛋白酶(100 U/mg):北京索萊寶科技有限公司;沒食子酸、碳酸鈉、福林-酚試劑等:均為分析純;葡萄糖、蔗糖、阿斯巴甜、木糖醇、苯甲酸鈉、山梨酸鉀、亞硫酸鈉和過氧化氫:均為食品級。

        1.2 儀器與設備

        PHS-3C 型pH計 上海精密儀器儀表有限公司;ME204 型分析天平 瑞士梅特勒-托利多儀器(中國)有限公司;TU-1810 型紫外可見分光光度計 北京普析通用儀器有限責任公司;HW.SY21-K4C 型水浴恒溫振蕩器 北京市長鳳儀器儀表公司;純水機。

        1.3 方法

        1.3.1 多酚提取工藝

        油橄欖葉粉→加蒸餾水→調pH→酶解→沸水滅酶→冷卻→真空抽濾→濾液→沉淀物二次提取→合并兩次濾液→定容→粗多酚提取液→多酚得率測定。

        1.3.2 酶復配比例的篩選

        精密稱取4份油橄欖葉粉2.0 g,置于100 mL三角瓶中,分別加入4.0%(按橄欖葉粉質量)的纖維素酶、果膠酶、中性蛋白酶的復配酶,在酶解溫度為45 ℃、料液比1∶40(g/mL)、pH 6.0條件下,酶解30 min,以粗多酚得率為指標,以不加酶的樣品作為對照,優(yōu)選最佳的酶配比進行后續(xù)試驗。

        1.3.3 單因素試驗設計

        1.3.3.1 酶解時間對多酚得率的影響

        設定復配酶用量為4.0%,酶解溫度45 ℃,酶解 pH 值 6.0,料液比 1∶40(g/mL),探討酶解時間分別為30,40,50,60,70 min時對油橄欖葉粗多酚得率的影響。

        1.3.3.2 酶解溫度對多酚得率的影響

        設定復配酶用量為4.0%,酶解時間40 min,酶解 pH 值 6.0,料液比 1∶40(g/mL),探討酶解溫度分別為 40,45,50,55,60 ℃時對油橄欖葉粗多酚得率的影響。

        1.3.3.3 酶解pH值對多酚得率的影響

        設定復配酶用量為4.0%,酶解時間40 min,酶解溫度 50 ℃,料液比 1∶40(g/mL),探討酶解 pH 值分別為 3.0,4.0,5.0,6.0,7.0時對油橄欖葉粗多酚得率的影響。

        1.3.3.4 酶用量對多酚得率的影響

        設定酶解時間為40 min,酶解溫度50 ℃,酶解 pH 值 6.0,料液比 1∶40(g/mL),探討復配酶用量分別為 1.0%、3.0%、5.0%、7.0%、9.0%時對油橄欖葉粗多酚得率的影響。

        1.3.3.5 料液比對多酚得率的影響

        設定復配酶用量為5.0%,酶解時間40min,酶解溫度 50 ℃,酶解 pH值6.0,探討料液比1∶40、1∶50、1∶60、1∶70、1∶80(g/mL)時對油橄欖葉粗多酚得率的影響。

        1.3.4 均勻試驗設計

        根據(jù)單因素試驗結果,按照 U10(108)進行均勻設計試驗,得出油橄欖葉粗多酚的最佳酶解工藝。

        1.3.5 油橄欖葉粗多酚得率的計算

        采用福林酚法測定總酚。

        1.3.5.1 沒食子酸標準曲線的繪制

        以標準沒食子酸溶液濃度(mg/mL)為橫坐標X,吸光值Y為縱坐標,繪制標準曲線,得到回歸方程為Y=11.418X+0.0233,R2=0.9966。

        1.3.5.2 粗多酚得率的計算

        式中:B為油橄欖葉粗多酚得率,%;Y為多酚提取液濃度,mg/mL;V為多酚提取液體積,mL;n為稀釋倍數(shù);M為橄欖葉質量,g。

        1.3.6 食品添加劑對油橄欖葉粗多酚加工穩(wěn)定性的影響

        1.3.6.1 甜味劑

        在最佳提取條件下,用油橄欖葉粗多酚提取液將葡萄糖、蔗糖、木糖醇和阿斯巴甜配成濃度為0,2.5,5,10,20,50 mg/mL的溶液,搖勻,靜置后測定粗多酚含量。

        1.3.6.2 防腐劑

        在最佳提取條件下,用油橄欖葉粗多酚提取液將山梨酸鉀和苯甲酸鈉配成濃度為0,0.5,1,5,10,15 mg/mL的溶液,搖勻,靜置后測定粗多酚含量。

        1.3.6.3 還原劑

        在最佳提取條件下,用油橄欖葉粗多酚提取液將Na2SO3配成濃度為0,5,10,15,20 mg/mL的溶液,搖勻,靜置后測定粗多酚含量。

        1.3.6.4 氧化劑

        在最佳提取條件下,用油橄欖葉粗多酚提取液將H2O2配成濃度為0,7.5,15,22.5 mg/mL的溶液,搖勻,靜置后測定粗多酚含量。

        1.3.7 試驗結果統(tǒng)計與分析

        運用Excel和DPS軟件對試驗結果進行分析處理。

        2 結果與分析

        2.1 酶的復配比例篩選結果

        圖1 酶復配比例的篩選結果Fig.1 Screening results for compoundingproportions of enzymes

        由圖1可知,與無酶處理(對照)相比,4種酶配比均有不同程度提高橄欖葉多酚得率的作用。其中,纖維素酶∶果膠酶∶中性蛋白酶為1∶1∶2時多酚得率為1.58%且效果較其他3種更優(yōu),故選擇該復配比例作為油橄欖葉粗多酚的后續(xù)提取。

        2.2 單因素試驗結果

        2.2.1 酶解時間對粗多酚得率的影響

        圖2 酶解時間對多酚得率的影響Fig.2 Effect of enzymolysis time on the yield of polyphenols

        由圖2可知,30~40 min內油橄欖葉多酚的得率隨著時間的延長迅速增大,可能是因為開始時底物濃度相對較高,酶解破壞細胞結構,有利于傳質過程的發(fā)生[10]。40 min時得率達最大值,隨時間延長,提取得率反而略有下降,長的處理時間易引起多酚物質的氧化分解,使提取量降低。

        2.2.2 酶解溫度對粗多酚得率的影響

        圖3 酶解溫度對多酚得率的影響Fig.3 Effect of enzymolysis temperature on theyield of polyphenols

        由圖3可知,40~50 ℃ 時,油橄欖葉多酚得率隨著溫度的升高而增加,在 50 ℃處達到最大。之后即使升高溫度,提取效率也不再增加,反而下降。當溫度較低時,無法達到反應所需的活化能,因而反應速度較慢,多酚得率也較低;但是,當溫度較高時,酶活性逐漸喪失,反應速率減慢,多酚得率也降低[11]。

        2.2.3 酶解pH值對粗多酚得率的影響

        圖4 酶解pH值對多酚得率的影響Fig.4 Effect of enzymolysis pH on the yield of polyphenols

        由圖4可知,油橄欖葉多酚得率隨 pH 的增大而增加,當 pH 值為 6.0 時多酚得率達到最高,之后開始降低。當pH 較低時,中性蛋白酶的活性受到抑制;當 pH>6.0 時,纖維素酶、果膠酶的活性受到抑制[12]。而且多酚類物質在堿性條件下不穩(wěn)定,也是導致多酚含量下降的原因之一。因此,最適 pH 值為 6.0,中性蛋白酶、纖維素酶、果膠酶的活性均達到最大。

        2.2.4 酶用量對粗多酚得率的影響

        圖5 酶用量對多酚得率的影響Fig.5 Effect of enzyme dosage on the yield of polyphenols

        由圖5 可知,油橄欖葉多酚的得率隨酶用量的增加而增加,纖維素酶和果膠酶協(xié)同作用能有效破壞植物細胞壁與細胞間質,使胞內的物質快速溶出;中性蛋白酶能較好地破壞蛋白質等大分子物質,促進多酚更好地溶出[13]。當酶用量為5.0%時,油橄欖葉多酚得率達到最大。

        2.2.5 料液比對粗多酚得率的影響

        圖6 料液比對多酚得率的影響Fig.6 Effect of solid-liquid ratio on the yield of polyphenols

        由圖6可知,油橄欖葉多酚的得率隨料液比的增加呈上升的趨勢,在 1∶60(g/mL)處達到最大值。當料液比較小時,不利于傳質,短時間內多酚的浸出受到抑制,所以得率較低;而料液比較大時,水分的增加又使酶的濃度降低,酶與底物的接觸幾率下降,多酚得率也會降低[14]。

        2.3 均勻試驗結果

        2.3.1 均勻設計

        根據(jù)單因素試驗結果,選擇酶解時間、酶解溫度、pH 值、酶用量和料液比 5個因素的較優(yōu)水平,按照 U10(108)設計進行均勻試驗,因素與水平表見表1。

        表1 均勻試驗設計因素與水平表Table 1 Factors and levels of uniform experimental design

        2.3.2 均勻試驗結果與分析

        按照優(yōu)化之后的方法,每次提取油橄欖葉粉2.0 g,根據(jù)選定的均勻設計表,得出試驗結果,見表2。

        表2 均勻試驗結果Table 2 The results of uniform experiment

        運用DPS軟件進行二次多項式回歸分析,得到回歸方程為:Y=3.6685-0.9478X4+0.0102X5+0.0004X22+0.0873X42-0.0014X2X3-0.0019X2X4-0.0020X3X5+0.0016X4X5。對建立的模型進行檢驗可知,P=0.0057<0.01,說明結果極顯著。負相關系數(shù) R=0.99997,說明該模型與實際試驗擬合度高,能很好地擬合復合酶法提取橄欖葉多酚的工藝條件,方程有意義。

        對相關系數(shù)進行檢驗,結果見表 3。其中,X22的交互項系數(shù)達到極顯著水平(P<0.01),X4、X5的回歸系數(shù)和X42、X2X3、X2X4、X3X5、X4X5的交互項系數(shù)均達到了顯著水平(P<0.05),具有顯著的統(tǒng)計學意義。表明油橄欖葉多酚得率與各因素間并非簡單的線性關系,而是存在交互作用。由P值的大小可知,對油橄欖葉多酚得率影響的大小順序為:X22>X42>X4>X3X5>X2X3>X4X5>X5>X2X4。

        表3 相關系數(shù)及檢驗結果 Table 3 Correlation coefficients and test results

        分析得到復合酶法提取油橄欖葉粗多酚的理論得率是2.67%,最優(yōu)提取條件為:酶解時間39.96 min,酶解溫度 71.96 ℃,pH 值4.23,酶用量7.06%,料液比 1∶52.21(g/mL)。

        2.3.3 最佳工藝的確定及驗證

        為操作方便,設置最佳提取工藝條件為:酶解時間40 min,酶解溫度 72 ℃,pH 值4.2,酶用量7.1%,料液比 1∶52(g/mL)。經驗證,優(yōu)化條件下提取的油橄欖葉粗多酚得率為2.54%,比均勻試驗中的 10 組試驗結果都高,說明優(yōu)化結果具有指導意義。但是與回歸模型的預測值 2.67%有一定的誤差,相對誤差為 4.87%。該提取方法條件溫和,提取效率高。

        2.4 食品添加劑對橄欖葉粗多酚加工穩(wěn)定性的影響

        2.4.1 甜味劑

        圖7 甜味劑濃度對油橄欖葉多酚穩(wěn)定性的影響Fig.7 Effect of sweetener concentration on the stability of polyphenols from olive leaves

        由圖7可知,不同濃度的甜味劑對油橄欖葉多酚物質的穩(wěn)定性影響不同,在葡萄糖、蔗糖、阿斯巴甜和木糖醇溶液中的多酚穩(wěn)定性依次降低。當甜味劑溶液濃度在2.5~5.0 mg/mL時,多酚穩(wěn)定性在葡萄糖和蔗糖中的變化不大,但是隨著濃度的增加,多酚穩(wěn)定性在各種甜味劑中均降低。

        2.4.2 防腐劑

        圖8 防腐劑濃度對油橄欖葉多酚穩(wěn)定性的影響Fig.8 Effect of preservative concentration on the stability of polyphenols from olive leaves

        由圖8可知,在苯甲酸鈉和山梨酸鉀濃度均低于0.5 mg/mL時,多酚相對比較穩(wěn)定。當兩種防腐劑濃度高于1.0 mg/mL時,多酚穩(wěn)定性均變差。但是,苯甲酸鈉對油橄欖葉多酚穩(wěn)定性的整體表現(xiàn)不如山梨酸鉀。

        2.4.3 還原劑

        圖9 還原劑濃度對油橄欖葉多酚穩(wěn)定性的影響Fig.9 Effect of reductant concentration on the stability of polyphenols from olive leaves

        由圖9可知,隨著還原劑濃度的增加,多酚穩(wěn)定性逐漸降低。當還原劑濃度大于10 mg/mL時,對多酚穩(wěn)定性有較大影響。

        2.4.4 氧化劑

        圖10 氧化劑濃度對油橄欖葉多酚穩(wěn)定性的影響Fig.10 Effect of oxidant concentration on the stability of polyphenols from olive leaves

        由圖10可知,隨著氧化劑濃度的增加,多酚穩(wěn)定性逐漸降低。當氧化劑濃度大于15 mg/mL時,對油橄欖葉多酚穩(wěn)定性有較大破壞作用。

        3 結論

        以橄欖葉粗多酚得率為指標,對復合酶的最佳配比進行優(yōu)化。確定當使用纖維素酶∶果膠酶∶中性蛋白酶為1∶1∶2時,提取效果最佳,多酚得率為1.58%;在采用單因素和均勻試驗設計方法的基礎上,對酶法提取的工藝進行優(yōu)化,并確定橄欖葉粗多酚的最佳提取方案為酶解時間40 min,酶解溫度 72 ℃,pH 值4.2,酶用量7.1%,料液比 1∶52(g/mL)。通過測定食品添加劑對橄欖葉粗多酚穩(wěn)定性的影響,結果顯示:在葡萄糖、蔗糖、阿斯巴甜和木糖醇溶液中的穩(wěn)定性依次降低,高添加量的糖類對橄欖葉多酚穩(wěn)定性均有較大影響;低濃度山梨酸鉀中多酚穩(wěn)定性較好,山梨酸鉀對多酚穩(wěn)定性整體優(yōu)于苯甲酸鈉;隨著氧化劑和還原劑濃度的增加,多酚穩(wěn)定性逐漸降低。其中,高濃度氧化劑和還原劑對多酚穩(wěn)定性破壞均有較大影響。

        近年來,植物多酚因具有抗菌、抗病毒、抗氧化、提高機體免疫力等藥用價值和保健功效,被廣泛用于食品、日用品、化妝品和藥品行業(yè),而開發(fā)簡單化、工業(yè)化的多酚提取技術成為未來急需研究的方向[15]。此外,多酚在產品中要更好地發(fā)揮作用,其穩(wěn)定性不容忽視。因此,本文研究結果可為橄欖葉多酚的工業(yè)化和規(guī)?;崛?,及其在食品、日用化妝品中的加工利用方案提供理論依據(jù)。

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