李紅春 肖雨沙 王小蘭 宋莉英
摘要:【目的】克隆南美蟛蜞菊肌動(dòng)蛋白基因(WtActin1),并進(jìn)行生物信息學(xué)及表達(dá)穩(wěn)定性分析,為南美蟛蜞菊耐熱耐冷功能基因表達(dá)及調(diào)控研究提供可靠的內(nèi)參基因?!痉椒ā縍ACE克隆WtActin1基因,通過(guò)在線(xiàn)生物信息學(xué)分析軟件對(duì)其氨基酸序列進(jìn)行分析,并利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)該基因在不同組織及溫度脅迫下的表達(dá)情況。【結(jié)果】克隆獲得的WtActin1基因cDNA全長(zhǎng)1682 bp(GenBank登錄號(hào)MN485900),其中5'非編碼區(qū)(5'-UTR)170 bp,3'非編碼區(qū)(3'-UTR)378 bp,開(kāi)放閱讀框(ORF)1134 bp,編碼377個(gè)氨基酸殘基。WtActin1蛋白分子量為41725.81 Da,理論等電點(diǎn)(pI)為5.31,不穩(wěn)定性指數(shù)(II)為37.48,親水性的平均值(GRAVY)為-0.166,為穩(wěn)定的親水性蛋白,無(wú)跨膜結(jié)構(gòu)域和無(wú)信號(hào)肽,主要存在于細(xì)胞質(zhì)中,具有Actin蛋白家族的典型特征結(jié)構(gòu),其二級(jí)結(jié)構(gòu)主要由α-螺旋、β-轉(zhuǎn)角、延伸鏈和無(wú)規(guī)則卷曲組成,三級(jí)結(jié)構(gòu)同源模型為嵌合肌動(dòng)(3ci5.1.A),與萵苣、橡膠草和洋薊的同源蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)高度相似。WtActin1基因與其他植物Actin基因核苷酸序列相似性在86.4%以上,其推導(dǎo)氨基酸序列相似性在94.0%以上。從基于Actin氨基酸序列相似性構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)可看出,WtActin1與同為菊科的萵苣LsActin7親緣關(guān)系最近,與傳統(tǒng)分類(lèi)學(xué)相吻合,其次是菊科的橡膠草TkActin1和錦葵科的棉花GhActin。WtActin1基因在南美蟛蜞菊根、莖、葉和花中的表達(dá)量均無(wú)顯著差異(P>0.05,下同),且在高、低溫脅迫下與正常溫度處理的表達(dá)量也均無(wú)顯著差異?!窘Y(jié)論】WtAtin1基因?qū)儆贏ctin基因家族成員,在不同組織及溫度脅迫下均能穩(wěn)定表達(dá),可作為內(nèi)參基因用于南美蟛蜞菊耐熱耐冷功能基因研究。
關(guān)鍵詞: 南美蟛蜞菊;肌動(dòng)蛋白基因(Actin);內(nèi)參基因;基因克隆;表達(dá)穩(wěn)定性;溫度脅迫
中圖分類(lèi)號(hào): S451 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):2095-1191(2020)11-2626-10
Cloning and expression stability analysis of WtActin1
gene from Wedelia trilobata
LI Hong-chun, XIAO Yu-sha, WANG Xiao-lan, SONG Li-ying*
(College of Life Sciences, Guangzhou University, Guangzhou ?510006, China)
Abstract:【Objective】In this study,actin gene WtActin1 was cloned from Wedelia trilobata and its bioinformatics and expression stability were analyzed to provide an appropriate reference gene for the expression and regulation of functional genes with cold and heat resistance in W. trilobata. 【Method】The WtActin gene from W. trilobata was cloned by RACE,its amino acid sequence was analyzed by bioinformatics software,and the expression of WtActin gene in different tissues and under temperature stress was detected by real-time quantitative PCR. 【Result】The full-length cDNA of WtActin1 gene was 1682 bp(GenBank accession number:MN485900),contained a 1134 bp open reading frame encoding(ORF) 377 amino acids residues,with 170 bp in the 5' non-coding region(5'-UTR) and 378 bp in the 3'-UTR. WtActin1 protein had a molecular weight of 41725.81 Da and a theoretical isoelectric point(pI) of 5.31,instability index(II) of 37.48,average hydrophilicity(GRAVY) of -0.166. It was a stable hydrophilic protein without transmembrane domain and signal peptide. It mainly existed in cytoplasm,and had typical characteristic structure of Actin gene family. Its secondary structure was mainly composed of α-helix,β-turn,extended chain and irregular coil,the three-level structure homology model was chimeric myokinesis(3ci5.1.A),which was highly similar to that of Lactuca sativa,Taraxacum kok-saghyz and Cynara cardunculus var. scolymus. Homology comparison with other plant Actin nucleotide ?sequences showed that it shared over 86.4% nucleotide sequence identity and 94.0% amino acid sequence identity with Actin in other plants. Based on phylogenetic tree of Actin amino acid sequence similaruty, WtActin1 was closely related to L.sativa(LsActin7) of Asteraceae,which was consistent with traditional taxonomy,followed by T. kok-saghyz(TkActin1) of Asteraceae and Gossypium hirsutum(GhActin) of Malvaceae. The expression level of WtActin1 gene was stable in root, stem, leaf and flower of W. trilobata and there was no significant difference among them(P>0.05, the same below),and there was no significant difference between high or low temperature stress and normal temperature. 【Conclusion】The WtActin1 gene cloned in this study is a member of Actin gene family and could be stably expressed in different tissues and under temperature stress. It can be used as an internal reference gene for the study of heat and cold tolerance genes of W. trilobata.
Key words: Wedelia trilobata; actin gene(Actin); internal reference gene; gene cloning; expression analysis; temperature stress
Foundation item: Guangdong Natural Science Foundation(2018A030313478); Guangzhou Science and Techno-logy Plan Project(201707010257)
0 引言
【研究意義】南美蟛蜞菊(Wedelia trilobata)又稱(chēng)三裂葉蟛蜞菊、穿地龍或地錦花,為菊科(Asteraceae)澤菊屬(Wedelia)的多年生草本植物,原產(chǎn)于南美洲及中美洲地區(qū),現(xiàn)廣泛分布于東南亞和太平洋許多國(guó)家和地區(qū),被世界自然保護(hù)聯(lián)盟(IUCN)列為世界最有害的100種外來(lái)入侵種之一(International Union for Conservation of Nature,2001;吳彥瓊等,2005)。據(jù)研究報(bào)道,南美蟛蜞菊對(duì)高溫、高光等逆境具有較強(qiáng)的適應(yīng)性(宋莉英等,2009,2017),可能蘊(yùn)藏著豐富的抗逆基因。開(kāi)展南美蟛蜞菊抗逆基因克隆和抗逆基因表達(dá)模式研究有利于從分子水平上揭示其生物學(xué)功能及入侵機(jī)理,而研究其抗逆基因表達(dá)模式通常需要一個(gè)穩(wěn)定表達(dá)的內(nèi)參基因進(jìn)行標(biāo)定。已有研究證實(shí),多數(shù)植物肌動(dòng)蛋白基因(Actin)具有高度的保守性(劉曦等,2010),因此,克隆獲得南美蟛蜞菊Actin基因,評(píng)估其作為內(nèi)參基因的可靠性,對(duì)開(kāi)展南美蟛蜞菊重要功能基因挖掘及表達(dá)調(diào)控研究具有重要意義?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】近年來(lái),南美蟛蜞菊的研究主要集中在繁殖特性(楊東娟和朱慧,2008;Si et al.,2014)、化感作用(Qiang et al.,2011;柯展鴻等,2014)及環(huán)境因子脅迫響應(yīng)(Qi et al.,2014 ;牛雨欣等,2019)等方面,而關(guān)于南美蟛蜞菊內(nèi)參基因的相關(guān)研究鮮見(jiàn)報(bào)道。目前,植物中較常見(jiàn)的內(nèi)參基因包括Actin基因、18S rRNA、28S rRNA、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)基因和肽鏈延伸因子(ef1-α)基因等(Zhang et al.,2017)。根據(jù)植物材料、組織和處理?xiàng)l件的不同,所選的內(nèi)參基因有所不同。由于Actin基因在植物不同組織器官內(nèi)表達(dá)水平高且相對(duì)穩(wěn)定,故被廣泛地用作植物功能基因表達(dá)分析的內(nèi)參基因(陳穎等,2003)。至今,已成功從木薯(Manihot esculenta Crantz)(許娟和羅興錄,2011)、厚藤(Ipomoea pescaprae)(郭艷等,2016)、山藥(Dioscorea oppositifolia)(龔明霞等,2016)、番杏(Tetragonia tetragonioides)(葉玉妍等,2018)等多種植物中克隆獲得Actin基因,且研究證實(shí)不同植物Actin基因編碼的氨基酸具有高度保守性(劉曦等,2010)。燕麥(Avena sativa)Actin蛋白與其他植物Actin蛋白的氨基酸序列相似性在93%以上(琚澤亮等,2016);馬纓杜鵑(Rhododendron delavayi)Actin蛋白與其他植物Actin蛋白的氨基酸序列相似性在97%以上(孫威等,2018)?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】Actin是許多植物功能基因表達(dá)檢測(cè)的理想內(nèi)參基因,但至今鮮見(jiàn)有關(guān)南美蟛蜞菊Actin基因克隆及表達(dá)分析的研究報(bào)道?!緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】利用RACE克隆南美蟛蜞菊Actin基因(WtActin1),對(duì)其進(jìn)行生物信息學(xué)分析,并利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)其在不同組織及溫度脅迫下的表達(dá)穩(wěn)定性,為南美蟛蜞菊耐熱耐冷功能基因表達(dá)及調(diào)控研究提供可靠?jī)?nèi)參基因。
1 材料與方法
1. 1 試驗(yàn)材料
南美蟛蜞菊采自廣州大學(xué)校園??俁NA提取試劑盒(MiniBEST Plant RNA Extraction Kit)、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(PrimeScriptTM RT reagent Kit with gDNA Eraser和PrimeScriptTM II 1st Strand cDNA Synthesis Kit)、質(zhì)粒提取試劑盒(MiniBEST Plasmid Purification Kit Ver.4.0)、TB Green? Premix Ex TaqTM II熒光定量PCR試劑盒、克隆載體pMD19-T、TDT酶、PrimeSTAR Max高保真DNA聚合酶及DNA凝膠回收試劑盒均購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司(TaKaRa)。大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞為廣州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室制備保存。主要儀器設(shè)備:人工氣候箱(RXZ-500E-LED智能型,寧波江南儀器廠)、PCR儀(Bio-Rad,美國(guó))、電泳儀(北京君意東方電泳設(shè)備有限公司)、分光光度計(jì)(Biotek,美國(guó))、凝膠成像分析系統(tǒng)(上海比朗儀器制造有限公司)、實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(ABI 7000,美國(guó))。
1. 2 試驗(yàn)方法
1. 2. 1 樣品采集及脅迫處理 對(duì)自然生長(zhǎng)的南美蟛蜞菊帶芽莖段進(jìn)行扦插繁殖,采集成熟期植株的根、莖、葉和花等4種組織。此外,選取生長(zhǎng)健康、長(zhǎng)勢(shì)一致的植株分別進(jìn)行低溫(4 ℃)和高溫(42 ℃)脅迫處理,并于脅迫0、1、3、6、12和24 h時(shí)采集其葉片,以正常溫度下生長(zhǎng)的植株為對(duì)照。以上樣品均設(shè)3次重復(fù),采集后立即用液氮處理,于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1. 2. 2 總RNA提取 采用植物總RNA提取試劑盒提取南美蟛蜞菊總RNA。使用核酸蛋白分析儀測(cè)定總RNA濃度和純度,并利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)其提取質(zhì)量和降解情況,將符合要求的總RNA保存于-80 ℃冰箱備用。
1. 2. 3 引物設(shè)計(jì)及合成 根據(jù)前期南美蟛蜞菊轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),篩選出Actin基因的部分序列,設(shè)計(jì)中間片段引物(WAIF/WAIR)進(jìn)行擴(kuò)增,并進(jìn)行序列比對(duì),以確定目的基因的中間片段。根據(jù)基因中間片段序列,設(shè)計(jì)3條5'-RACE特異性引物和2條3'-RACE特異性引物(表1)用于基因克隆和實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)。引物委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
2. 4 WtActin1蛋白亞細(xì)胞定位和磷酸化位點(diǎn)預(yù)測(cè)結(jié)果
TargetP 1.1 Server預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,WtActin1蛋白主要分布于細(xì)胞質(zhì)中,與PSORT Ⅱ預(yù)測(cè)結(jié)果一致,推測(cè)其定位于細(xì)胞質(zhì)中。磷酸化位點(diǎn)預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,WtActin1蛋白共有35個(gè)磷酸化位點(diǎn),包括17個(gè)絲氨酸激酶磷酸化位點(diǎn)、10個(gè)蘇氨酸激酶磷酸化位點(diǎn)和8個(gè)酪氨酸激酶酸磷酸化位點(diǎn)(圖4),磷酸化位點(diǎn)主要以絲氨酸的形式存在,故推測(cè)WtActin1蛋白是以絲氨酸為主、蘇氨酸為輔的磷酸化修飾參與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控。
2. 5 WtActin1蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果
WtActin1蛋白含有多個(gè)Actin保守區(qū)域,且含有Actin家族典型的結(jié)構(gòu)域NBD_sugar-kinase_HSP70_ actin(圖5),說(shuō)明其為Actin蛋白家族成員。WtActin1蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)主要由α-螺旋、β-轉(zhuǎn)角、延伸鏈和無(wú)規(guī)則卷曲組成,分別占36.07%、22.55%、6.90%和34.48%(圖6)。WtActin1蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果與其三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果相互印證。該蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)同源模型(圖7)為嵌合肌動(dòng)(3ci5.1.A),氨基酸序列相似性達(dá)90.9%,且與萵苣(Lactuca sativa)、橡膠草(Taraxacum kok-saghyz)和洋薊(Cynara cardunculus)的同源蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)高度相似。
2. 6 WtActin1基因序列同源性分析及系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)
將WtActin1基因核苷酸序列及其推導(dǎo)氨基酸序列在NCBI上進(jìn)行同源比對(duì)分析,結(jié)果顯示,WtActin1基因核苷酸序列與萵苣LsActin7基因相似性最高,為92.8%;其次是甜葉菊(Stevia rebaudiana)SrActin基因和向日葵(Helianthus annuus)HaActin基因,均達(dá)91.0%;與其他植物Actin基因核苷酸序列的相似性也在86.4%以上。WtActin1蛋白與萵苣Actin蛋白的氨基酸序列相似性最高,達(dá)100.0%;其次是洋薊和薇甘菊(Mikania micrantha),分別為99.7%和99.4%;與其他植物Actin氨基酸序列的相似性也在94.0%以上。氨基酸序列多重比對(duì)分析結(jié)果顯示,9種植物的Actin均有366個(gè)氨基酸位于保守區(qū)域,非保守氨基酸僅有11個(gè)(圖8),說(shuō)明植物Actin在進(jìn)化過(guò)程中十分保守。
基于Actin氨基酸序列相似性構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)(圖9)顯示,WtActin1與同為菊科的萵苣LsActin7親緣關(guān)系最近,與傳統(tǒng)分類(lèi)學(xué)相吻合,其次是菊科的橡膠草TkActin1和錦葵科的棉花(Gossy-pium hirsutum)GhActin,親緣關(guān)系最遠(yuǎn)的是茄科的番茄(Solanum lycopersicum)SlActin7和豆科的木豆(Cajanus cajan)CcActin7。
2. 7 WtActin1基因表達(dá)分析結(jié)果
從實(shí)時(shí)熒光定量PCR熔解曲線(xiàn)(圖10-A~圖10-C)可看出,WtActin1基因在正常溫度、低溫和高溫處理下,實(shí)時(shí)熒光定量PCR熔解曲線(xiàn)均為單一的信號(hào)峰,無(wú)引物二聚體和非特異性擴(kuò)增,表明引物設(shè)計(jì)特異性強(qiáng)。制作的標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)回歸系數(shù)(R2)為0.99557(圖10-D),表明稀釋倍數(shù)與Ct值呈良好的線(xiàn)性關(guān)系,擴(kuò)增效率為94.04%,說(shuō)明引物設(shè)計(jì)合理,符合實(shí)時(shí)熒光定量PCR的要求,試驗(yàn)結(jié)果可靠。
實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果(圖11-A)顯示,WtActin1基因在根、莖、葉和花中均有表達(dá),且表達(dá)量均無(wú)顯著差異(P>0.05,下同),說(shuō)明該基因表達(dá)不具有組織特異性。在高溫和低溫脅迫處理下,WtActin1基因在葉片中的表達(dá)量略有波動(dòng),但均無(wú)顯著差異(圖11-B),表明WtActin1基因的表達(dá)受溫度影響較小,可用作溫度應(yīng)答功能基因研究的內(nèi)參基因。
3 討論
Actin是真核細(xì)胞中普遍存在的一種古老蛋白,是細(xì)胞骨架微絲的主要成分,參與真核細(xì)胞內(nèi)許多重要的生理化學(xué)活動(dòng),如細(xì)胞分裂、運(yùn)動(dòng)、遷移、形態(tài)維持、信號(hào)傳導(dǎo)和物質(zhì)運(yùn)輸?shù)龋╓en et al.,2014)。本研究從南美蟛蜞菊中克隆得到1個(gè)Actin家族基因(WtActin1),其cDNA全長(zhǎng)為1682 bp,包含1個(gè)1134 bp的ORF,編碼377個(gè)氨基酸殘基,與GenBank已公布的其他植物Actin基因核苷酸序列相似性均在86.4%以上,推導(dǎo)氨基酸序列相似性均在94.0%以上,表明植物Actin基因無(wú)論核苷酸序列還是其推導(dǎo)氨基酸序列均具有高度的保守性(陳鵬飛等,2009;王舟等,2010)。此外,WtActin1蛋白含有Actin家族典型的結(jié)構(gòu)域,且與萵苣、橡膠樹(shù)和洋薊Actin蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)高度相似,進(jìn)一步證明本研究克隆獲得的WtActin1基因是Actin基因家族成員。從基于Actin氨基酸序列相似性構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)也可看出,WtActin1與同為菊科的萵苣LsActin7親緣關(guān)系最近,與傳統(tǒng)分類(lèi)學(xué)相吻合,其次是菊科的橡膠草TkActin1和錦葵科的棉花GhActin,故推測(cè)這些蛋白生物學(xué)功能相似。
南美蟛蜞菊作為一種外來(lái)入侵植物,短期內(nèi)在我國(guó)華南地區(qū)泛濫成災(zāi),可能蘊(yùn)含著豐富的抗逆基因,在研究其抗逆基因的表達(dá)模式及調(diào)控機(jī)制時(shí),選擇合適的內(nèi)參基因是實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性的必要條件。Actin基因同源性和保守性均較高,在高等植物中常被作為標(biāo)準(zhǔn)基因研究未知基因(Mccurdy et al.,2001)。雖然植物Actin基因在核苷酸序列上高度保守,但在不同組織中的表達(dá)存在一定差異。擬南芥(Arabidopsis thaliana)AtACT1基因在成熟花粉、生長(zhǎng)中的的花粉管、胚珠等不同組織中的表達(dá)水平具有顯著差異(Kandasamy et al.,2002)。本研究結(jié)果顯示,WtActin1基因在南美蟛蜞菊的根、莖、葉和花中均能穩(wěn)定表達(dá),且表達(dá)水平基本一致,無(wú)明顯變化,與太子參(Pseudostellaria heterophylla)PhACT2基因在不同組織中穩(wěn)定表達(dá)的結(jié)果(丁鈴等,2017)一致?;诒狙芯繉?shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果推測(cè)WtActin1為組成型表達(dá)基因,可作為南美蟛蜞菊功能基因組織特異性表達(dá)研究的可靠?jī)?nèi)參基因。大量研究表明,不同植物的Actin基因在不同脅迫條件下表達(dá)穩(wěn)定性也不同。景寧木蘭(Magnolia sinostellata)Actin基因在熱脅迫下表達(dá)不穩(wěn)定(王倩穎等,2019),但狗尾草(Setaria viridis)Actin基因在干旱和鹽脅迫下表達(dá)均十分穩(wěn)定(張麗麗等,2019)。本研究對(duì)不同溫度脅迫條件下WtActin1基因的表達(dá)穩(wěn)定性進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示,WtActin1基因表達(dá)受溫度影響較小,表達(dá)較穩(wěn)定,與花椰菜(Brassica oleracea)BobACT基因在溫度脅迫下表達(dá)較穩(wěn)定的研究結(jié)果(林琿等,2019)一致??梢?jiàn),WtActin1基因在不同組織及溫度脅迫下均能穩(wěn)定表達(dá),適合作為內(nèi)參基因用于南美蟛蜞菊耐熱耐冷功能基因功能研究。該結(jié)論填補(bǔ)了南美蟛蜞菊內(nèi)參基因研究領(lǐng)域的空白,豐富了高等植物Actin基因數(shù)據(jù)庫(kù),為進(jìn)一步研究南美蟛蜞菊對(duì)溫度耐受性相關(guān)基因的表達(dá)模式及調(diào)控機(jī)理的研究提供可靠?jī)?nèi)參基因。今后還應(yīng)深入研究南美蟛蜞菊GAPDH、ef1-α和18S RNA等內(nèi)參基因在不同脅迫處理下的表達(dá)穩(wěn)定性,以豐富南美蟛蜞菊的內(nèi)參基因庫(kù),提高重要功能基因表達(dá)的穩(wěn)定性、重復(fù)性和準(zhǔn)確性。
4 結(jié)論
WtAtin1基因是Actin基因家族成員,在不同組織及受溫度脅迫下均能穩(wěn)定表達(dá),可作為內(nèi)參基因用于南美蟛蜞菊耐熱耐冷功能基因研究。
參考文獻(xiàn):
陳鵬飛,劉雪梅,宋福南,劉興舜,劉霓,金微微,劉威. 2009. 白樺肌動(dòng)蛋白(Actin)基因全長(zhǎng)cDNA克隆與序列分析[J]. 植物研究,29(3):339-345. [Chen P F,Liu X M,Song F N,Liu X S,Liu N,Jin W W,Liu W. 2009. Clo-ning and sequence analysis of full-length cDNA of Actin gene from birch(Betula platyphylla Suk.)[J]. Bulletin of Botanical Research,29(3):339-345.]
陳穎,王剛,趙俊霞. 2003. 高等植物體內(nèi)的肌動(dòng)蛋白[J]. 生物學(xué)通報(bào),38(1):13-15. [Chen Y,Wang G,Zhao J X. 2003. Actin in higher plants[J]. Bulletin of Biology,38(1):13-15.]
丁鈴,江維克,周濤,龍登凱,鄭偉,李軍,肖承鴻. 2017. 太子參肌動(dòng)蛋白基因PhACT2的全長(zhǎng)cDNA克隆與生物信息學(xué)分析[J]. 分子植物育種,15(2):460-467. [Ding L,Jiang W K,Zhou T,Long D K,Zheng W,Li J,Xiao C H. 2017. Cloning and bioinformatic analysis of full-length cDNA of PhACT2 from Pseudostellaria heterophylla[J]. Molecular Plant Breeding,15(2):460-467.]
龔明霞,周蕓伊,王愛(ài)勤,羅海玲,何龍飛. 2016. 山藥Actin基因片段的克隆及表達(dá)分析[J]. 生物技術(shù)通報(bào),32(7):73-80. [Gong M X,Zhou Y Y,Wang A Q,Luo H L,He L F. 2016. Cloning and expression analysis of Actin gene fragment from Dioscorea opposite[J]. Biotechnology Bu-lletin,32(7):73-80.]
郭艷,張美,夏快飛,簡(jiǎn)曙光,陳建通. 2016. 厚藤Actin基因片段的克隆及序列分析[J]. 氨基酸和生物資源,38(3):59-62. [Guo Y,Zhang M,Xia K F,Jian S G,Chen J T. 2016. Cloning and sequence analysis of Actin gene fragment from Ipomoea pea-caprae L.[J]. Amino Acid and Biotic Resources,38(3):59-62.]
琚澤亮,趙桂琴,周向睿. 2016. 燕麥Actin基因片段的克隆及序列分析[J]. 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),51(3):37-42. [Ju Z L,Zhao G Q,Zhou X R. 2016. Cloning and sequence analysis of Actin gene fragment from Avena sativa[J]. Journal of Gansu Agricultural University,51(3):37-42.]
柯展鴻,陳雁飛,惠苗,宋莉英. 2014. 南美蟛蜞菊和蟛蜞菊化感作用的比較研究[J]. 華南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),46(1):83-88. [Ke Z H,Chen Y F,Hui M,Song L Y. 2014. Comparative study on allelopathic effects of Wedelia trilobata and Wedelia chinensis[J]. Journal of South China Normal University(Natural Science Edition),46(1):83-88.]
林琿,朱海生,溫慶放,黃麗芳. 2019. 花椰菜BobACT基因的克隆及其作為內(nèi)參基因的研究[J]. 植物遺傳資源學(xué)報(bào),20(3):781-789. [Lin H,Zhu H S,Wen Q F,Huang L F. 2019. Molecular cloning of Actin gene and study on this gene as reference gene in cauliflower(Brassica oleracea var. botrytis L.)[J]. Journal of Plant Genetic Resources,20(3):781-789.]
劉曦,張少斌,汪澈. 2010. 植物肌動(dòng)蛋白功能的研究進(jìn)展[J]. 生物技術(shù)通報(bào),26(3):13-16. [Liu X,Zhang S B,Wang C. 2010. Research progress of plant actin function[J]. Biotechnology Bulletin,26(3):13-16.]
牛雨欣,寧磊,董必成,羅芳麗,李紅麗,于飛海. 2019. 異質(zhì)光照環(huán)境下克隆整合對(duì)南美蟛蜞菊和蟛蜞菊種間關(guān)系的影響[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào),39(22):8585-8594. [Niu Y X,Ning L,Dong B C,Luo F L,Li H L,Yu F H. 2019. Effects of clonal integration on interspecific interactions between Wedelia trilobata and W. chinensis in heterogeneous light environments[J]. Acta Ecologica Sinica,39(22):8585-8594.]
宋莉英,劉昭弟,李曉娜,肖雨沙,陳秀清,林益坤. 2017. 三裂葉蟛蜞菊、蟛蜞菊及其雜交種對(duì)模擬極端高溫的生理生態(tài)響應(yīng)[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào),26(2):183-188. [Song L Y,Liu Z D,Li X N,Xiao Y S,Chen X Q,Lin Y K. 2017. Eco-physiological responses of Wedelia trilobata,W. chinensis and their hybrid to simulated extreme high tempera-ture[J]. Ecology and Environmental Sciences,26(2):183-188.]
宋莉英,孫蘭蘭,舒展,李偉華,彭長(zhǎng)連. 2009. 夏季高光下入侵植物三裂葉蟛蜞菊葉片變紅的生理功能[J]. 生物多樣性,17(2):188-194. [Song L Y,Sun L L,Shu Z,Li W H,Peng C L. 2009. Physiological functions of the red leaves of Wedelia trilobata induced by high irradiance in summer[J]. Biodiversity Science,17(2):188-194.]
孫威,林建,申歡,李欲軻,馬玲,乙引. 2018. 馬纓杜鵑Actin基因片段的克隆及序列分析[J]. 貴州師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),36(5):69-73. [Sun W,Lin J,Shen H,Li Y K,Ma L,Yi Y. 2018. Cloning and sequence analysis of Actin gene fragment from Rhododendron delavayi[J]. Journal of Guizhou Normal University(Natural Sciences),36(5):69-73.]
王倩穎,常鵬杰,申亞梅,張超,董彬,時(shí)寶柱. 2019. 景寧木蘭熱脅迫下實(shí)時(shí)熒光定量PCR內(nèi)參基因的篩選[J]. 浙江農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào),36(5):935-942. [Wang Q Y,Chang P J,Shen Y M,Zhang C,Dong B,Shi B Z. 2019. Reference genes for quantitative PCR in Magnolia sinostellata with heat stress[J]. Journal of Zhejiang A & F University,36(5):935-942.]
王舟,宗俊勤,宣繼萍,郭愛(ài)桂,劉建秀. 2010. 結(jié)縷草肌動(dòng)蛋白基因全長(zhǎng)cDNA的克隆及序列分析[J]. 草業(yè)學(xué)報(bào),19(6):154-163. [Wang Z,Zong J Q,Xuan J P,Guo A G,Liu J X. 2010. Cloning and sequence analysis of full length cDNA of an Actin gene from Zoysia japonica[J]. Acta Prataculturae Sinica,19(6):154-163.]
吳彥瓊,胡玉佳,廖富林. 2005. 從引進(jìn)到潛在入侵的植物──南美蟛蜞菊[J]. 廣西植物,25(5):413-418. [Wu Y Q,Hu Y J,Liao F L. 2005. Wedelia trilobata─A species from introduced to potential invasive[J]. Guihaia,25(5):413-418.]
許娟,羅興錄. 2011. 木薯Actin基因片段的克隆及序列分析[J]. 生物技術(shù)通報(bào),27(6):65-70. [Xu J,Luo X L. 2011. Cloning and sequence analysis of Actin gene fragment from cassava[J]. Biotechnology Bulletin,27(6):65-70.]
楊東娟,朱慧. 2008. 入侵植物南美蟛蜞菊克隆繁殖特性初探[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),36(15):6469-6470. [Yang D J,Zhu H. 2018. Primary study on clonal reproductive characteristics of the invasive plant─Wedelia trilobata L.[J]. Journal of Anhui Agricultural Sciences,36(15):6469-6470.]
葉玉妍,梁海峰,楊禮香. 2018. 番杏Actin基因片段的克隆及生物信息學(xué)分析[J]. 生物資源,40(5):405-411. [Ye Y Y,Liang H F,Yang L X. 2018. Cloning and bioinforma-tics analysis of Actin gene fragment from Tetragonia tetragonioides[J]. Biotic Resources,40(5):405-411.]
張麗麗,趙輝,郭靜,夏啟玉,賀萍萍,霍姍姍,屈靜,符冬妹,郭安平. 2019. 模式植物狗尾草響應(yīng)不同干旱及鹽脅迫表達(dá)的內(nèi)參基因Actin及其應(yīng)用[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),40(12):2418-2425. [Zhang L L,Zhao H,Guo J,Xia Q Y,He P P,Huo S S,Qu J,F(xiàn)u D M,Guo A P. 2019. The internal reference gene Actin of Setaria viridis and its application in response to different drought and salt stress[J]. Chinese Journal of Tropical Crops,40(12):2418-2425.]
International Union for Conservation of Nature. 2001. 100 of the worlds worst invasive alien species[M]. Auckland:Invasive Species Specialist Group.
Kandasamy,McKinney,Meagher R B. 2002. Functional nonequivalency of actin isovariants in Arabidopsis[J]. Molecular Biology of the Cell,13(1):251-261.
Mccurdy D W,Kovar D R,Staiger C J. 2001. Actin and actin-binding proteins in higher plants[J]. Protoplasma,215(1):89-104.
Qi S S,Dai Z C,Miao S L. 2014. Light limitation and litter of an invasive clonal plant,Wedelia trilobata,inhibit its seedling recruitment[J]. Annals of Botany,114(2):425-433.
Qiang Y,Du D L,Chen Y J. 2011. Ent-Kaurane diterpenes and further constituents from Wedelia trilobata[J]. Helvetica Chimica Acta,94(5):817-823.
Si C C,Dai Z C,Lin Y. 2014. Local adaptation and phenoty-pic plasticity both occurred in Wedelia trilobata invasion across a tropical island[J]. Biological Invasions,16(11):2323-2337.
Wen S S,He D W,Liao C M,Li J,Wen G Q,Liu X H. 2014. Cloning and sequence analysis of an Actin gene in aloe[J]. Genetics and Molecular Research,13(3):4949-4955.
Zhang L C,Liu L,Cheng P,Shen H G,Rong B,Liu W,Yu G H. 2017. Identification and validation of reference genes for RT-qPCR analysis in banana(Musa spp.) under Fusarium wilt resistance induction conditions[J]. Journal of Phytopathology,165(11-12):746-754.
(責(zé)任編輯 陳 燕)
收稿日期:2020-04-26
基金項(xiàng)目:廣東省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2018A030313478);廣州市科技計(jì)劃項(xiàng)目(201707010257)
作者簡(jiǎn)介:*為通訊作者,宋莉英(1978-),博士,副研究員,主要從事入侵植物生理生態(tài)學(xué)研究工作,E-mail:liying_song@126.com。李紅春(1995-),研究方向?yàn)橹参镔Y源保護(hù),E-mail:18054216733@sina.cn
南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)2020年11期