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        固相萃取聯(lián)合超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定畜肉中3 種兒茶酚胺類物質(zhì)

        2020-01-07 03:18:30趙文濤吳彥超張穎穎李瑩瑩郭文萍王守偉
        食品科學(xué) 2019年24期
        關(guān)鍵詞:高氯酸兒茶酚胺類物質(zhì)

        任 南,趙文濤,陳 超*,吳彥超,張穎穎,李瑩瑩,郭文萍,范 維,王守偉

        (中國肉類食品綜合研究中心,北京 100068)

        兒茶酚胺類是一種含有兒茶酚和胺基的物質(zhì),化學(xué)結(jié)構(gòu)特點為都有一個雙羥基苯核和一個帶氨基的側(cè)鏈[1-2]。腎上腺素、去甲腎上腺素、異丙腎上腺素、腎上腺酮、多巴胺及相關(guān)衍生物均屬于兒茶酚胺類[3-5]。兒茶酚胺類是體內(nèi)重要的神經(jīng)遞質(zhì),與多種生理、病理現(xiàn)象密切相關(guān),在機體維持內(nèi)穩(wěn)態(tài)平衡過程中起著關(guān)鍵的作用[6-9]。兒茶酚胺類物質(zhì)互相之間有著緊密的聯(lián)系,受多種因素調(diào)節(jié)[10-12]。自20世紀(jì)60年代,腎上腺素類藥物一直被認(rèn)為是增加恢復(fù)心跳機會的特效藥[13],腎上腺素類藥物讓人產(chǎn)生巨大的爆發(fā)力,為常用急救藥物,但過量則可引起中毒,不良反應(yīng)包括頭痛、焦慮不發(fā)、煩躁、面色蒼白、眩暈、多汗、心跳異常增快等,嚴(yán)重者引發(fā)胸痛和心律失常,甚至死亡[14-16];早在1963年,有學(xué)者發(fā)現(xiàn),通過使用如咖啡因和腎上腺素等β受體激動類物質(zhì),可以促進(jìn)動物的生長。此后越來越多的β受體激動劑(瘦肉精)被研發(fā)出來,后因殘留對人體產(chǎn)生危害而被禁止[17-19]。

        近年來,注水肉問題受到越來越多的消費者及監(jiān)管部門的關(guān)注。不法分子為了謀取暴利,將兒茶酚胺類藥物和水一同注入生豬體內(nèi),生豬服用兒茶酚胺類藥物后口渴感增強,提高注水量,宰殺后不僅增重而且豬肉顏色鮮紅,易于出售[20]。導(dǎo)致近幾年注水肉屢禁不止的主要原因是注水肉的關(guān)鍵判定指標(biāo)不明確,注水肉的生物屬性或理化屬性研究滯后[21]。我國對豬肉中兒茶酚胺類藥物的檢測方法鮮見報道,因此研究豬肉中兒茶酚胺類藥物的檢測方法迫在眉睫,檢測方法的建立不僅為探索注水肉的關(guān)鍵指標(biāo)提供依據(jù),而且為監(jiān)管部門打擊違法行為提供有力手段。

        20世紀(jì)40年代便有學(xué)者對兒茶酚胺進(jìn)行分析研究,測定方法主要是乙二胺縮合法和三羥基吲哚法[22]。隨著新技術(shù)的發(fā)展,產(chǎn)生了多種測定方法,如化學(xué)發(fā)光法、熒光光譜法、電化學(xué)法、免疫分析法、質(zhì)譜法以及各種色譜法和多種方法聯(lián)用等[23-30]。兒茶酚胺的研究多集中于血漿、尿液樣本的檢測[31-33],肉類樣品基質(zhì)復(fù)雜,兒茶酚胺類物質(zhì)易受到樣品的干擾[3],因此如何排除樣品的干擾,是畜肉中兒茶酚胺類物質(zhì)測定的難點。目前兒茶酚胺類物質(zhì)多用高效液相色譜-電化學(xué)法檢測,但存在樣品前處理時間長、檢測時間長、存在干擾等問題[34],而且大多針對體液樣品。隨著分析技術(shù)的不斷進(jìn)步,固相萃取聯(lián)合液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法應(yīng)運而生,固相萃取技術(shù)是利用選擇性吸附和選擇性洗脫的液相色譜分離原理,以達(dá)到快速分離、提取、富集目標(biāo)化合物的一種預(yù)處理技術(shù)。固相萃取技術(shù)具有簡便、快速、精確、使用溶劑少、回回率高、易于和其他儀器聯(lián)合使用等優(yōu)點被廣泛應(yīng)用于多個領(lǐng)域[35]。液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜具有檢測時間短、樣本用量小、靈敏度和特異性高的優(yōu)點[36]。因此選用固相萃取與液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法,旨在建立一種檢測畜肉中兒茶酚胺類藥物的靈敏和特異性的方法,并對方法的可靠性進(jìn)行驗證。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        腎上腺素(純度99.4%) 德國Dr. Ehrenstorfer公司;去甲腎上腺素(純度98%) 上海阿拉丁公司;異丙腎上腺素標(biāo)準(zhǔn)品(純度99.0%),乙腈、甲醇(均為色譜純) 上海發(fā)譜實驗科技股份有限公司;高氯酸(優(yōu)級純)、氨水(分析純) 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;水無特殊說明均為一級水。

        1.2 儀器與設(shè)備

        1290超高效液相色譜儀、6470三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀 美國Agilent公司;CR21N離心機 日本Hitachi公司;S-100渦旋儀、SR-IIw振蕩器 日本Taiyo公司;ABM-2均質(zhì)機 株式會社日本精機制作所;Milli-Q純水儀 美國Millipore公司;Cleanert PCX固相萃取柱博納艾杰爾公司。

        1.3 方法

        1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

        標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液:準(zhǔn)確稱取10 mg固體標(biāo)準(zhǔn)品,置于100 mL燒杯中,加適量0.4 mol/L高氯酸溶解,并用0.4 mol/L高氯酸溶液轉(zhuǎn)移并定容至100 mL容量瓶中,搖勻,配制成質(zhì)量濃度為100 mg/L標(biāo)準(zhǔn)儲備液,4 ℃以下冰箱中避光保存。

        混合標(biāo)準(zhǔn)溶液:吸取各標(biāo)準(zhǔn)儲備溶液適量,用一級水配制成混合標(biāo)準(zhǔn)溶液。

        1.3.2 樣品提取與凈化

        提?。悍Q取試樣2 g(精確至0.001 g)于100 mL離心管中,加入10 mL 0.4 mol/L高氯酸溶液,15 000 r/min均質(zhì)2 min,再用10 mL 0.4mol/L高氯酸溶液清洗刀頭,12 000 r/min離心15 min,上清液轉(zhuǎn)移至另外一離心管中,殘渣再加入10 mL 0.4 mol/L高氯酸溶液,15 000 r/min勻漿2 min進(jìn)行2 次提取,12 000 r/min離心10 min合并2 次提取溶液,待凈化。

        凈化:Cleanert PCX柱使用前依次用5 mL甲醇、5 mL水、5 mL 0.1 mol/L高氯酸溶液活化,取提取液10 mL至Cleanert PCX柱,以1 mL/min通過PCX小柱后,分別用5 mL 0.1 mol/L高氯酸、5 mL一級水淋洗,最后用5 mL氨水-甲醇溶液(5∶95,V/V)洗脫,回集洗脫液于試管中,40 ℃氮吹近干,用甲酸-水(1∶99,V/V)溶液定容1 mL,渦旋混合1 min,過0.22 μm濾膜后測定。

        1.3.3 儀器條件

        色譜條件:HILIC Plus色譜柱(4.6 mm×100 mm,3.5 μm);流速0.4 mL/min;流動相A為甲酸-水(1∶99,V/V);流動相B為乙腈;柱溫30 ℃;進(jìn)樣量5 μL。洗脫條件見表1。

        表1 洗脫條件Table 1 Gradient elution program

        質(zhì)譜條件:電噴霧離子源,正離子模式;干燥氣溫度300 ℃;毛細(xì)管電壓3 000 V;噴霧器壓力35 psi;干燥氣流速8 L/min;鞘氣流速11 L/min;鞘氣溫度400 ℃。質(zhì)譜參數(shù)見表2。

        表2 3 種兒茶酚胺類物質(zhì)的質(zhì)譜參數(shù)Table 2 MS parameters for 3 CAs

        2 結(jié)果與分析

        2.1 質(zhì)譜條件的優(yōu)化

        圖1 目標(biāo)化合物結(jié)構(gòu)式Fig. 1 Molecule structures of 3 CAs

        如圖1所示,3 種化合物均為含氨基的弱堿性化合物,易帶正電荷,在正模式掃描下響應(yīng)值較高,采用選擇離子掃描選定化合物母離子,同時優(yōu)化毛細(xì)管出口電壓以保證化合物的母離子豐度,選定母離子后再進(jìn)行子離子掃描,優(yōu)化碰撞能量確定3 種化合物的子離子(表2)。

        3 種化合物結(jié)構(gòu)相似,都帶有3 個羥基,均為極性化合物,在非極性色譜柱上保留較弱,為使化合物更好分離和得到良好峰形,本實驗選擇HILIC親水色譜柱進(jìn)行分析,同時在流動相中加入少量甲酸提高樣品的離子化效率,以增大化合物響應(yīng)值,所以本方法選擇乙腈與0.1%甲酸-水(1∶99,V/V)作為流動相,結(jié)果見圖2。

        圖2 3 種化合物樣品空白及樣品添加多反應(yīng)監(jiān)測圖Fig. 2 MRM chromatograms of three CAs in negative and positive samples

        2.2 提取溶劑的選擇

        3 種兒茶酚胺類化合物均含有羥基和氨基,易溶于水溶液和有機溶劑,但由于3 種兒茶酚胺類藥物易被氧化,所以在提取溶液中加入適量酸以防止氧化,本實驗對比酸化甲醇、酸化乙腈、0.4 mol/L高氯酸溶液、磷酸鹽緩沖溶液(pH 4.0)作提取溶劑,加標(biāo)量為100 μg/kg時的回回率,如圖3所示。0.4 mol/L高氯酸溶液作提取溶劑時,3 種兒茶酚胺類均有較高回回率,平均回回率可達(dá)80%以上,故選取0.4 mol/L高氯酸溶液作為提取溶劑。

        圖3 不同提取溶劑回收率對比Fig. 3 Effect of extraction solvents on the recoveries

        2.3 提取方式的選擇

        圖4 不同提取方式回收率對比Fig. 4 Effect of extraction methods on the recoveries (n = 3)

        肉類由于其脂肪、蛋白含量比較高,某些基質(zhì)會對樣品提取的過程造成影響[37],因此考察常見4 種提取方式,結(jié)果見圖4。勻漿不僅誤差較小而且提取效率可達(dá)到85%以上,因此選用勻漿為提取方法。

        2.4 固相萃取柱的選擇

        圖5 不同固相萃取柱回收率對比Fig. 5 Effect of SPE columns on the recoveries

        考察HLB柱、PCX柱、SCX柱、堿性氧化鋁柱對目標(biāo)化合物的提取、凈化效果,結(jié)果見圖5。固相萃取柱對于3 種目標(biāo)物質(zhì)的保留都比較穩(wěn)定,PCX柱對3 種目標(biāo)化合物(添加量40 μg/kg)回回率均高于其他固相萃取柱。

        從提取溶劑、提取方式、固相萃取柱的選擇看,3 種化合物之間回回率具有相似的規(guī)律,這可能是由于它們的結(jié)構(gòu)和化學(xué)性質(zhì)相似。腎上腺素在不同的影響因素中回回率最低,可能是其化學(xué)性質(zhì)與另外2 種相比更不穩(wěn)定,更容易被外界(基質(zhì)/環(huán)境)因素干擾。不同提取溶劑和不同固相萃取柱對3 種化合物內(nèi)回回率的誤差差異較小,不同提取方式對3 種化合物內(nèi)回回率的誤差差異較大,因此提取方式的選擇對方法的穩(wěn)定性影響較大。

        2.5 基質(zhì)效應(yīng)評價

        基質(zhì)效應(yīng)是由基質(zhì)中的共提干擾物(非目標(biāo)化合物)與目標(biāo)化合物競爭電離所致[38]。基質(zhì)效應(yīng)會影響檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性,因此需要進(jìn)行基質(zhì)效應(yīng)的評價[39]。實驗選取豬肉、牛肉、羊肉進(jìn)行基質(zhì)效應(yīng)評價,結(jié)果見表3,3 種藥物在豬肉、牛肉、羊肉基質(zhì)中都屬于強基質(zhì)效應(yīng),如果用溶劑配制標(biāo)準(zhǔn)曲線定量,會造成結(jié)果有偏差,因此需要選擇基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量,以消除基質(zhì)效應(yīng)的影響。

        表3 3 種藥物的基質(zhì)效應(yīng)評價Table 3 Matrix effect evaluation of three CAs

        2.6 方法學(xué)結(jié)果

        2.6.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線、檢出限與定量限測定結(jié)果

        用空白基質(zhì)配制標(biāo)準(zhǔn)溶液,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,質(zhì)量濃度分別為40、50、100、500、1 000 ng/mL,在選定的前處理和儀器條件下進(jìn)行測定,得到不同質(zhì)量濃度的色譜圖,以添加兒茶酚胺類藥物質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),兒茶酚胺類藥物峰面積為縱坐標(biāo),得到3 種化合物的線性方程及相關(guān)系數(shù)。利用逐級稀釋法方空白樣品中添加已知質(zhì)量濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,以3 倍信噪比確定檢出限,10 倍信噪比確定定量限,結(jié)果見表4。該方法在40~1 000 μg/kg范圍內(nèi)3 種兒茶酚胺類物質(zhì)的線性良好,相關(guān)系數(shù)均大于0.99,檢出限為10 μg/kg,定量限為40 μg/kg。

        表4 3 種兒茶酚胺類藥物的線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限、定量限、線性范圍Table 4 Regression equations, correlation coefficients, LODs, LOQs and linear ranges of three CAs

        2.6.2 加標(biāo)回回率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差測定結(jié)果

        分別稱取牛肉、豬肉、羊肉空白樣品各18 份,每份2.0 g,每種空白樣中分別添加40、400、1 000 μg/kg 3 個水平的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個水平6 個平行樣品,后按1.3.2節(jié)和1.3.3節(jié)方法制備進(jìn)行實驗,結(jié)果見表5。不同添加水平的3 種兒茶酚胺類物質(zhì)的回回率在75.48%~91.25%之間,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.2%~4.6%,回回率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均符合日常檢測的要求。

        表5 豬肉、牛肉、羊肉中加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差結(jié)果Table 5 Spiked recoveries for three CAs in different matrix samples(n= 6)

        2.7 標(biāo)準(zhǔn)溶液穩(wěn)定性結(jié)果

        表6 放置不同時間3 種藥物標(biāo)準(zhǔn)溶液的穩(wěn)定性Table 6 Storage stability of standard solutions of three CAs

        將低、中、高,3 個質(zhì)量濃度的腎上腺素、去甲腎上腺素、異丙腎上腺素標(biāo)準(zhǔn)溶液混標(biāo)放置于室溫(25 ℃)下,比較同一條件下不同放置時間的標(biāo)準(zhǔn)溶液穩(wěn)定性差異。如表6所示,3 種藥物在室溫放置12 h較穩(wěn)定,放置24 h后腎上腺素開始逐漸降解,質(zhì)量濃度降低至原來的85%,放置36 h后腎上腺素質(zhì)量濃度降低至原來的80%,去甲腎上腺素和異丙腎上腺素質(zhì)量濃度降低至原來的90%,所以為了保證結(jié)果準(zhǔn)確,建議標(biāo)準(zhǔn)溶液臨用現(xiàn)配,同時樣品提取液需在12 h內(nèi)完成上機檢測。

        2.8 實際樣品的測定結(jié)果

        采用本方法對市售的140 件畜肉進(jìn)行測定,種類包括牛肉、羊肉、豬肉,1 件豬肉樣品檢出腎上腺素,含量為50 μg/kg。同時對該樣品進(jìn)行水分測定,結(jié)果大于77%,不符合GB 18394—2001《畜禽肉水分限量》的要求,表明兒茶酚胺類物質(zhì)對水分是否超標(biāo)具有一定的指示作用。

        3 討 論

        本實驗采用固相萃取技術(shù)與超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時測定畜肉中腎上腺素、去甲腎上腺素、異丙腎上腺素3 種兒茶酚胺類藥物,方法簡便、快速。方法學(xué)評價結(jié)果表明,本方法準(zhǔn)確、可靠,為考察注水肉的關(guān)鍵指標(biāo)提供思路,為監(jiān)管部門打擊違法行為提供手段。同時方法還存在一些不足,對于同種影響因素內(nèi)部誤差產(chǎn)生的差異以及不同化合物間回回率差異的原因仍需進(jìn)行大量研究工作。兒茶酚胺類化合物大部分是生物體內(nèi)正常代謝產(chǎn)生的物質(zhì),因此如何判定外源性注射兒茶酚胺仍需進(jìn)一步研究。

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