朱俊亞,李 芳,2,*,趙蘭馨,李席席,劉云宏,2
(1.河南科技大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,河南 洛陽 471023;2.河南省食品原料工程技術(shù)研究中心,河南 洛陽 471023)
氨芐青霉素(ampicillin,AMP),又稱氨芐莫林,是一種β-內(nèi)酰胺類抗生素,因其耐酸耐霉、殺菌活性強(qiáng)、毒性低及廣譜廉價(jià)等優(yōu)點(diǎn),廣泛應(yīng)用于奶牛養(yǎng)殖產(chǎn)業(yè)中[1]。經(jīng)常食用AMP殘留奶制品會(huì)增強(qiáng)機(jī)體耐藥性,造成肝腎功能損害,嚴(yán)重的還會(huì)影響機(jī)體耐藥基因的傳遞和患病醫(yī)學(xué)治療[2-3]。為保障人體健康,許多國家和地區(qū)都對(duì)AMP在牛奶中的最大殘留量進(jìn)行了規(guī)定:歐盟標(biāo)準(zhǔn)為4 μg/kg(約1.0×10-8mol/L)[4],美國標(biāo)準(zhǔn)為10 μg/kg(約2.5×10-8mol/L)[5],我國農(nóng)業(yè)部最新修訂頒布的《動(dòng)物性食品中獸藥最高殘留限量》標(biāo)準(zhǔn)為10 μg/kg(約2.5×10-8mol/L)。國內(nèi)外對(duì)牛奶中AMP最大殘留量的強(qiáng)制規(guī)定推動(dòng)了AMP檢測(cè)方法的發(fā)展與創(chuàng)新。目前,常用的AMP檢測(cè)方法有高效液相色譜法、氣相色譜法、液相-質(zhì)譜聯(lián)用法等[6],這些方法存在過程繁瑣、儀器昂貴和操作復(fù)雜等缺點(diǎn)。近年來,免疫分析(immunoassay,IAs)法應(yīng)用日趨廣泛,但由于AMP是小分子化合物,存在抗體質(zhì)量不穩(wěn)定、方法特異性差等問題,限制了IAs法的普及[7]。適配體克服了傳統(tǒng)抗體的缺點(diǎn),具有篩選周期短、合成批次間差異小、親和性和特異性高等特點(diǎn)[8-9],為小分子化合物檢測(cè)提供了一種可替代的識(shí)別元件。以適配體作為識(shí)別元件的傳感檢測(cè)技術(shù)開始嶄露頭角[10]。曾憲冬等[11]利用核酸適配體-金納米顆粒比色傳感技術(shù)實(shí)現(xiàn)了對(duì)赭曲霉毒素A的快速、高效檢測(cè)。Ma Qiang等[12]利用金納米顆粒和單鏈DNA構(gòu)建比色適配體傳感器,實(shí)現(xiàn)了牛奶和雞蛋中妥布霉素的有效檢測(cè)。已報(bào)道的適配體傳感檢測(cè)技術(shù)多采用金納米顯色技術(shù)[13-15]、熒光光譜分析[16-18],對(duì)于將納米磁磁與電化學(xué)技術(shù)相結(jié)合運(yùn)用于食品中AMP檢測(cè)的報(bào)道甚少,仍有待深入研究。
本研究以AMP為研究對(duì)象,選擇納米磁磁為載體,將兩者共價(jià)偶聯(lián)。在AMP-適配體特異性結(jié)合基礎(chǔ)上,以偶聯(lián)的AMP為識(shí)別探針,與待測(cè)樣中的AMP共同競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)體系中的適配體和辣根過氧化物酶,并利用磁性玻碳電極將上述磁磁吸附于電極檢測(cè)表面直接進(jìn)行電化學(xué)測(cè)定,構(gòu)建可用于牛奶中AMP高效檢測(cè)的電化學(xué)適配體傳感檢測(cè)方法。
羧基納米磁磁 英芮誠生化科技(上海)有限公司;AMP(≥98.89%) 德國Dr. Ehrenstorfer公司;AMP適配體(5’-biotin-GCG GGC GGT TGT ATA GCG G-3’)生工生物工程(上海)股份有限公司;鏈霉親和素修飾的辣根過氧化物酶(streptavidin-horseradish peroxidase,SA-HRP) 北京博奧森生物技術(shù)有限公司;其他試劑均為分析純。
實(shí)驗(yàn)操作過程中所用溶液均為超純水(電阻率≥18.2 MΩ·cm)配制。
TG16-WS型臺(tái)式高速離心機(jī) 湘儀離心機(jī)儀器有限公司;KQ2200型超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;BE-1100型四維旋轉(zhuǎn)混合儀 海門市其林貝爾儀器有限公司;CHI620E型電化學(xué)工作站 上海辰華儀器有限公司;HRCLJ-02型磁性分離架 河南惠爾納米科技有限公司。
電化學(xué)檢測(cè)使用三電極體系:磁性玻碳電極為工作電極,Ag/AgCl電極為參比電極,鉑絲電極為對(duì)電極,購自武漢高仕睿聯(lián)科技有限公司。
1.3.1 實(shí)驗(yàn)原理
基于電化學(xué)適配體傳感器檢測(cè)牛奶中AMP的原理如圖1所示。采用碳二亞胺交聯(lián)法制備了修飾有AMP的磁磁(磁性識(shí)別探針),其可與適配體特異性結(jié)合構(gòu)成磁性AMP-適配體復(fù)合物,由于所合成適配體的5’端修飾有生物素,因此當(dāng)加入SA-HRP后,在鏈霉親和素-生物素作用下,又可將HRP偶聯(lián)到磁磁表面,隨后便可利用磁性玻碳電極,將上述磁磁(磁性信號(hào)探針)磁吸固定于電極的檢測(cè)表面[19],在HQ、H2O2條件下進(jìn)行電化學(xué)檢測(cè)。該檢測(cè)體系是以AMP-適配體競(jìng)爭(zhēng)模式為基礎(chǔ)進(jìn)行的,當(dāng)檢測(cè)體系中存在游離的(待測(cè))AMP時(shí),會(huì)和磁磁表面修飾的AMP競(jìng)爭(zhēng)與適配體結(jié)合的機(jī)會(huì),形成較多的游離(待測(cè))AMP-適配體復(fù)合物,導(dǎo)致磁性AMP-適配體復(fù)合物數(shù)量的減少,使得能夠結(jié)合到磁磁表面的HRP數(shù)量也隨之減少,故獲得較低的電化學(xué)檢測(cè)信號(hào)。相反,當(dāng)檢測(cè)環(huán)境中不存在游離的(待測(cè))AMP時(shí),則不存在上述競(jìng)爭(zhēng)過程,因而可獲得較高的電化學(xué)檢測(cè)信號(hào)。該適配體傳感器通過競(jìng)爭(zhēng)前后顯著的電化學(xué)信號(hào)變化實(shí)現(xiàn)對(duì)牛奶中AMP的有效檢測(cè)。
圖1 適配體傳感器檢測(cè)AMP原理圖Fig. 1 Schematic illustration of the electrochemical aptasensor for the detection of ampicillin based on competitive format
1.3.2 適配體傳感器的構(gòu)建
1.3.2.1 磁性AMP識(shí)別探針的制備
主要步驟參照文獻(xiàn)[20],采用碳二亞胺交聯(lián)法制備磁性AMP識(shí)別探針。于1 mg羧基納米磁磁中加入1 mL 15 mmol/L 2-(N-嗎啉)乙磺酸(2-(N-morpholino)ethanesulfonic acid,MES)偶聯(lián)液洗滌2 次。加入100 μL 15 mmol/L MES偶聯(lián)液和100 μL EDC溶液重懸磁磁,室溫條件下于四維旋轉(zhuǎn)混合儀上避光活化。磁分離,用1 mL 15 mmol/L MES偶聯(lián)液洗滌2 次。加入500 μL AMP溶液,室溫條件下于四維旋轉(zhuǎn)混合儀上避光孵育。產(chǎn)物用PBST(0.01 mol/L PBS,0.05% Tween-20,pH 7.4)洗滌2 次,再加入1 mL PBS重懸,4 ℃貯存。
1.3.2.2 磁性AMP-適配體復(fù)合物的制備
磁分離去上清液,加入適量待測(cè)AMP和適配體溶液,混合均勻,室溫條件下于四維旋轉(zhuǎn)混合儀上避光孵育一段時(shí)間。產(chǎn)物用PBST洗滌3 次。
1.3.2.3 磁性信號(hào)探針的制備
方上述復(fù)合物中加入200 μL SA-HRP稀釋液(1∶1 000),室溫條件下于四維旋轉(zhuǎn)混合儀上避光孵育一段時(shí)間。產(chǎn)物用PBST洗滌3 次,再加入200 μL PBS重懸,4 ℃貯存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2.4 適配體傳感器的組裝
利用磁性玻碳電極具有的磁性吸附作用,將上述磁磁(磁性AMP信號(hào)探針)磁吸固定于磁性工作電極檢測(cè)表面,用于后續(xù)電化學(xué)檢測(cè)。
1.3.3 工作電極的預(yù)處理
工作電極選擇磁性玻碳電極,依次用0.3、0.05 μm的拋光粉(Al2O3)打磨拋光至鏡面,隨后依次用超純水、體積分?jǐn)?shù)50%的乙醇溶液、超純水超聲清洗。最后置于0.5 mol/L H2SO4溶液中用循環(huán)伏發(fā)法活化,直至得到穩(wěn)定的循環(huán)伏發(fā)曲線為止,處理后的電極用氮?dú)獯蹈蓚溆谩?/p>
1.3.4 電化學(xué)檢測(cè)
適配體傳感器的電化學(xué)表征通過循環(huán)伏發(fā)法在含1 mmol/L K3[Fe(CN)6]和1 mmol/L K4[Fe(CN)6]的0.1 mol/L KCl溶液中測(cè)定。循環(huán)伏發(fā)法檢測(cè)參數(shù)如下:初始電位-0.1 V、終止電位0.6 V、掃描速率0.05 V/s、掃描圈數(shù)2、取樣間隔0.001 V、靜置時(shí)間2 s。
氧化電流通過線性掃描伏發(fā)法在含HQ、H2O2的PBS中測(cè)定。檢測(cè)參數(shù)如下:初始電位0.1 V、終止電位-0.3 V、掃描速率0.1 V/s、取樣間隔0.001 V、靜置時(shí)間2 s。
1.3.5 特異性實(shí)驗(yàn)
參照實(shí)驗(yàn)步驟1.3.2節(jié),分別加入1.0×10-8mol/L AMP和1.0×10-6mol/L的阿莫莫林、四環(huán)素、卡那霉素、紅霉素進(jìn)行特異性檢驗(yàn),檢測(cè)條件同1.3.4節(jié)氧化電流檢測(cè)方法所述。
1.3.6 實(shí)際樣品處理
為驗(yàn)證本適配體傳感器的實(shí)用性,采用標(biāo)準(zhǔn)加入法來檢測(cè)牛奶中的AMP。參照文獻(xiàn)[21]對(duì)市售牛奶進(jìn)行預(yù)處理,首先以牛奶為本底配制一定濃度梯度的AMP牛奶樣品,接著加入20%三氯乙酸溶液調(diào)節(jié)pH值至4.6,于45 ℃條件下沉淀15 min,然后在10 000 r/min離心25 min,最后將得到的上清液用0.22 μm濾膜過濾備用。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均采集于CHI620E型電化學(xué)工作站,以各優(yōu)化條件對(duì)AMP-適配體競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)發(fā)生前后適配體傳感器凈電流值ΔI的變化量為依據(jù)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,公式如下:
ΔI=I0-IX
式中:I0為適配體傳感器在反應(yīng)體系中不存在待測(cè)AMP參與競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)時(shí)所測(cè)電流值;IX為適配體傳感器在反應(yīng)體系中存在待測(cè)AMP參與競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)時(shí)所測(cè)電流值。
采用循環(huán)伏發(fā)法表征磁性AMP信號(hào)探針在電極表面的修飾。圖2為不同電極在0.1 mol/L KCl+1 mmol/L溶液中的循環(huán)伏發(fā)曲線。如圖2所示,曲線a為裸磁性玻碳電極的CV曲線,呈現(xiàn)明顯的氧化還原特征,表現(xiàn)出可逆的氧化還原行為。曲線b為修飾了磁性AMP信號(hào)探針后的電極循環(huán)伏發(fā)曲線,在磁性作用下,所構(gòu)成的磁性AMP信號(hào)探針被修飾到磁性玻碳電極的檢測(cè)表面,形成一層不導(dǎo)電的絕緣核酸、蛋白層,阻礙了電子的傳輸,從而導(dǎo)致氧化還原電流值降低。此現(xiàn)象表明磁性AMP信號(hào)探針已成功固定到電極的表面上。
圖2 磁性玻碳電極修飾磁性AMP信號(hào)探針前后電化學(xué)表征Fig. 2 Electrochemical signal of magnetic glass carbon electrode before and after capturing magnetic AMP signal probe
為提高適配體傳感器的性能,同時(shí)達(dá)到節(jié)約成本、節(jié)省時(shí)間的目的,對(duì)磁性AMP-適配體復(fù)合物形成過程中的反應(yīng)時(shí)間、反應(yīng)pH值、檢測(cè)過程中磁性信號(hào)探針的使用量、測(cè)試過程中底液H2O2及HQ濃度等進(jìn)行優(yōu)化。
2.2.1 反應(yīng)時(shí)間的優(yōu)化
為保證反應(yīng)體系中的AMP充分競(jìng)爭(zhēng)獲得AMP適配體形成相應(yīng)狀態(tài)的AMP-適配體復(fù)合物,對(duì)反應(yīng)時(shí)間為10、20、30、40、50 min和60 min的樣品進(jìn)行電化學(xué)分析,由圖3可知,反應(yīng)進(jìn)行前30 min,凈電流值隨時(shí)間延長(zhǎng)快速增加,于第30分鐘處達(dá)到最大值,反應(yīng)進(jìn)行30 min后,凈電流值隨時(shí)間延長(zhǎng)開始呈現(xiàn)緩慢下降趨勢(shì)。這表明反應(yīng)進(jìn)行第30分鐘時(shí),游離的(待測(cè))AMP可充分競(jìng)爭(zhēng)獲得反應(yīng)體系中的適配體,形成較多的游離(待測(cè))AMP-適配體復(fù)合物,那么磁性AMP-適配體復(fù)合物的數(shù)量就會(huì)同步減少,影響磁性AMP信號(hào)探針形成量,從而獲得較高的凈電流值。因此,選定最優(yōu)反應(yīng)時(shí)間為30 min。
圖3 反應(yīng)時(shí)間對(duì)凈電流的影響Fig. 3 Effect of reaction time on ΔI
2.2.2 反應(yīng)pH值的優(yōu)化
圖4 反應(yīng)pH值對(duì)凈電流的影響Fig. 4 Effect of pH value on ΔI
測(cè)定不同pH值條件下樣品的電化學(xué)信號(hào),由圖4可知,隨著pH值的升高,適配體傳感器檢測(cè)的凈電流值也在增加,在pH 8.0時(shí)凈電流值最大。繼續(xù)升高pH值時(shí),凈電流值反而急速下降。這表明pH值對(duì)不同狀態(tài)AMP-適配體復(fù)合物的形成影響較大,當(dāng)pH 8.0時(shí),適配體結(jié)構(gòu)中的活性結(jié)合位點(diǎn)增加[22],有助于游離(待測(cè))AMP-適配體復(fù)合物形成,產(chǎn)生較高的凈電流值。而pH值過大或者過小都會(huì)影響適配體結(jié)構(gòu)中結(jié)合位點(diǎn)的活性,導(dǎo)致游離(待測(cè))AMP-適配體復(fù)合物數(shù)量的減少,產(chǎn)生較低的凈電流值。因此,選定AMP-適配體競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)的最優(yōu)pH值為8.0。
2.2.3 磁性信號(hào)探針使用量的優(yōu)化
電化學(xué)檢測(cè)過程中,適量磁性信號(hào)探針的使用可以提高適配體傳感器的靈敏度,同時(shí)還能保證其不造成浪費(fèi)。因此,需要對(duì)檢測(cè)過程中磁性信號(hào)探針的使用量進(jìn)行優(yōu)化。實(shí)驗(yàn)中依次將10、30、50、100 μg和150 μg磁性信號(hào)探針磁吸固定于處理過的工作電極檢測(cè)表面,通過電化學(xué)工作站對(duì)凈電流值進(jìn)行檢測(cè)分析。由圖5可知,隨著磁性信號(hào)探針使用量的增加,凈電流值快速增大,在50 μg處達(dá)到最大值。當(dāng)繼續(xù)增加磁性信號(hào)探針使用量時(shí),凈電流值反而呈現(xiàn)逐步下降趨勢(shì)。這表明隨著磁性信號(hào)探針使用量的增加,磁性電極表面的有效吸附區(qū)域正被逐步覆蓋,在50 μg使用量時(shí)達(dá)到飽和,之后繼續(xù)增加磁性信號(hào)使用量反而使探針相互堆積,電子傳輸速率受到影響,導(dǎo)致凈電流值減弱。因此,磁性信號(hào)探針的最優(yōu)使用量為50 μg。
圖5 磁性信號(hào)探針使用量對(duì)凈電流的影響Fig. 5 Effect of the amount of magnetic signal probe on ΔI
2.2.4 檢測(cè)條件的優(yōu)化
圖6 檢測(cè)體系中H2O2濃度對(duì)凈電流的影響Fig. 6 Effect of H2O2 concentration on ΔI
圖7 檢測(cè)體系中HQ濃度對(duì)凈電流的影響Fig. 7 Effect of HQ concentration on ΔI
檢測(cè)H2O2濃度對(duì)凈電流值的影響,如圖6所示,H2O2濃度在0.5 mmol/L時(shí),凈電流值達(dá)到最大值,所以H2O2最優(yōu)濃度為0.5 mmol/L。同時(shí),以相同的實(shí)驗(yàn)方法,檢測(cè)HQ濃度對(duì)凈電流值的影響。如圖7所示,HQ濃度在0.5 mmol/L時(shí),凈電流值最大,其余濃度條件下的凈電流值雖有變化,但都遠(yuǎn)小于0.5 mmol/L時(shí)的凈電流值。因此,HQ最優(yōu)濃度為0.5 mmol/L。
在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,采用本傳感檢測(cè)方法對(duì)不同AMP濃度梯度為的樣品進(jìn)行測(cè)定。如圖8所示,其氧化電流值隨著待測(cè)樣品中AMP濃度的降低而升高。以樣品濃度的對(duì)數(shù)為橫坐標(biāo),競(jìng)爭(zhēng)前后的凈電流值為縱坐標(biāo)作圖,結(jié)果顯示該適配體傳感器在AMP含量為1.0×10-12~1.0×10-8mol/L的濃度梯度范圍內(nèi)存在良好的線性關(guān)系,線性回歸方程為:ΔI/μA=2.239 8+0.171 9 lgCAMP,R2=0.995 4,檢出限為1.0×10-12mol/L。該適配體傳感器檢測(cè)法與文獻(xiàn)報(bào)道的AMP檢測(cè)法相比,有較低的檢測(cè)限和較寬的檢測(cè)范圍(表1)。此外,將制備好的適配體傳感器置于4 ℃條件下避光保存,在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,每隔1 d對(duì)濃度為1.0×10-9mol/L的AMP進(jìn)行電化學(xué)檢測(cè),以檢測(cè)該適配體傳感器的穩(wěn)定性。在1.0×10-9mol/L AMP條件下,線性掃描伏發(fā)法測(cè)定結(jié)果的日內(nèi)精密度為1.51%,日間精密度為3.30%。上述結(jié)果表明,放置一段時(shí)間的適配體傳感器檢測(cè)效果與最初制備的適配體傳感器檢測(cè)效果差異不大,具有良好的穩(wěn)定性(7 d)。
圖8 適配體傳感器在不同AMP濃度下的線性掃描伏安法掃描圖Fig. 8 Linear sweep voltammetry analysis of the aptasensor with different AMP concentrations
表1 本實(shí)驗(yàn)適配體傳感器與其他檢測(cè)方法比較Table 1 Comparison of the developed method with other detection methods
為驗(yàn)證該適配體傳感器的特異性,排除實(shí)際樣品檢測(cè)中可能遇到的其他族類或結(jié)構(gòu)類似抗生素的干擾,分別加入1.0×10-8mol/L AMP,1.0×10-6mol/L的阿莫莫林、四環(huán)素、卡那霉素和紅霉素反應(yīng)進(jìn)行電化學(xué)信號(hào)測(cè)定。如圖9所示,當(dāng)檢測(cè)體系中存在1.0×10-8mol/L的AMP時(shí),凈電流值明顯最高,但是當(dāng)檢測(cè)體系中的AMP由1.0×10-6mol/L的其他抗生素替代時(shí),凈電流值都明顯偏低。由此表明,本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建的適配體傳感器對(duì)AMP具有較高的特異性。
圖9 適配體傳感器特異性分析Fig. 9 Specificity analysis of the aptasensor
取購自超市的新鮮純牛奶,按照1.3.6節(jié)方法進(jìn)行預(yù)處理后,對(duì)其進(jìn)行加標(biāo)回回實(shí)驗(yàn),加標(biāo)回回率為95.24%~101.30%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD)不大于4.38%(n=5)。結(jié)果表明:該電化學(xué)適配體傳感檢測(cè)方法準(zhǔn)確可靠,可用于實(shí)際牛奶樣品中AMP含量的測(cè)定(表2)。
表2 牛奶樣品中AMP的檢測(cè)結(jié)果Table 2 Recoveries and precision for ampicillin in spiked milk sample
以羧基納米磁磁為載體,適配體與AMP特異性結(jié)合為基礎(chǔ),構(gòu)建AMP電化學(xué)適配體傳感器。采用碳二亞胺交聯(lián)法制備了修飾有AMP的磁磁,并以其為磁性識(shí)別探針,與待測(cè)樣中AMP共同競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)體系中的適配體和辣根過氧化物酶,隨后利用磁性電極將上述磁磁(磁性信號(hào)探針)吸附于電極檢測(cè)表面進(jìn)行電化學(xué)測(cè)定。對(duì)影響適配體傳感器性能的參數(shù),如競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)時(shí)間和反應(yīng)pH值、磁性信號(hào)探針使用量、測(cè)試底液中H2O2和HQ濃度等進(jìn)行了優(yōu)化。確定最佳競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)時(shí)間為30 min,反應(yīng)pH值為8.0,磁性信號(hào)探針使用量為50 μg,測(cè)試底液中H2O2和HQ濃度均為0.5 mmol/L。在最佳條件下,該適配體傳感器在AMP濃度為1.0×10-12~1.0×10-8mol/L梯度范圍內(nèi)存在良好的線性關(guān)系,檢測(cè)限可達(dá)1.0×10-12mol/L,具有較低的檢測(cè)限和較寬的檢測(cè)范圍。通過加標(biāo)回回實(shí)驗(yàn)檢測(cè)牛奶樣品中的AMP,證明該適配體傳感器可用于牛奶中AMP的高效檢測(cè)。