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        細(xì)胞自噬在Aβ25-35損傷SH-SY5Y細(xì)胞中的作用*

        2019-11-21 05:13:42唐曉麗
        中國病理生理雜志 2019年11期
        關(guān)鍵詞:孵育空白對照活力

        楊 依, 唐曉麗, 劉 悅, 方 芳

        (北京中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院, 北京 102488)

        阿爾茨海默病(Alzheimer disease, AD) 是一種神經(jīng)退行性疾病,其發(fā)病率隨年齡增長,臨床表現(xiàn)為漸進(jìn)性記憶減退和認(rèn)知功能障礙,生活自理能力下降,精神人格出現(xiàn)異常等[1]。β-淀粉樣蛋白(amyloid β-protein,Aβ)沉積是AD可能的發(fā)病機(jī)制之一,體內(nèi)外實驗均有研究證明[2-3],一定劑量以上的Aβ具有神經(jīng)損傷作用,能對動物行為和認(rèn)知功能產(chǎn)生影響,導(dǎo)致或加速神經(jīng)細(xì)胞凋亡,常用于模擬AD模型。生物體內(nèi)Aβ的生成、代謝降解過程都與細(xì)胞自噬密切相關(guān)[4]。正常生理狀態(tài)下,經(jīng)自噬產(chǎn)生的Aβ含量不足以發(fā)生聚集[5];當(dāng)自噬功能出現(xiàn)障礙,可能導(dǎo)致毒性片段產(chǎn)生增多或已形成的Aβ代謝清除異常,Aβ沉積,進(jìn)而造成神經(jīng)元損傷[6-7]。細(xì)胞自噬穩(wěn)態(tài)、Aβ及AD的發(fā)病存在復(fù)雜多向的相互影響,探究其間的關(guān)系與機(jī)制具有重要意義。本研究以SH-SY5Y細(xì)胞為研究對象,旨在探索Aβ25-35誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞損傷是否與調(diào)節(jié)細(xì)胞自噬相關(guān),并基于蛋白激酶B(protein kinase B, PKB/Akt)/哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin, mTOR)通路對其作用機(jī)制進(jìn)行初步探究。

        材 料 和 方 法

        1 實驗材料

        人神經(jīng)母細(xì)胞瘤SH-SY5Y細(xì)胞株由中國人民解放軍總醫(yī)院藥理藥學(xué)研究室培養(yǎng)贈送。

        2 藥物和試劑

        雷帕霉素(rapamycin,Rapa,M1768)和3-甲基腺嘌呤(3-methyladenine,3-MA, M2296)購自AbMole;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自CORNING;青-鏈霉素(penicillin/streptomycin,P/S)和Aβ25-35購自Sigma;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜(FFP24)購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;BCA蛋白定量試劑盒(AR0146)、3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(0793,噻唑藍(lán),MTT)、anti-GAPDH(DE0621)和羊抗小鼠IgG-HRP標(biāo)記Ⅱ抗(DE0602)購自北京拜爾迪生物技術(shù)有限公司;anti-mTOR(#2972)和anti-p-mTOR(#2971)購自Cell Signaling Technology (CST);anti-akt(ab8805)、anti-p-Akt(ab38449)和anti-LC3B(ab48394)購自Abcam;辣根酶標(biāo)記山羊抗兔IgG(ZB-2301)購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。

        3 實驗儀器

        酶標(biāo)儀[賽默飛世爾科技(中國)有限公司];恒溫水浴鍋(北京長安科學(xué)儀器廠);低速離心機(jī)(北京京立離心機(jī)有限公司);二氧化碳培養(yǎng)箱(G.S.);凝膠成像分析儀(上海天能科技有限公司)。

        4 實驗方法

        4.1SH-SY5Y細(xì)胞培養(yǎng) SH-SY5Y細(xì)胞自超低溫冰箱中取出立即投入37 ℃溫水浴中,使凍存液快速融化,將細(xì)胞液轉(zhuǎn)移至離心管中,加入等量DMEM完全培養(yǎng)液(含10% FBS,1% P/S),離心,重懸后轉(zhuǎn)移至25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,于37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。觀察細(xì)胞密度達(dá)到約80%以上時進(jìn)行傳代培養(yǎng),傳至2~3代細(xì)胞生長狀態(tài)穩(wěn)定后進(jìn)行后續(xù)實驗。

        4.2實驗分組 Aβ25-35與SH-SY5Y 細(xì)胞共孵育實驗分成6組,分別為空白對照(control)組(不含Aβ25-35)及5 μmol/L、10 μmol/L、15 μmol/L、20 μmol/L和25 μmol/L Aβ25-35組。 Aβ25-35加入適量超純水充分溶解,配制至1 000 μmol/L,放置在37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中孵育7~14 d后取出,-80 ℃超低溫保存?zhèn)溆谩?/p>

        自噬誘導(dǎo)劑(Rapa)、抑制劑(3-MA)和Aβ25-35聯(lián)用,與SH-SY5Y 細(xì)胞共孵育的實驗共分成6組,分別為空白對照(control)組(不含Aβ25-35,不含自噬抑制劑及誘導(dǎo)劑)、模型(model)組(25 μmol/L Aβ25-35)、Rapa(10 nmol/L)組、3-MA(5 mmol/L)組、Aβ25-35+Rapa組和Aβ25-35+3-MA組。

        4.3MTT法檢測細(xì)胞活力 選取傳代后生長狀態(tài)穩(wěn)定的SH-SY5Y細(xì)胞,計數(shù)調(diào)整細(xì)胞密度為5×108/L,接種至96孔板,每孔100 μL,每組5個復(fù)孔,細(xì)胞貼壁后按各自分組給藥培養(yǎng),放入37℃培養(yǎng)箱中孵育24 h,100倍光學(xué)顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài),拍照,加入MTT試劑,4 h后在490 nm波長檢測吸光度(A)值,各組A值與空白對照組相比即為該組細(xì)胞的相對活力。

        4.4Western blot法檢測蛋白表達(dá) BCA蛋白定量試劑盒進(jìn)行細(xì)胞總蛋白提取及測定后,采用蛋白SDS-PAGE分離,濕法轉(zhuǎn)膜將蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜, 5% 脫脂牛奶在室溫下封閉1 h,TBST洗滌膜3次,稀釋Ⅰ抗(1∶1 000)4 ℃孵育過夜。TBST洗滌膜3次,每次15 min,Ⅱ抗室溫孵育1 h,TBST 洗滌膜3次,每次10 min,ECL發(fā)光試劑1:1混勻,室溫條件下避光顯色,凝膠成像系統(tǒng)曝光。

        5 統(tǒng)計學(xué)處理

        各項實驗得到的數(shù)據(jù)采用SAS 8.2統(tǒng)計軟件進(jìn)行分析,結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)的形式表示,組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗或單因素方差分析,以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1 鏡下觀察不同濃度Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞形態(tài)影響

        結(jié)果可見,與正常對照組比較,Aβ25-35與SH-SY5Y細(xì)胞共孵育24 h后,各組細(xì)胞均有不同程度突觸減少、胞體回圓現(xiàn)象,團(tuán)簇狀聚集細(xì)胞團(tuán)出現(xiàn),且隨Aβ濃度增大,損傷細(xì)胞與細(xì)胞團(tuán)數(shù)量有增多趨勢,其中25μmol/L Aβ25-35損傷組中畸形和損傷細(xì)胞數(shù)目較多,視野下觀察損傷程度最為嚴(yán)重,見圖1。

        Figure 1.The effects of different concentrations of Aβ25-35on the morphological changes of SH-SY5Y cells were observed under optical microscope (×100). A: control group; B: 5 μmol/L Aβ25-35group; C: 10 μmol/L Aβ25-35group; D: 15 μmol/L Aβ25-35group; E: 20 μmol/L Aβ25-35group; F: 25 μmol/L Aβ25-35group.

        圖1 光學(xué)顯微鏡下觀察不同濃度Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞形態(tài)的影響

        2 MTT法檢測不同濃度Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞活力的影響

        由表1結(jié)果可以看出,與空白對照組比較,Aβ25-35與SH-SY5Y細(xì)胞共孵育24 h后,各組細(xì)胞的活力明顯降低(P<0.05),其中25 μmol/L Aβ25-35損傷組細(xì)胞活力降低最為顯著,損傷最明顯。

        3 Western blot法檢測不同濃度Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞自噬相關(guān)蛋白及Akt/mTOR通路蛋白表達(dá)的影響

        與空白對照組相比,除5 μmol/L Aβ25-35組外,其余各組細(xì)胞中LC3-II蛋白表達(dá)水平均有顯著提升(P<0.05);20 μmol/L和25 μmol/L Aβ25-35組LC3-II/LC3-I水平明顯提高(P<0.05);各濃度組p-Akt/Akt蛋白表達(dá)水平均顯著降低(P<0.05);除5 μmol/L Aβ25-35損傷組外,其余各組p-mTOR/mTOR表達(dá)水平明顯降低(P<0.05),見圖2。

        4 鏡下觀察3-MA、Rapa及二者分別與Aβ25-35聯(lián)用對SH-SY5YS細(xì)胞形態(tài)的影響

        與空白對照組比較,模型組細(xì)胞密度明顯下降,出現(xiàn)團(tuán)簇狀細(xì)胞聚集;Rapa組細(xì)胞未見明顯細(xì)胞回圓現(xiàn)象,視野下狹長形態(tài)細(xì)胞增多;3-MA組細(xì)胞形態(tài)略有變化,部分細(xì)胞胞壁破損;Rapa+Aβ25-35組細(xì)胞密度明顯降低,突觸減少,回圓細(xì)胞較多,但其回圓細(xì)胞數(shù)目及簇集程度較模型組少;3-MA+Aβ25-35組細(xì)胞密度下降,與模型組相比細(xì)胞密度相接近,破損細(xì)胞較多,見圖3。

        5 MTT法檢測3-MA、Rapa及二者分別與Aβ25-35聯(lián)用對SH-SY5YS細(xì)胞活力的影響

        與空白對照組比較,模型組、Rapa+Aβ25-35組、3-MA組和3-MA+Aβ25-35組細(xì)胞存活率顯著降低(P<0.05);與模型組相比,Rapa組和3-MA組細(xì)胞活力更高(P<0.05),聯(lián)合用藥的Rapa+Aβ25-35和3-MA+Aβ25-35組未見顯著性差異;與Rapa組相比,Rapa+Aβ25-35組細(xì)胞活力顯著下降(P<0.05);與3-MA組相比,3-MA+Aβ25-35組細(xì)胞活力明顯降低(P<0.05),見表2。

        6 Western blot法檢測3-MA、Rapa及二者分別與Aβ25-35聯(lián)用對SH-SY5Y細(xì)胞自噬相關(guān)蛋白及Akt/mTOR通路蛋白表達(dá)的影響

        與空白對照組相比,模型組、Rapa組和Rapa+Aβ25-35組LC3-II蛋白表達(dá)水平及LC3-II/LC3-I水平均有明顯上升(P<0.05),3-MA組LC3-II表達(dá)水平明顯下降(P<0.05);與模型組相比,Rapa組LC3-II蛋白表達(dá)有上升趨勢但未見統(tǒng)計學(xué)差異,而LC3-II/LC3-I水平明顯增加(P<0.05),Rapa+Aβ25-35組LC3-II、LC3-II/LC3-I水平均明顯上升(P<0.05),3-MA組LC3-II、LC3-II/LC3-I水平顯著下調(diào)(P<0.05),見圖4。

        與空白對照組比較,各組p-Akt/Akt和p-mTOR/mTOR水平均有不同程度下降(P<0.05);相比于模型組,Rapa組p-Akt/Akt水平顯著上調(diào)(P<0.05),3-MA+Aβ25-35組顯著下調(diào)(P<0.05),3-MA組p-mTOR/mTOR水平顯著上調(diào)(P<0.05),Rapa+Aβ25-35組顯著下調(diào)(P<0.05);相比于Rapa組,Rapa+Aβ25-35組的p-Akt/Akt和p-mTOR/mTOR水平均顯著下調(diào)(P<0.05);相比于3-MA組,3-MA+Aβ25-35組p-Akt/Akt和p-mTOR/mTOR水平均顯著下調(diào)(P<0.05),見圖4。

        Figure 2.The expression level of autophagy-and Akt/mTOR pathway- related proteins in the SH-SY5Y cells incubated with different concentrations of Aβ25-35. Mean±SD.n=3.*P<0.05vs0 μmol/L group.

        圖2 不同濃度Aβ25-35與SH-SY5Y細(xì)胞孵育后,細(xì)胞內(nèi)自噬和Akt/mTOR通路相關(guān)蛋白的表達(dá)水平

        Figure 3.Effects of Rapa, 3-MA and their respective combination with Aβ25-35on the morphological changes of SH-SY5Y cells under optical microscope (×100). A: control group; B: model group; C: Rapa group; D: 3-MA group; E: Rapa+Aβ25-35group; F: 3-MA+Aβ25-35group.

        圖3 光學(xué)顯微鏡下觀察Rapa、3-MA及分別聯(lián)用Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞形態(tài)的影響

        表1 不同濃度Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞活力的影響

        Table 1.Effects of different concentrations of Aβ25-35on the viability of SH-SY5Y cells (Mean±SD.n=5)

        GroupConcentration (μmol/L)Cell viability (%)Control-100.00±5.74Aβ25-35575.14±3.13?1080.64±3.58?1578.09±7.70?2083.80±4.39?2572.46±8.81?

        *P<0.05vscontrol group.

        表2 Rapa和3-MA對正常及Aβ25-35損傷的SH-SY5Y細(xì)胞活力影響

        Table 2.Effects of Rapa and 3-MA on the viability of normal SH-SY5Y cells and the cells damaged by Aβ25-35(Mean±SD.n=5)

        Group Cell viability (%)Control100.00±5.60Model65.96±2.75?Rapa95.75±7.28#Rapa+Aβ25-3567.82±4.46?△▲3-MA80.68±3.21?#△3-MA+Aβ25-3562.42±6.27?△▲

        *P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsmodel group;△P<0.05vsRapa group;▲P<0.05vs3-MA group.

        Figure 4.The expression of autophagy- and Akt/mTOR pathway-related proteins in SH-SY5Y cells treated with 3-MA, Rapa and their respective combination with Aβ25-35. Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsmodel group;△P<0.05vsRapa group;▲P<0.05vs3-MA group.

        圖4 3-MA、Rapa及二者與Aβ25-35聯(lián)用處理SH-SY5Y細(xì)胞后,細(xì)胞內(nèi)自噬和Akt/mTOR通路相關(guān)蛋白的表達(dá)水平

        討 論

        淀粉樣蛋白假說認(rèn)為,Aβ在腦內(nèi)過量產(chǎn)生或清除出現(xiàn)障礙,其沉積產(chǎn)生毒性,進(jìn)而對神經(jīng)系統(tǒng)造成損傷破壞,是AD發(fā)病的重要因素之一[8]。有研究表明[9-10],相較于積聚形成的老年斑(senile plaque,SP),Aβ的寡聚體可能擁有更強(qiáng)的神經(jīng)毒性,在近年得到越來越多的認(rèn)可與關(guān)注,本研究所選用即為其可人工合成的有效毒性片段Aβ25-35,經(jīng)老化折疊后進(jìn)行細(xì)胞共孵育,結(jié)果顯示,實驗所選取各濃度Aβ25-35均可對正常SH-SY5Y細(xì)胞造成損傷,視野下觀察可見聚集形成簇狀的細(xì)胞團(tuán),損傷嚴(yán)重組可見細(xì)胞密度明顯下降,MTT結(jié)果中,各損傷組細(xì)胞存活率均顯著性下降,其中25 μmol/L Aβ25-35組的細(xì)胞損傷作用明顯,細(xì)胞存活率最低。

        自噬是真核細(xì)胞更新細(xì)胞器、降解代謝蛋白、產(chǎn)生能量和維持系統(tǒng)穩(wěn)態(tài)的重要途徑[11],主要分為大自噬(macroautophagy)、小自噬(microautophagy)和分子伴侶介導(dǎo)的自噬(chaperone-mediated autopahgy,CMA),分類依據(jù)為底物進(jìn)入溶酶體的方式不同;其中,先形成自噬體、底物經(jīng)自噬體包裹轉(zhuǎn)運(yùn)至溶酶體的大自噬最為常見。微管相關(guān)蛋白1輕鏈3-I(MAP1LC3-I,LC3-I)和微管相關(guān)蛋白1輕鏈3-II(MAP1LC3-II,LC3-II)在細(xì)胞自噬的檢測中最為常用,被稱為自噬標(biāo)志蛋白,是自噬起始過程中的重要指標(biāo)。LC3-I主要存在于胞漿內(nèi),當(dāng)細(xì)胞自噬發(fā)生時,LC3-I與磷脂酰乙醇胺(phosphatidylethanolamine, PE)經(jīng)酯化反應(yīng)結(jié)合轉(zhuǎn)變?yōu)長C3-II[12],LC3-II自生成便穩(wěn)定結(jié)合于自噬體內(nèi)、外膜上,其表達(dá)水平與自噬體含量呈正相關(guān)[13],LC3-II/LC3-I比值即表示LC3-I向LC3-II的轉(zhuǎn)化程度,多用于判斷細(xì)胞自噬形成所處狀態(tài)。Western blot結(jié)果中,10 μmol/L、15 μmol/L、20 μmol/L和25 μmol/L Aβ25-35損傷組LC3-II蛋白表達(dá)水平均有明顯增高(P<0.05),即表明在該組中細(xì)胞內(nèi)自噬體含量增多,其中25 μmol/L Aβ25-35損傷組上調(diào)最為顯著;20 μmol/L和25 μmol/L Aβ25-35損傷組LC3-II/LC3-I水平相對空白對照組明顯上調(diào)(P<0.05),說明在以上兩組中細(xì)胞自噬呈現(xiàn)誘導(dǎo)狀態(tài)。

        mTOR是自噬啟動環(huán)節(jié)的關(guān)鍵調(diào)控位點(diǎn),對自噬膜的形成十分重要,mTOR活化程度上升,對細(xì)胞自噬起到顯著抑制作用[14],Rapa是其特異性抑制劑,有研究證明[15],當(dāng)神經(jīng)細(xì)胞通過自噬途徑實現(xiàn)自我保護(hù)時,Rapa可能通過促進(jìn)自噬增強(qiáng)其保護(hù)作用。Akt在細(xì)胞增殖、細(xì)胞凋亡調(diào)控等功能中具有重要地位[16],在Akt/mTOR通路中作為mTOR上游靶點(diǎn),能直接或間接[17]影響mTOR活性。本研究發(fā)現(xiàn),Aβ25-35對細(xì)胞內(nèi)Akt和mTOR蛋白磷酸化水平有不同程度下調(diào),25μmol/L Aβ25-35下調(diào)作用最顯著。

        選取損傷作用及對細(xì)胞自噬誘導(dǎo)作用均較強(qiáng)的25 μmol/L Aβ25-35與自噬誘導(dǎo)劑Rapa和自噬抑制劑3-MA聯(lián)合應(yīng)用,進(jìn)一步觀察細(xì)胞自噬狀態(tài)的變化。結(jié)果提示,Aβ25-35與Rapa聯(lián)用后,細(xì)胞自噬水平得到進(jìn)一步促進(jìn),而對細(xì)胞存活率未見顯著影響;Aβ25-35與3-MA聯(lián)用后,有減弱Aβ25-35誘導(dǎo)的細(xì)胞自噬水平趨勢,但無明顯統(tǒng)計學(xué)差異,細(xì)胞存活率有下降趨勢,但未見顯著差異。由于3-MA自身對正常細(xì)胞也存在一定損傷作用,與Aβ25-35合用后,加重3-MA的損傷。由于Rapa與3-MA對Aβ25-35誘導(dǎo)細(xì)胞自噬的影響趨勢相反,但二者的加入均未能顯著改善Aβ25-35對SH-SY5Y細(xì)胞的損傷作用,由此推測細(xì)胞自噬在正常生理狀態(tài)下處在相對穩(wěn)定的狀態(tài),Aβ25-35對其造成損傷后,細(xì)胞處于應(yīng)激性威脅中,可能引發(fā)代償性的自我保護(hù)作用[18],誘導(dǎo)自噬以促進(jìn)Aβ25-35的降解代謝。當(dāng)Rapa聯(lián)用后,細(xì)胞自噬雖得到進(jìn)一步促進(jìn),可能仍不足以清除過量的Aβ25-35,無法改善其損傷或過度促進(jìn)自噬同樣可能破壞自噬平衡,產(chǎn)生損傷。3-MA對于磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3- kinase,PI3K)有特異性抑制作用[19-20],有研究表明[21],PI3K活性下調(diào)可能導(dǎo)致細(xì)胞凋亡的發(fā)生或促進(jìn),3-MA本身對于SH-SY5Y細(xì)胞的損傷作用可能與此機(jī)制相關(guān);3-MA聯(lián)用Aβ25-35后其自噬抑制作用也可能阻礙Aβ25-35的清除,導(dǎo)致細(xì)胞損傷仍較嚴(yán)重。

        綜合以上結(jié)果,自噬的穩(wěn)態(tài)在維持細(xì)胞正常生長中具有重要意義,Aβ25-35可能通過下調(diào)Akt/mTOR蛋白的磷酸化水平,對SH-SY5Y細(xì)胞造成損傷并使細(xì)胞自噬呈誘導(dǎo)狀態(tài)。本研究中所選取自噬抑制劑及自噬誘導(dǎo)劑未能明顯減輕Aβ25-35的損傷作用,因此調(diào)整抑制劑和誘導(dǎo)劑濃度并穩(wěn)定自噬平衡可能會有所改善。目前關(guān)于Aβ對細(xì)胞損傷作用的靶點(diǎn)尚不明確,其損傷作用可能通過多種通路或途徑共同調(diào)節(jié)實現(xiàn),對細(xì)胞自噬途徑進(jìn)一步探究,結(jié)合細(xì)胞凋亡、線粒體等方向進(jìn)行綜合考量,對進(jìn)一步了解其損傷作用機(jī)制具有重要意義。

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