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        脂質(zhì)體水凝膠結(jié)構(gòu)變化與形成機理

        2019-10-29 06:38:26劉瑋琳孔有余許賢康鄭凌藝柳葉霏韓劍眾
        食品科學 2019年20期
        關(guān)鍵詞:明膠脂質(zhì)體殼聚糖

        劉瑋琳,孔有余,許賢康,鄭凌藝,柳葉霏,韓劍眾*

        (浙江工商大學食品與生物工程學院,浙江 杭州 310018)

        脂質(zhì)體是由雙親性分子自組裝形成的運載體系,具有高穩(wěn)定性[1]、靶向性[2]、生物相容性[3]和緩釋性[4]等優(yōu)點,已在食品、生物、醫(yī)學、農(nóng)學等領(lǐng)域有廣泛應(yīng)用[5-7]。近年來,脂質(zhì)體逐漸在食品領(lǐng)域嶄露頭角,用以保護敏感性功能成分的穩(wěn)定性或提高生物利用率[8-10]。水凝膠是介于固體與液體間的一種半固體結(jié)構(gòu)體系,具有高分子網(wǎng)絡(luò)狀結(jié)構(gòu)[11-12]。其中,互穿聚合物網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)(interpenetrating polymer network,IPN)[13]作為水凝膠的一種,存在化學交聯(lián)點使其在大部分溶劑中只能溶脹而不溶解,不發(fā)生蠕變和流動,從而有更好的黏接力[14-15]。水凝膠既可以作為一種食品,又可利用其緩釋性作為一種營養(yǎng)強化劑[16]。

        脂質(zhì)體水凝膠是一種通過物理或化學交聯(lián)的方式將脂質(zhì)體與凝膠結(jié)合,從而提高脂質(zhì)體包封能力和緩釋作用的新型運載體系。Ditiaio等[17]在20世紀90年代開始了脂質(zhì)體水凝膠的研究,在醫(yī)用硅膠中植入抗生素的脂質(zhì)體水凝膠減少術(shù)后恢復的細菌感染率,與Gao Weiwei等[18]將包埋抗菌藥物的脂質(zhì)體水凝膠能抵抗金黃色葡萄球菌感染相驗證。但是,當前脂質(zhì)體水凝膠的應(yīng)用主要集中在藥學和材料學領(lǐng)域,而在食品中僅見如包埋白藜蘆醇以提高其釋放效率的報道[19],脂質(zhì)體水凝膠運輸其他活性成分及在消化道的降解研究鮮見。

        綜上所述,本實驗采用涂層法制備脂質(zhì)體與IPN膠交聯(lián)構(gòu)建脂質(zhì)體水凝膠并表征其物化性質(zhì)(粒徑、質(zhì)構(gòu)、微觀形貌);以膨脹系數(shù)、傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)TIR)、差熱分析和交聯(lián)率探求兩者間的交聯(lián)機理和脂質(zhì)體在水凝膠的包埋方式,為脂質(zhì)體水凝膠應(yīng)用到食品領(lǐng)域提供一定的理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        卵磷脂、殼聚糖 美國Sigma公司;明膠、Hepes、氯化鈉 上海阿拉丁生化科技股份有限公司;轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶(microbial transglutaminase,mTG) 泰興市一鳴生物制品有限公司;磷測試盒 南京建成生物工程研究所。

        1.2 儀器與設(shè)備

        D11971型超純水系統(tǒng)、Multiskan Spectrum全波長酶標儀 美國Thermo Scientific公司;Sorvall BiofugePrimo R型高速冷凍離心機 美國Kendro公司;TA.XT Plus型組織分析儀 德國IKA公司;SW22型振蕩水浴槽 德國Julabo公司;pH計 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;MS3000型激光粒度分析儀 英國Malvern公司;Nicolet FTIR成像系統(tǒng)美國熱電公司;DTA-800差熱分析儀 上海研錦科學技術(shù)有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 脂質(zhì)體的制備

        采用涂層法[20],將高質(zhì)量濃度的磷脂溶液均勻涂在聚四氟乙烯板上,并放置在培養(yǎng)皿中,在55 ℃條件下用Hepes(0.05 mol/L、pH 5.5)溶液進行浸沒洗膜,避光密封處理,獲得磷脂質(zhì)量濃度為50 mg/mL的脂質(zhì)體。

        1.3.2 脂質(zhì)體物化性質(zhì)的測定

        采用動態(tài)激光粒度儀測量脂質(zhì)體的平均粒徑和表面電位。取1 mL脂質(zhì)體用純水稀釋至10 mL,混勻后取樣放入樣品池中進行測定,測定條件為20 ℃,磷脂和分散介質(zhì)的折射率的比值為1.120。每個樣品至少平行測定3 次。

        通過透射電子顯微鏡表征脂質(zhì)體微觀形貌。用蒸餾水將脂質(zhì)體稀釋至1 mg/mL,將樣品滴加到銅網(wǎng),而后用醋酸雙氧鈾溶液(2%)染色4 min,用濾紙吸去多余的液體后,在室溫條件下晾干,用透射電子顯微鏡表征其微觀結(jié)構(gòu)。

        1.3.3 脂質(zhì)體水凝膠的制備和物化性質(zhì)分析

        1.3.3.1 水凝膠的制備

        明膠在55 ℃條件下用超純水溶解(6 g/100 mL),殼聚糖用1%的冰乙酸溶液溶解(3 g/100 mL)。分別將明膠與殼聚糖的質(zhì)量比按1∶4、1∶2、1∶1、2∶1、4∶1進行混合,與55 ℃恒溫振蕩混勻,30 min后分別加入質(zhì)量濃度為0、0.1、5、10、50 mg/mL的mTG,繼續(xù)55 ℃恒溫振蕩60 min,取出冰浴快速冷卻至出現(xiàn)固體的凝膠,于KCl(0.01 mol/L、pH 5.5)溶液浸沒2 h,取出4 ℃靜置過夜。

        1.3.3.2 脂質(zhì)體水凝膠的制備

        水凝膠的制備按1.3.3.1節(jié)方法進行,其中在mTG之后再迅速加入脂質(zhì)體溶液,使脂質(zhì)體在凝膠中的最終質(zhì)量濃度為12.5 mg/mL。

        1.3.3.3 脂質(zhì)體水凝膠的外觀形貌

        對不同配方脂質(zhì)體水凝膠進行外觀拍照。

        1.3.3.4 脂質(zhì)體水凝膠的質(zhì)構(gòu)分析

        將不同配方的脂質(zhì)體水凝膠低溫(4 ℃)保存過夜后進行硬度、黏性及回復力等質(zhì)構(gòu)特性測定,選擇質(zhì)地剖面分析(texture profile analysis,TPA)模式,具體參數(shù)為:探頭P/25,壓縮比30%,測前、測中和測后速率均1 mm/s,測定停留時間5 s,觸發(fā)力5 g,每組樣品做多次平行實驗[21-22]。脂質(zhì)體水凝膠的TPA2采用硬度、彈性和咀嚼性表征,其中,硬度指的是第1次壓縮樣品時的最大壓力峰值,感官上代表了用牙齒咬斷樣品時所需的力;彈性指兩次穿刺樣品高度的比值,反映了除去外力后樣品形變的恢復量;回復力指兩次穿刺后抵抗外界破壞所需的能力。

        1.3.4 脂質(zhì)體水凝膠結(jié)構(gòu)的形成機理

        1.3.4.1 脂質(zhì)體水凝膠的膨脹系數(shù)

        采用Cui Li等[13]的方法。將脂質(zhì)體水凝膠平均切成15 mm×15 mm×10 mm長寬高的比例,切好的小塊凝膠靜置在Hepes溶液中(0.05 mol/L、pH 5.5、37 ℃),在不同時間間隔取出凝膠樣品,用干燥濾紙吸干外表面的水珠,稱質(zhì)量。膨脹系數(shù)計算如式(1)所示:

        式中:Wt為在t時間點的吸水膨脹的樣品質(zhì)量;Wo為初始樣品的質(zhì)量。

        1.3.4.2 脂質(zhì)體水凝膠FTIR分析

        稱取經(jīng)過凍干處理后的脂質(zhì)體、空白水凝膠(不加脂質(zhì)體)和脂質(zhì)體水凝膠樣品,與干燥處理過的KBr粉末按照1∶100的比例在研缽中充分研磨壓片,以空氣為背景采集FTIR譜圖,設(shè)置掃描次數(shù)為64 次,在4 000~400 cm-1波數(shù)范圍內(nèi)全波段掃描分析。

        1.3.4.3 脂質(zhì)體水凝膠的差熱分析

        每個鋁盤里封裝2~6 mg的經(jīng)過凍干處理后的脂質(zhì)體、空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠樣品,使用DTA-800差熱分析儀進行分析,裝有脂質(zhì)體的鋁盤作為空白對照組。所有的鋁盤都需要放在密室中,在30 ℃保持5 min,以10 ℃/min的速率從30~400 ℃快速升溫,氮吹的速率為20 mL/min。

        1.3.4.4 脂質(zhì)體水凝膠的交聯(lián)率

        采用Cui Li等[13]的方法進行測量。所需溶液配制如下:溶液I:將1.05 g的檸檬酸溶解在10 mL(0.1 mol/L)的NaOH溶液中,再混合0.04 g的SnCl2·H2O,用去離子水稀釋到25 mL;溶液II:1 g的尼京平溶解在25 mL乙二醇溶液;標溶液III:將溶液I與溶液II進行混合,磁力攪拌45 min并存于暗室。凝膠前處理需冷凍干燥24 h。測量前,1.5 mg的凍干樣品混合2 mL的溶液III在100 ℃水浴加熱20 min,快速冷卻至室溫,用15 mL的50%異丙醇溶液稀釋,分光光度計在570 nm波長處記錄其吸光度。凝膠交聯(lián)率的計算如式(2)所示:

        式中:Mo為未交聯(lián)樣品中自由氨基酸的摩爾分數(shù);Mt為交聯(lián)樣品中自由氨基酸的摩爾分數(shù)。

        1.4 統(tǒng)計分析

        每項指標均至少重復測量3 個平行樣品,并設(shè)置相應(yīng)的對照組。采用Microsoft Office Excel 2007和Origin 8.5軟件進行數(shù)據(jù)整理和分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 脂質(zhì)體的物化性質(zhì)

        圖1 脂質(zhì)體在電子顯微鏡下的微觀“囊泡狀”結(jié)構(gòu)Fig. 1 Transmission electron micrographs of liposomes

        由圖1可知,脂質(zhì)體形狀規(guī)整,呈囊泡狀結(jié)構(gòu),分布較均勻,顆粒間彼此分散、獨立。通過動態(tài)激光粒徑電位儀測得脂質(zhì)體平均粒徑為(1 353±141.0)nm,表面電位為(-0.72±0.49)mV。由于本實驗采用涂板薄膜分散制備脂質(zhì)體,屬于自發(fā)膨脹的自組裝而成,未進行二次高壓力或者高剪切處理,其形狀結(jié)構(gòu)完整、粒徑較大;且該脂質(zhì)體帶電荷少,電位偏中性。粒度儀測量所得粒徑值與透射電子顯微鏡觀察結(jié)果基本相符。

        2.2 脂質(zhì)體水凝膠物化性質(zhì)

        2.2.1 脂質(zhì)體水凝膠的外觀形貌

        圖2 脂質(zhì)體水凝膠的形態(tài)圖Fig. 2 Visual appearance of lips-in-gels

        判斷凝膠的形成采取最直觀的倒置分析法,如圖2所示。對于能穩(wěn)定成膠的樣品,其物理結(jié)構(gòu)會形成穩(wěn)定的固體或半固體形態(tài),能夠保持基本的“站立”狀態(tài),所以在進行倒置時,膠體不容易坍塌或流動。圖2A中,明膠與殼聚糖比例為4∶1和2∶1形成的膠,倒置狀態(tài)下均保持非常穩(wěn)定的固體狀態(tài),Cui Li等[13]認為二者可能是通過共價鍵結(jié)合在一起。在1∶1和1∶2的比例中,其膠的結(jié)構(gòu)發(fā)生了坍塌,有一定的流動性,而1∶4比例則明顯不具備膠的半固體狀態(tài),基本不能成膠,圖2B、C分別為不同質(zhì)量濃度的mTG制備的水凝膠(明膠與殼聚糖的比例為4∶1)和加入了脂質(zhì)體的水凝膠與空白水凝膠的對比,其中mTG是一種良好的交聯(lián)劑。圖2B中5 種水凝膠均可以保持穩(wěn)定的“站立”狀態(tài),均呈現(xiàn)膠的基本結(jié)構(gòu),圖2C水凝膠中添加了脂質(zhì)體之后同樣也很好地保持了膠的固體形狀。

        2.2.2 脂質(zhì)體水凝膠的質(zhì)構(gòu)分析

        圖3 水凝膠的硬度、黏性和回復力質(zhì)構(gòu)指標Fig. 3 Hardness, adhesiveness and resilience of hydrogels

        由圖3A得出,隨著明膠比例增高,水凝膠的硬度也逐漸增大;在殼聚糖比例大于明膠時,無法成膠,故不計算其質(zhì)構(gòu)系數(shù)。當明膠與殼聚糖比例為4∶1時,脂質(zhì)體水凝膠的耐咀嚼性為最優(yōu)?;貜土υ谡麄€體系中呈現(xiàn)拋物線形態(tài),在明膠與殼聚糖比為2∶1時出現(xiàn)峰值。綜合各質(zhì)構(gòu)結(jié)果,采取明膠與殼聚糖比4∶1為后期實驗的制膠比例。從圖3B可以看出,當mTG質(zhì)量濃度為10 mg/mL時,其成膠穩(wěn)定性最好,硬度重復性最強,硬度達到了18.68 g;當mTG質(zhì)量濃度高于10 mg/mL時,4 ℃過夜貯存出現(xiàn)大量脫水的現(xiàn)象,因此本研究選擇mTG質(zhì)量濃度為10 mg/mL。圖3C為脂質(zhì)體水凝膠與空白水凝膠的質(zhì)構(gòu)對比,脂質(zhì)體水凝膠的硬度和黏彈性相較未添加脂質(zhì)體的水凝膠有很大的提升,可能是因為凝膠內(nèi)部充斥著大粒徑的脂質(zhì)體囊泡,使其膠的空間結(jié)構(gòu)得到支撐,從而提高了膠的硬度[23]。

        2.3 凝膠結(jié)構(gòu)的形成機理

        2.3.1 脂質(zhì)體水凝膠的膨脹系數(shù)

        圖4 空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠在KCl溶液(pH 5.5、0.01 mol/L)中的膨脹系數(shù)Fig. 4 Swelling behaviors of hydrogels and lips-in-gels in KCl solution(pH 5.5, 0.01 mol/L)

        由圖4可知,脂質(zhì)體水凝膠和空白水凝膠的膨脹系數(shù)都是呈上升趨勢,與之前文獻報道水凝膠浸沒于相同pH值條件下的離子溶液中都是出現(xiàn)了吸脹的屬性相符[24]。在0~3 h之間,兩者都是極快吸水膨脹,3 h后兩者都出現(xiàn)輕微的脫水;但在7~24 h之間,空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠又呈現(xiàn)穩(wěn)定的膨脹過程,但是此吸水能力相較之前的快速吸水發(fā)漲能力略有下降,說明兩種膠之間的網(wǎng)狀空洞結(jié)構(gòu)基本都被水分子填滿,特別是脂質(zhì)體水凝膠在18 h之后,質(zhì)量基本保持平穩(wěn)不變。但是,空白水凝膠的膨脹能力比脂質(zhì)體水凝膠更強,可能是在這段時間里空白水凝膠仍具備一定能力的吸水膨脹,而脂質(zhì)體水凝膠中的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)已經(jīng)被脂質(zhì)體的囊泡結(jié)構(gòu)所填滿,其空間結(jié)構(gòu)已經(jīng)基本接近飽和,無法攜帶更多的水分子。

        2.3.2 脂質(zhì)體水凝膠FTIR分析

        圖5 脂質(zhì)體、空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠的FTIR圖Fig. 5 FTIR spectra of liposomes, hydrogels and lips-in-gels

        由圖5可知,殼聚糖與明膠構(gòu)成的空白水凝膠的FTIR圖譜在3 276 cm-1處形成了明顯的—O—H伸縮振動吸收寬鋒,在1 682 cm-1處出現(xiàn)了殼聚糖酰胺N—H伸縮振動吸收峰,這兩個特征峰都同時在脂質(zhì)體水凝膠中出現(xiàn)相同的峰位置,說明相應(yīng)的功能基團都在脂質(zhì)體水凝膠中出現(xiàn)。脂質(zhì)體水凝膠中在2 849 cm-1出現(xiàn)了較大吸收峰,但空白水凝膠在此未明顯觀察到吸收峰,主要因為脂質(zhì)體壁材中的磷脂CH2基團的對稱和非對稱吸收峰的介入。磷脂結(jié)構(gòu)中的C—C—N+、C=O、P=O和P—O—C的伸縮振動吸收峰分別是960、1 740、1 220、1 090 cm-1,相比于脂質(zhì)體,脂質(zhì)體水凝膠中C=O吸收峰缺失,可能是由于水凝膠中mTG的氨與其交聯(lián)形成胺基所致[25-26]。在這之后脂質(zhì)體的相關(guān)特征吸收峰在水凝膠上形成峰位移,可能是由于明膠和殼聚糖中的雜環(huán)與磷酯通過氧激進誘導聚合和脫氫形成了雜環(huán)交聯(lián)化合物[27]。在整個由溶液狀的脂質(zhì)體與水凝膠混合冷卻形成的固態(tài)脂質(zhì)體水凝膠過程中,是形成了一系列復雜的化學交聯(lián)反應(yīng),脂質(zhì)體還可能通過氫鍵的關(guān)系與之聯(lián)結(jié)[27]。

        2.3.3 脂質(zhì)體水凝膠的差熱分析

        圖6 脂質(zhì)體、空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠的差熱分析Fig. 6 DSC spectra of liposomes, hydrogels and lips-in-gels

        從圖6可知,脂質(zhì)體、空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠在高溫下均為吸熱反應(yīng),且最大的吸熱峰均在不同位置,分別對應(yīng)的是133.126、117.726 ℃和126.891 ℃。脂質(zhì)體本身由磷脂組成,水凝膠的形成為蛋白和多糖通過mTG交聯(lián),若為物理交聯(lián)的膠,其本身沒有重新產(chǎn)生化學鍵而是通過靜電吸附形成;而脂質(zhì)體水凝膠應(yīng)出現(xiàn)兩個吸熱峰,各自對應(yīng)磷脂和蛋白多糖交聯(lián)的部分;但從圖6可以看到,脂質(zhì)體水凝膠只出現(xiàn)1 個大吸熱峰,說明兩者已經(jīng)產(chǎn)生了一定程度的化學交聯(lián),推測可能是mTG中的氨與C=O形成了胺基,雜環(huán)與磷酯鍵通過復雜的交叉反應(yīng)誘導聚合,以及出現(xiàn)了氫鍵的原因[28]。脂質(zhì)體水凝膠在250 ℃后出現(xiàn)了2 個小峰,而脂質(zhì)體差熱曲線也均含有這2 個峰,但空白水凝膠卻沒有此現(xiàn)象,這也從另一個角度證實了水凝膠確實包埋了脂質(zhì)體。

        2.3.4 脂質(zhì)體水凝膠的交聯(lián)率

        圖7 空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠的交聯(lián)率Fig. 7 Cross-linking degrees of hydrogels and lips-in-gels

        交聯(lián)率根據(jù)其中存在的自由氨基酸的比值進行計算[13]。空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠有蛋白和多糖的結(jié)構(gòu),而脂質(zhì)體由磷脂組成。由圖7可以分析,空白水凝膠和脂質(zhì)體水凝膠均檢測出自由氨基酸含量,且脂質(zhì)體水凝膠的交聯(lián)率比空白水凝膠低。本研究使用的水凝膠由殼聚糖和明膠通過mTG交聯(lián)形成,一部分的羰基和氨基形成胺基,雜環(huán)上的不穩(wěn)定二價鍵通過共價破壞與磷酯形成交叉反應(yīng),所以整個水凝膠的自由氨基酸比例有所降低,交聯(lián)率也隨之降低,該結(jié)果與前面實驗所得對應(yīng)。

        3 結(jié) 論

        本實驗通過研究不同條件形成的水凝膠的物化性質(zhì)及包埋了脂質(zhì)體的水凝膠性質(zhì),選擇最優(yōu)配方的同時,闡析了脂質(zhì)體與水凝膠的相互交聯(lián)機制。實驗最終選取明膠與殼聚糖比4∶1、mTG質(zhì)量濃度10 mg/mL為最優(yōu)條件,此配方下質(zhì)構(gòu)表現(xiàn)最優(yōu)。相較空白水凝膠,脂質(zhì)體水凝膠的膨脹系數(shù)更小,是由于脂質(zhì)體水凝膠中的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)已經(jīng)被脂質(zhì)體的囊泡結(jié)構(gòu)所填滿,其空間結(jié)構(gòu)已經(jīng)基本接近飽和;同時,F(xiàn)TIR和差熱分析顯示脂質(zhì)體中的C=O、P=O鍵與空白水凝膠中的氨和雜環(huán)形成胺基和其他復雜結(jié)構(gòu),而交聯(lián)率也同時證明了脂質(zhì)體與水凝膠之間的交聯(lián)是通過化學交聯(lián)的方式,破壞了一系列的官能團產(chǎn)生了復雜的共價鍵和氫鍵。本研究為脂質(zhì)體水凝膠應(yīng)用于食品消化和營養(yǎng)因子的緩釋作用提供了理論參考,也可為開發(fā)脂質(zhì)體水凝膠的營養(yǎng)食品提供技術(shù)參考。

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