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        產(chǎn)脂肪酶菌株的篩選、鑒定及發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化

        2019-10-29 00:40:30賀秋紅鞏志金
        中國(guó)釀造 2019年10期
        關(guān)鍵詞:油脂

        賀秋紅,鞏志金,顏 梅

        (曲阜師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,山東 曲阜 273100)

        脂肪酶(lipase EC3.1.1.3)是一類能催化甘油酯水解的酶的總稱,催化效率高,副產(chǎn)物少,反應(yīng)條件溫和,不需要輔酶或輔因子的參與,已在合成反應(yīng)、生物燃料、制藥工業(yè)以及洗滌劑、食品、紡織等領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用。脂肪酶不僅能催化甘油酯類水解與合成,還能催化酯化反應(yīng)、酯交換反應(yīng)、醇解反應(yīng),促進(jìn)多肽、表面活性劑和藥物等的合成反應(yīng)[1]。微生物脂肪酶的研究始于20世紀(jì)初,經(jīng)過100多年的研究,目前已經(jīng)成為脂肪酶的主要來源。特別是近幾十年來,隨著高效篩選技術(shù)和先進(jìn)基因工程技術(shù)的應(yīng)用,已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了曲霉、毛霉和假單胞菌的相對(duì)高產(chǎn),并且部分菌株已經(jīng)實(shí)現(xiàn)工業(yè)化應(yīng)用[2]。我國(guó)高質(zhì)量的脂肪酶產(chǎn)生菌種類少,產(chǎn)量低,很多企業(yè)不得不依賴價(jià)格昂貴的進(jìn)口脂肪酶,因此篩選和培育高產(chǎn)優(yōu)勢(shì)脂肪酶產(chǎn)生菌顯得尤為重要[3]。另外,脂肪酶催化的反應(yīng)類型和條件多種多樣,不同類型的脂肪酶應(yīng)用方向千差萬(wàn)別,因此篩選不同來源的脂肪酶是脂肪酶研究的基礎(chǔ)。

        微生物脂肪酶的表達(dá)主要受環(huán)境因子的調(diào)節(jié),產(chǎn)脂肪酶微生物需要以油脂和脂肪酸作為碳源生長(zhǎng),因此常用的微生物篩選來源包括油脂加工廠、乳制品工廠以及附近被油脂污染的土壤和水域等[2]。芽孢桿菌是一類潛在的優(yōu)良脂肪酶生產(chǎn)菌株,目前用于生產(chǎn)脂肪酶的芽孢桿菌有枯草芽孢桿菌[4]、蠟狀芽孢桿菌[5]、類芽孢桿菌[6]和地衣芽孢桿菌[7]等??莶菅挎邨U菌所生產(chǎn)的脂肪酶屬于胞外酶,便于下游分離純化,適用于大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)[8-9],并且普遍具有較高的堿耐受力[10-11],在洗滌劑和紡織等領(lǐng)域市場(chǎng)需求巨大。本研究從油脂污染水樣中分離出一株產(chǎn)脂肪酶菌株,對(duì)其進(jìn)行形態(tài)學(xué)特征、生理生化試驗(yàn)及分子生物學(xué)鑒定,并通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面試驗(yàn)對(duì)其發(fā)酵培養(yǎng)基組分進(jìn)行優(yōu)化,旨在提高脂肪酶產(chǎn)量,進(jìn)一步對(duì)其酶學(xué)性質(zhì)研究提供技術(shù)參考和實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 材料

        從曲阜市多個(gè)食堂和食品廠附近被油脂污染的下水道中采集樣品10份。

        1.1.2 化學(xué)試劑

        葡萄糖、酵母膏、磷酸氫二鈉、硫酸銨、氯化鈉、三水磷酸氫二鉀、七水硫酸鎂、瓊脂粉、蛋白胨、橄欖油、羅丹明B、聚乙烯醇(polyvinyl alcohol,PVA):國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

        1.1.3 培養(yǎng)基[12-14]

        富集培養(yǎng)基:酵母膏0.2 g/L,氯化鈉0.5 g/L,磷酸氫二鈉3.5 g/L,磷酸二氫鉀1.5 g/L,七水硫酸鎂0.5 g/L,橄欖油10 mL,用蒸餾水定容至1 000 mL,121 ℃滅菌20 min。

        初篩羅丹明B培養(yǎng)基[14]:硫酸銨0.5 g,氯化鈉4 g,磷酸氫二鉀1 g,七水硫酸鎂0.5 g,瓊脂粉15 g,三丁酸甘油脂乳化液100 mL(4%PVA∶三丁酸甘油脂=3∶1,超聲乳化),用蒸餾水定容至1 000 mL,121 ℃滅菌20 min后,待溫度降至60 ℃時(shí)加入1 mL羅丹明B 溶液(質(zhì)量濃度<10 mg/mL),混勻后倒平板。

        初始發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖5.0 g/L,蛋白陳2 g/L,尿素6.0 g/L,三水磷酸氫二鉀1.0 g/L,硫酸銨1 g/L,七水硫酸鎂0.5 g/L,三丁酸甘油脂10.0 mL,用蒸餾水定容至1 000 mL,自然pH,115 ℃滅菌15 min。

        1.2 儀器與設(shè)備

        SW-CJ-1D超凈工作臺(tái):蘇州凈化設(shè)備有限公司;SIGMA 2-16PK通用型離心機(jī):德國(guó)Sigma公司;TS-1102立式搖床:上海天呈試驗(yàn)儀器制造有限公司;CL-32L高壓蒸汽滅菌鍋:日本ALP公司;上海申安醫(yī)療器械廠;T100型PCR儀、Mini-SubCell核酸電泳儀:美國(guó)BioRad公司;CX23生物顯微鏡:日本奧林巴斯有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 菌株的篩選

        將采集的樣品分別依次進(jìn)行富集培養(yǎng)、初篩和初始發(fā)酵復(fù)篩。樣品經(jīng)過3次富集培養(yǎng)后,分別取50 μL菌液上清涂布于羅丹明B培養(yǎng)基平板,羅丹明B能與脂肪酶降解油脂產(chǎn)生的脂肪酸特異性結(jié)合,產(chǎn)酶菌落周圍會(huì)生成玫紅色,在波長(zhǎng)365 nm紫外燈下呈現(xiàn)橙黃色。將羅丹明B平板放在波長(zhǎng)365 nm紫外燈下進(jìn)行觀察,選取橙黃色圈較大的菌株進(jìn)行分離培養(yǎng),鏡檢至無(wú)雜菌后作為出發(fā)菌種,接種于初始發(fā)酵培養(yǎng)基中進(jìn)行復(fù)篩,選出脂肪酶高產(chǎn)菌株[15-17]。

        1.3.2 菌種鑒定

        根據(jù)《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[18],對(duì)所篩選的菌株進(jìn)行形態(tài)學(xué)特征和生理生化鑒定。提取目的菌株的基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)為模板,以16S rDNA序列的通用引物進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增。擴(kuò)增產(chǎn)物送至上海博尚生物科技有限公司進(jìn)行測(cè)序,并將得到的序列與GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中的序列進(jìn)行比對(duì)分析,使用MEGA-X軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[19]。

        1.3.3 產(chǎn)脂肪酶菌株的種子液的制備及發(fā)酵培養(yǎng)

        種子液的制備:將1.3.1篩選得到的菌種于無(wú)菌條件下,接種一環(huán)菌至裝液量為50 mL/250 mL的初始發(fā)酵培養(yǎng)基中,35 ℃、220 r/min,搖瓶培養(yǎng)12 h,制備成種子液。將種子液按照10%(V/V)裝液量接種至為25 mL/250 mL的發(fā)酵培養(yǎng)培養(yǎng)基中,發(fā)酵液pH=7,35 ℃、220 r/min條件下?lián)u瓶培養(yǎng)40 h。

        1.3.4 發(fā)酵培養(yǎng)基組分優(yōu)化

        單因素試驗(yàn):設(shè)計(jì)單因素試驗(yàn)考察發(fā)酵培養(yǎng)基中三丁酸甘油酯添加量(1.2%、1.4%、1.6%、1.8%、2.0%、2.2%、2.4%)、葡萄糖添加量(4 g/L、5 g/L、6 g/L、7 g/L、8 g/L、9 g/L、10 g/L)及尿素添加量(6 g/L、8 g/L、10 g/L、12 g/L、14 g/L、16 g/L、18 g/L)對(duì)發(fā)酵液中粗脂肪酶活性的影響,確定各因素的中心值及水平。

        響應(yīng)面試驗(yàn):根據(jù)響應(yīng)面分析法中Box-Behnken Design(BBD)試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,采用上述單因素試驗(yàn)確定的中心值、低水平和高水平(分別用0、-1、+1表示),以脂肪酶活力(Y)為響應(yīng)值,對(duì)發(fā)酵培養(yǎng)基中三丁酸甘油酯添加量(A)、葡萄糖添加量(B)、尿素添加量(C)進(jìn)行優(yōu)化,得到最佳發(fā)酵條件組合,試驗(yàn)因素與水平見表1。

        表1 發(fā)酵條件優(yōu)化響應(yīng)面試驗(yàn)因素與水平Table 1 Factors and levels of response surfer experiments for fermentation conditions optimization

        1.3.5 發(fā)酵液中脂肪酶活力的檢測(cè)

        粗酶液的制備:將發(fā)酵液低溫離心去除菌體,4 ℃、5 500 r/min條件下離心15 min,除菌體。上清用0.22 μm濾膜過濾,制成粗酶液于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        脂肪酶活力檢測(cè):參考國(guó)標(biāo)GB/T 23535—2009《脂肪酶制劑》[20]。脂肪酶活力定義:在pH7.5,40 ℃條件下,每分鐘產(chǎn)生1 μmol可滴定脂肪酸所需的酶量為1個(gè)酶活力單位(U/mL)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 目的菌株的篩選

        經(jīng)過初篩和富集培養(yǎng),從10份樣品中篩選分離得到4株橙黃色圈較大的菌株,分別編號(hào)為U1、U2、U4、U5,再分別進(jìn)行搖瓶發(fā)酵培養(yǎng),測(cè)定各發(fā)酵液中產(chǎn)脂肪酶的活力值,結(jié)果見表2。由表2可知,菌株U5脂肪酶酶活最高,為3.3 U/mL,其余3株菌脂肪酶酶活較低,均在1.3~2.9 U/mL范圍內(nèi)。因此,選擇菌株U5作進(jìn)一步鑒定。

        2.2 菌株U5的鑒定

        2.2.1 菌株U5形態(tài)學(xué)特征

        菌株U5的菌落及細(xì)胞形態(tài)見圖1。由圖1A可知,在瓊脂平板上,菌落乳白色,邊緣不規(guī)則,不透明,菌落表面粗糙,略有突起。由圖1B可知,菌體呈圓桿狀,無(wú)莢膜,有鞭毛。

        圖1 菌株U5的菌落(A)及細(xì)胞(B)形態(tài)Fig.1 Colony morphology (A) and cell morphology (B) of strain U5

        2.2.2 生理生化鑒定

        菌株U5能利用甘露醇、檸檬酸鹽、葡萄糖,接觸酶試驗(yàn)、硝酸鹽還原、V-P試驗(yàn)、7%氯化鈉生長(zhǎng)均為陽(yáng)性。根據(jù)菌株U5的形態(tài)特征和生理生化特性,可以初步鑒定菌株為芽孢桿菌屬(Bacillussp.)。

        2.2.3 分子生物學(xué)鑒定

        以菌株U5基因組DNA為模板,采用細(xì)菌16S rDNA通用引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)擴(kuò)增條帶約1 500 bp,測(cè)序結(jié)果見圖2。

        圖2 菌株U5 16S rDNA測(cè)序結(jié)果Fig.2 Sequencing results of 16S rDNA of strain U5

        由圖2可知,擴(kuò)增片段長(zhǎng)1 406 bp,符合細(xì)菌16S rDNA序列特征。將擴(kuò)增序列結(jié)果同美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(national center of biotechnology information,NCBI)中的Genbank核酸數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行基本局部比對(duì)搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)同源性比對(duì)分析,用MEGA-X構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果見圖3。

        圖3 菌株U5 16S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain U5 based on 16S rDNA sequence

        由圖3可知,菌株U5與Bacillus subtilisstrain IAM10(MH815091.1)位于同一族群,親緣關(guān)系最近,再結(jié)合形態(tài)學(xué)觀察和生理生化試驗(yàn)結(jié)果,進(jìn)一步證實(shí)菌株U5為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)。

        2.3 發(fā)酵培養(yǎng)基組分的優(yōu)化

        2.3.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        分別對(duì)發(fā)酵組分中三丁酸甘油酯(1.2%~2.4%)、葡萄糖(4~10 g/L)、尿素(6~18 g/L)的添加量進(jìn)行單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì),結(jié)果如圖4所示。

        由圖4a可知,隨著三丁酸甘油酯添加量的增加,脂肪酶活力呈現(xiàn)先升后降的趨勢(shì),當(dāng)三丁酸甘油酯添加量為1.8%時(shí),脂肪酶活力最高,達(dá)到4.0 U/mL,故將1.8%作為響應(yīng)面設(shè)計(jì)中三丁酸甘油酯含量的中心點(diǎn),中心點(diǎn)左、右兩側(cè)等距離的因變量1.6%和2.0%作為低水平和高水平。

        由圖4b可知,隨著葡萄糖添加量的增加,脂肪酶活力整體呈現(xiàn)先上升后略微下降的趨勢(shì),當(dāng)葡萄糖添加量為8 g/L時(shí),脂肪酶活力達(dá)到最高;葡萄糖添加量>8 g/L后略有下降,故葡萄糖含量的中心點(diǎn)設(shè)為8 g/L,低水平和高水平分別為7 g/L和9 g/L。

        由圖4c可知,隨著尿素添加量的增加,脂肪酶活力呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)尿素添加量為10 g/L時(shí),脂肪酶活力達(dá)到最高,為3.7 U/mL;尿素添加量>10 g/L脂肪酶活力顯著下降,故將10 g/L作為響應(yīng)面設(shè)計(jì)中尿素含量的中心點(diǎn),中心點(diǎn)左、右兩側(cè)等距離的因變量8 g/L和12 g/L作為低水平和高水平。

        圖4 三丁酸甘油(a)、葡萄糖(b)及尿素(c)添加量對(duì)脂肪酶活力的影響Fig.4 Effects of tributyrin (a),glucose (b) and urea (c) addition on lipase activity

        2.3.2 Box-Behnken Design試驗(yàn)結(jié)果

        根據(jù)單因素確定的中心點(diǎn)和因素水平,運(yùn)用DesignExpert 8.0.5b中BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理進(jìn)行3因素3水平的響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì),試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案和結(jié)果見表3,方差分析見表4。對(duì)表3中進(jìn)行多元回歸擬合,建立二階回歸模型,找到最優(yōu)響應(yīng)因子水平,多元二次回歸方程如下所示:

        表3 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Design and results of Box-Behnken experiments

        由模型的回歸結(jié)果分析和方程方差分析可知,該二次模型顯著(P=0.000 9<0.05),失擬項(xiàng)不顯著(P=0.495 7>0.05),決定系數(shù)R2=0.950 1,說明有95.01%的變差能夠由該模型解釋;變異系數(shù)為2.21%,說明變異(偏離)程度較小。由圖5可知,各因素間有一定的交互作用,最佳預(yù)測(cè)點(diǎn)在試驗(yàn)考查范圍內(nèi)。因此,該二階歸模型具有良好的擬合度,能真實(shí)地描述各因素與響應(yīng)值之間的關(guān)系,可對(duì)菌株U5發(fā)酵產(chǎn)脂肪酶條件進(jìn)行預(yù)測(cè)和分析。一次項(xiàng)A、B,交互項(xiàng)AC,二次項(xiàng)B2對(duì)結(jié)果影響極顯著(P<0.01)。

        表4 響應(yīng)面試驗(yàn)回歸模型方差分析Table 4 Variance analysis of response surface experiments

        由回歸方程預(yù)測(cè)得到三丁酸甘油脂添加量為2.00%,葡萄糖添加量為8.84 g/L,尿素添加量為8.00 g/L,發(fā)酵獲得粗脂肪酶活力預(yù)測(cè)值為4.36 U/mL。為方便實(shí)際培養(yǎng)基配制,選取三丁酸甘油脂添加量為2%,葡萄糖添加量為9 g/L,尿素添加量為8 g/L。在此優(yōu)化培養(yǎng)基條件下,發(fā)酵獲得粗脂肪酶活力實(shí)際值為4.30 U/mL,與預(yù)測(cè)值基本接近,說明所建模型擬合良好且可靠。因此通過響應(yīng)面優(yōu)化后得到的最佳發(fā)酵培養(yǎng)基配方為三丁酸甘油脂2%,葡萄糖9 g/L,尿素8 g/L,蛋白陳2 g,K2HPO4·3H2O 1.0 g/L,(NH4)2SO41.0 g/L,MgSO4·7H2O 0.5 g/L;發(fā)酵條件為接種量10%,初始pH值=7,溫度35 ℃,轉(zhuǎn)速220 r/min,搖瓶培養(yǎng)40 h。

        圖5 三丁酸甘油脂、葡萄糖及尿素添加量對(duì)發(fā)酵產(chǎn)脂肪酶活力影響的響應(yīng)面及等高線Fig.5 Response surface plots and contour line of effects of interaction of between tributyrin,glucose and urea addition on lipase activity

        2.4 模型驗(yàn)證及分析

        為檢驗(yàn)?zāi)P涂煽啃院陀行?,分別用模型預(yù)測(cè)的最優(yōu)培養(yǎng)基配方和原始培養(yǎng)基配方進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,每組試驗(yàn)設(shè)置3個(gè)平行,檢測(cè)不同取樣時(shí)間時(shí)的脂肪酶活力,結(jié)果見圖6。由圖6可知,脂肪酶活力最高為4.3 U/mL,比未優(yōu)化前的活力3.7 U/mL提高16.22%。模型的預(yù)測(cè)值與實(shí)際發(fā)酵結(jié)果十分接近說明模型預(yù)測(cè)性良好。

        圖6 培養(yǎng)基組分優(yōu)化前后脂肪酶活力的變化Fig.6 Changes of lipase activity before and after culture medium optimization

        3 結(jié)論

        研究從富油水樣中篩選出一株脂肪酶產(chǎn)生菌株U5,經(jīng)形態(tài)觀察、生理生化試驗(yàn)及16SrDNA序列分析鑒定其為枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis),利用單因素及響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化,得到菌株U5發(fā)酵產(chǎn)脂肪酶的培養(yǎng)基中最佳配方為三丁酸甘油2%,葡萄糖9 g/L,尿素8 g/L,在此培養(yǎng)基組分下所產(chǎn)脂肪酶活力為4.3 U/mL,比未優(yōu)化前的酶活力提高16.22%,研究可繼續(xù)對(duì)U5芽孢桿菌發(fā)酵產(chǎn)脂肪酶的菌種進(jìn)行工程化改造、發(fā)酵過程控制優(yōu)化、發(fā)酵罐放大試驗(yàn)等方面做進(jìn)一步探索,逐步提高芽孢桿菌U5產(chǎn)脂肪酶的能力和活力。

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