李開,曾鳴,宋昊,王冬
(1.北京一輕研究院,北京 101111;2.北京市食品工業(yè)研究所,北京 100075)
糖類在植物體的結(jié)構(gòu)和功能方面起著非常重要的作用,不僅是植物生長過程中的能量來源和物質(zhì)基礎(chǔ),還是糖代謝和基因表達(dá)過程中通過糖感知系統(tǒng)調(diào)節(jié)酶促反應(yīng)的信號[1-2]。糖類是食品中的主要營養(yǎng)物質(zhì),同時對食品的風(fēng)味、甜味、質(zhì)構(gòu)和穩(wěn)定性有一定的影響,其種類和含量直接影響食品的營養(yǎng)價值。最近幾年,我國果汁飲料加工業(yè)發(fā)展迅速,已經(jīng)成為了全球最大的濃縮果汁生產(chǎn)國和出口國,濃縮果汁的品質(zhì)控制顯得尤其重要。糖類是濃縮果汁的主要成分,糖類的組成成分影響著濃縮果汁的甜味,同時糖類也是濃縮果汁中可溶性固形物的重要組成[3],所以監(jiān)測濃縮果汁中糖類的組成對產(chǎn)品質(zhì)量的控制有著重要意義。
目前國內(nèi)外對糖含量的分析方法包括化學(xué)法和儀器分析法,化學(xué)法有直接滴定法、高錳酸鉀滴定法、鐵氰化鉀法、奧氏試劑滴定法測定食品中的還原糖[4]和總糖,雖然化學(xué)法相對便宜、準(zhǔn)確度高,但是耗時長、效率低、無法準(zhǔn)確定性糖的種類。儀器分析法包括分光光度法[5]、毛細(xì)管電泳法(capillary electroph-oresis,CE)[6-7]和色譜法,分光光度法和化學(xué)法一樣不能確定糖的種類;糖類既不帶電,也沒有紫外吸收和熒光特性,使用CE 檢測糖類化合物需要讓糖帶電或者衍生化,技術(shù)要求較高,操作耗時長,結(jié)果重現(xiàn)性較差;色譜法種類較多,主要有離子交換色譜法[8-9](ion exchange chromatography,IEC)、氣相色譜法[10-11](gas chromatography,GC)和高效液相色譜法[12-14](high performance liquid chromatography,HPLC),IEC 靈敏度高,但是糖類在電極表面發(fā)生氧化還原反應(yīng)會導(dǎo)致穩(wěn)定性不夠好,另外設(shè)備昂貴;糖類化合物沸點(diǎn)高、難揮發(fā)、難氣化和熱穩(wěn)定差,不能直接用GC 進(jìn)行分析,需要對樣品進(jìn)行衍生化處理、需用有毒試劑、操作比較復(fù)雜、穩(wěn)定性差[15];相比之下,HPLC 具有簡便、準(zhǔn)確、樣品前處理容易等優(yōu)勢,因此成為了食品中糖分離鑒定、定量分析的主要手段。由于糖類在紫外可見光區(qū)無吸收以及無熒光特性,將二極管陣列檢測器(diode array detector,DAD)和熒光檢測器(fluorescence detector,F(xiàn)LD)應(yīng)用于糖類的檢測需要將糖進(jìn)行衍生化處理[16-17],這就使分析流程變得復(fù)雜,降低了其通用性;相比其他檢測器,蒸發(fā)光散射檢測器(evaporative light-scattering detector,ELSD)和示差折光檢測器(differential refraction detector,RID)在糖類的分析中應(yīng)用得最廣[18],雖然ELSD 相對于RID 靈敏度更高、基線更穩(wěn)定,但是ELSD 更昂貴、操作更復(fù)雜,所以在滿足定性定量的基本前提下,日常生產(chǎn)過程中糖的檢測分析使用RID 更具優(yōu)勢。
本文采用HPLC-RID,建立了快速、準(zhǔn)確地分離分析木糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖和乳糖的方法,為濃縮果汁中游離糖的檢測、監(jiān)管提供技術(shù)支撐。
配備 G1311C 泵、G1329B 進(jìn)樣器、G1316A 柱溫箱和G1362A 示差折光檢測器的1260 高效液相色譜系統(tǒng):安捷倫科技有限公司;HF-2000R 高速離心機(jī):上海利鑫堅(jiān)離心機(jī)有限公司;HC-C18萃取小柱(4.6 mm×12.5 mm,5 μm):上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司。
濃縮桔汁、濃縮橙汁:南充佳美食品工業(yè)有限公司;濃縮蘋果汁:天水長城果汁集團(tuán)有限公司;乙腈(色譜純):上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司;木糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖(含量≥99%):Sigma-Aldrich LLC.;超純水(電阻率為 18.2 MΩ·cm)。
1.2.1 色譜條件
色譜柱為Agilent ZORBAX Carbohydrate Analysis Column(4.6 mm×150 mm,5 μm);流動相為 75 ∶25 的乙腈-水;流速為 1.3 mL/min;柱溫為 35 ℃;RID 溫度為 35 ℃;進(jìn)樣量為 5 μL。
1.2.2 樣品前處理
稱取樣品2 g~5 g,用超純水溶解,定容至50 mL,然后10 000 r/min 離心20 min,取上清液備用。為了除去樣品中可能影響到目標(biāo)物分析的諸如有機(jī)酸、色素等雜質(zhì),本文將樣品溶液經(jīng)過C18萃取小柱進(jìn)行凈化處理,首先將C18萃取小柱先用2 mL 甲醇活化,然后用2 mL 超純水沖洗以去除甲醇,取5 mL 離心后的上清液至萃取小柱,棄去開始的2 mL 流分,收集后續(xù)溶液,用孔徑為0.45 μm 的濾膜過濾,濾液待分析。
按照1.2.1 的色譜條件,測定6 種糖的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,得到如圖1所示的色譜圖,然后分別測定每種糖的標(biāo)準(zhǔn)溶液,確定每種糖的保留時間,最終得到各組分的出峰順序?yàn)槟咎?、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖?/p>
圖1 糖標(biāo)準(zhǔn)品的色譜圖Fig.1 HPLC chromatogram of the sugar standards
2.2.1 流動相比例的選擇
改變流動相乙腈和水的比例,其他條件不變(流速為1.0 mL/min,為了保持RID 狀態(tài)穩(wěn)定,柱溫與RID溫度一致為 30 ℃)。分別考察在乙腈/水為 70 ∶30、75 ∶25、80 ∶20 時對6 種糖的分離效果的影響,得到的色譜圖如圖2所示。
隨著乙腈的濃度增大,分離度逐漸增大,但是保留時間也逐漸增大,峰寬逐漸加大;流動相比例為70 ∶30 時,果糖和葡萄糖沒有完全分離,峰形較差,隨著乙腈比例的增大,分離效果變好,75 ∶25 時完全分離,并且峰形都較好,如果繼續(xù)增大乙腈的比例,峰的展寬加重且分離時間變長。綜合分離時間與分離度,選擇75 ∶25 為流動相比例。
2.2.2 測試溫度的選擇
柱溫是色譜分析的一個重要參數(shù),直接影響化合物的分離度和分析速度。為了考察柱溫對分離6 種糖的影響,保持流動相比例(乙腈∶水=75 ∶25)、流速(1.0 mL/min)不變,控制分析溫度為 25、30、35、40 ℃,分離結(jié)果如圖3所示。
圖2 不同流動相比例時糖標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜圖Fig.2 HPLC chromatograms of the sugar standards in different volume ratios of the mobile phases
圖3 不同分析溫度時糖標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜圖Fig.3 HPLC chromatograms of the sugar standards analyzed in different temperatures
隨著溫度的升高,各化合物的保留時間逐漸變短,但是分離度和保留時間變化都不是太明顯,綜合考慮選擇35 ℃為分析溫度。
2.2.3 流速的選擇
根據(jù)van Deemter 速率理論方程式H=A+B/u+Cu(A、B、C 為常數(shù),H 為理論塔板高度,u 為流動相線速度),在一定范圍內(nèi),隨著流速的降低,H 降低、柱效升高、分離度變大,但是流速過低時,分析時間變長、柱效反而降低;提高流速可以縮短分離時間,但是流速過高時,待分析化合物來不及分離就被洗脫出,柱效就會降低,分離效果變差。保持流動相比例(乙腈∶水=75 ∶25)、溫度(35 ℃)不變,考察流速為 1.0、1.3、1.5 mL/min 時6 種糖的分離情況,如圖4所示。
圖4 不同流速時糖標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜圖Fig.4 HPLC chromatograms of the sugar standards analyzed on different flow rates of the mobile phase
在3 種流速下,6 種糖的分離效果都較好,隨著流速的升高,分析時間顯著縮短。另外,流速升高增大,柱壓會隨之升高,會影響色譜柱壽命,從1.3 mL/min 到1.5 mL/min 分析時間差別較小,所以最終確定1.3 mL/min為流動相速度。
濃縮果汁的組成非常復(fù)雜,含有糖類、色素、酚類和有機(jī)酸類等化合物,色素、酚類和有機(jī)酸類化合物的疏水性比糖類化合物強(qiáng),容易吸附在色譜柱上不被洗脫,長期這樣會降低色譜柱的柱效,縮短色譜柱的壽命,所以正式分析前應(yīng)對樣品進(jìn)行凈化處理。HCC18萃取小柱的填料具有較高的疏水性,糖類化合物在柱子上很難保留,而色素等干擾物質(zhì)相較于待測化合物的疏水性強(qiáng)、在柱子上保留強(qiáng),從而可以凈化樣品溶液。濃縮蘋果汁樣品凈化前后的對比效果見圖5,經(jīng)固相萃取后色素去除完全,待測化合物的峰形、峰面積沒有影響,柱壓明顯降低,說明該方法能簡單快速凈化果汁待測樣品。
圖5 樣品處理前后的效果Fig.5 The results before and after treatment of samples
配制6 種糖的一系列濃度標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照優(yōu)化過的分析條件進(jìn)樣測試,同一濃度分析3 次,對峰面積(y)和濃度(x)進(jìn)行擬合,得到6 種糖的線性方程和相關(guān)性系數(shù)(如表1所示),線性范圍較寬,R2>0.999 0。
表1 方法的線性方程Table 1 Linear equations of six sugars
為了研究方法的重現(xiàn)性,按優(yōu)化后的色譜條件,將6 mg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液連續(xù)進(jìn)樣6 次,分別計(jì)算每種化合物保留時間(tR)和峰面積的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD),結(jié)果見表2,tR的 RSD 為0.05%~0.07%,峰面積的RSD 為0.77%~4.54%;另外,為了研究方法的穩(wěn)定性,連續(xù)6 d 對6 mg/mL 的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液測試,分別計(jì)算每種化合物的tR和峰面積的 RSD,結(jié)果見表2,tR的 RSD 為 0.41%~1.75%,峰面積的RSD 為1.39%~2.99%。以上結(jié)果說明方法重現(xiàn)性良好并具有較好的穩(wěn)定性,這可能是由于糖溶液比較穩(wěn)定、在不同日期檢測其含量波動較小[19]。
表2 精密度試驗(yàn)結(jié)果(n=6)Table 2 Results of the precision experiments(n=6)
為了檢驗(yàn)方法的準(zhǔn)確度,以濃縮蘋果汁為基質(zhì)進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),向濃縮蘋果汁中加入24.575 mg/g 和48.750 mg/g 的混合標(biāo)樣,然后根據(jù)優(yōu)化后的條件進(jìn)行測試,平行分析3 次,結(jié)果見表3。
6 種糖的回收率在87.20%~105.22%,證明該方法準(zhǔn)確性較好。通過以上線性范圍、精密度和回收率結(jié)果可知,該方法準(zhǔn)確可靠,能滿足濃縮果汁中糖類定性定量分析的要求,可以用于濃縮果汁品質(zhì)的控制。
采用優(yōu)化后的條件對3 種濃縮果汁進(jìn)行分析,根據(jù)保留時間對樣品的色譜峰進(jìn)行定性,色譜圖見圖6。測定結(jié)果見表4,濃縮蘋果汁、濃縮桔汁和濃縮橙汁中都只檢出果糖、葡萄糖和蔗糖。其中,濃縮蘋果汁中,果糖含量>葡萄糖含量>蔗糖含量;而濃縮桔汁和濃縮橙汁中蔗糖含量>果糖含量>葡萄糖含量,柑橘汁中葡萄糖與果糖的含量比值基本上保持在0.85 與1 之間,這個指標(biāo)可以作為識別濃縮柑橘汁的真?zhèn)蝃3,20],本文中被測濃縮桔汁和濃縮橙汁這個指標(biāo)分別為0.95 和0.90。
表3 濃縮蘋果汁中糖的加標(biāo)回收率(n=3)Table 3 Spiked recoveries of the six sugars in the concentrated apple juice(n=3)
圖6 濃縮果汁的液相色譜圖Fig.6 HPLC chromatograms of the concentrated juices
表4 3 種濃縮果汁中糖含量的測定結(jié)果(n=3)Table 4 Contents of sugars in three concentrated juices(n=3)
本文建立了HPLC-RID 同時分離分析木糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖和乳糖的方法,同時將該方法應(yīng)用到了濃縮果汁中游離糖的組分分析中。結(jié)果表明,本方法前處理簡單,具有較寬的線性范圍,精密度、準(zhǔn)確度和穩(wěn)定性良好,結(jié)果可靠,對濃縮果汁生產(chǎn)加工品質(zhì)監(jiān)控以及濃縮果汁原料真?zhèn)舞b別具有重要的應(yīng)用價值。