岳芳芳,倪文娟,冷小敏,劉 云,師晶晶,曹東東,郭明好,馬東紅
(新鄉(xiāng)醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院a.腎臟病醫(yī)院腎臟免疫研究所;b.生命科學研究中心,河南衛(wèi)輝 453100)
白介素10(interleukin-10,IL-10)是目前公認的抗炎與免疫抑制因子,它主要由Th2細胞、調節(jié)性T細胞和單核/巨噬細胞產(chǎn)生,在炎癥疾病、自身免疫性疾病、器官移植、血液疾病及癌癥中具有重要價值,參與炎性反應和免疫反應[1]。研究表明IL-10參與糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)的發(fā)生,其可能成為DN治療的新靶點之一。而既往關于IL-10在2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)或DN中表達水平的研究得出了相矛盾的結論[2-5],為進一步明確IL-10在DN患者中的表達水平,我們有必要建立一種穩(wěn)定、靈敏的檢測方法。本研究主要從模板濃度、引物篩選兩方面優(yōu)化IL-10 RNA熒光定量技術,并進一步對IL-10在DN組及對照組中的表達水平進行批量對比,為DN發(fā)病機制的進一步研究奠定基礎。
1材料與方法
1.1 研究對象 DN組:選取2017年8月~2018年5月于新鄉(xiāng)醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院腎病科及內分泌科住院的33例DN患者,其中DNⅢ期患者11例,平均年齡58.91±10.50歲;DNⅣ期患者22例,平均年齡57.55±10.43歲。對照組:健康體檢人員35例,平均年齡53.66±5.80歲。其中,DN組T2DM的診斷符合中國2型糖尿病防治指南(2017年版)[6]中T2DM的診斷標準;根據(jù)Mogensen分期,達到DNⅢ期、Ⅳ期標準。所有入組研究對象均知情同意并簽署知情同意書。由新鄉(xiāng)醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院倫理委員會批準。
1.3 方法
1.3.1 引物的設計與合成:根據(jù)Genbank中人IL-10,β-actin的基因序列信息,使用Primer 5.0軟件設計3對引物(分別簡稱P1,P2,P3)。由北京六合華大基因科技有限公司合成。IL-10的熒光定量PCR擴增引物信息見表1。
表1 IL-10的熒光定量PCR擴增引物
1.3.2 血液樣本處理:抽取外周靜脈血3 ml置于抗凝管中,4℃保存,24 h內進行處理。
分離淋巴細胞:3ml人外周血淋巴細胞分離液加3ml的全血離心,600 g 20 min。吸取環(huán)狀乳白色淋巴細胞層到另一離心管中;加入同體積的生理鹽水清洗淋巴細胞,250 g離心10 min后棄上清;重復清洗2次;棄上清后得細胞,加入500 μl的RNAiso Plus裂解細胞。
1.3.3 RNA的提取及cDNA的合成:提取RNA:向上述勻漿裂解液中加入三氯甲烷(RNAiso Plus的1/5體積量),混勻,室溫靜置5 min。4℃ 12 000 g離心15 min,吸取上清液至另一離心管中。向上清中加入0.5倍RNAiso Plus體積的異丙醇,混勻,室溫靜置10 min。4℃ 12 000 g離心10 min,棄上清,加入與RNAiso Plus等量的75%(v/v)乙醇,上下顛倒洗滌離心管管壁;4℃ 7 500 g離心5 min后棄上清。室溫沉淀干燥5 min,沉淀干燥后,加入20 μl的RNase-free水溶解沉淀。經(jīng)超微量分光光度計測定其濃度,并取2 μl進行瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA質量。
PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)進行基因組DNA的去除并進行反轉錄反應。
1.3.4 熒光定量PCR反應條件的優(yōu)化:20 μl反應體系:TB GreenTMPremix Ex TaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus)10 μl,ROX Reference Dye Ⅱ 0.4 μl,PCR Forward Primer(10 μmol/L)0.8 μl,PCR Reverse Primer(10 μmol/L)0.8 μl,cDNA模板1 μl(在原液的基礎上稀釋不同的倍數(shù):100,101,102,103,104),滅菌水7 μl。程序設置:預變性95℃ 30s,變性95℃ 5s,延伸60℃ 34s,共40個循環(huán);熔解曲線階段95℃ 15s,60℃ 60s,95℃ 15s。在反應體系基礎上,使用3對不同的引物(P1,P2,P3)進行PCR擴增。
1.3.5 特異性檢測:熒光定量PCR結果熔解曲線分析查看是否有特異型單峰,并進一步將熒光定量PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳分析,驗證擴增產(chǎn)物的特異性。
2結果
2.1 標準曲線 P1的相關系數(shù)為0.976 7,斜率為-2.474 6;P2的相關系數(shù)為0.782 2,斜率為-1.902 3;P3的相關系數(shù)為0.999 6,斜率為-3.272 2。在P3擴增體系下可以得到最優(yōu)的標準曲線,使起始模板濃度與循環(huán)數(shù)有良好的線性關系。
2.2 擴增曲線、熔解曲線 P3的擴增曲線符合標準的“S”形熒光擴增曲線,曲線拐點清楚,基線平而無明顯上揚趨勢;熔解曲線呈單一的主峰,說明擴增產(chǎn)物特異,沒有非特異性產(chǎn)物出現(xiàn),見圖1。
A:cDNA模板在100,101,102,103稀釋倍數(shù)下,引物為P3時獲得的擴增曲線;B:引物為P3時獲得的熔解曲線。
2.3 瓊脂糖凝膠電泳 應用P1,P3擴增的產(chǎn)物基本穩(wěn)定,在cDNA模板稀釋倍數(shù)為100時,條帶清晰、穩(wěn)定,分辨率高;電泳僅觀察到一個預測大小的單條帶,說明特異性擴增無明顯的副產(chǎn)物;當cDNA模板稀釋倍數(shù)為103,104時,在P1,P3未見擴增產(chǎn)物,見圖2。
M:分子量標準 DL2000;1~5:熒光定量cDNA模板稀釋倍數(shù)依次為:100,101,102,103,104;A,B,C分別為P1,P2,P3在不同cDNA模板稀釋倍數(shù)下擴增的電泳成像結果。
圖2 PCR產(chǎn)物凝膠電泳圖像
2.4 DN組與對照組IL-10 RNA表達水平 將建立的實驗條件用于檢測兩組IL-10RNA的表達,結果顯示:與對照組(14.39±1.14)相比,DN組(16.21±1.84)的RNA表達水平明顯降低,差異有統(tǒng)計學意義(t=7.049,P<0.01)??紤]到DNⅢ期、DNⅣ期的臨床表現(xiàn)不同,其IL-10RNA表達可能存在差異。因此,我們又進行了組間對比,結果顯示:DNⅣ期患者的RNA水平較DNⅢ期患者稍有升高,差異無統(tǒng)計學意義(t=1.537,P=0.129);但與對照組相比,DNⅢ期(16.69±1.06)與DNⅣ期(15.96±2.09)患者IL-10RNA的表達水平明顯降低,差異均有統(tǒng)計學意義(t=8.452,5.248,均P<0.01)。
3討論以往研究表明,炎癥在DN的進展中起著重要作用[7]。IL-10作為目前公認的抗炎與免疫抑制因子,在DN的發(fā)生發(fā)展過程中具有重要價值。關于在T2DM或DN中IL-10表達水平的檢測,目前的研究大部分都采用ELISA法,但得出了相矛盾的研究結果[2-5]。ELISA的檢測方法需要特異的抗體和一定量的蛋白,在進行抗原或抗體檢測時可能會出現(xiàn)假陽性或假陰性,靈敏度不高[8];對分析低水平表達的細胞因子不夠敏感,且只能從單個樣本中分析有限的細胞因子。而實時熒光定量PCR(real-time quantitative PCR,qPCR)技術具有操作方法簡單、靈敏度高、特異度強的優(yōu)點,即使是對低水平的細胞因子基因表達,也是一種有效的定量方法。近年來,qPCR被廣泛用于定量細胞、體液、組織或組織活檢中RNA的表達水平。該技術不僅在分子生物學的各個領域得到了充分利用,在許多疾病的診斷方面,特別是腫瘤的早期診斷、療效觀察以及癌基因與腫瘤的關系方面也有涉及[9-10]。但qPCR 對反應條件的變化相當敏感,一旦條件不合適便得不到理想的結果,所以優(yōu)化反應條件是qPCR獲得可靠結果的前提[11]。
本研究利用qPCR來檢測IL-10RNA表達,從模板濃度、引物篩選兩方面進行探索,當20 μl反應體系475 ng RNA逆轉錄成cDNA后取1 μl,引物為F:5’-GTGATGCCCCAAGCTGAGA-3’,R:5’-CACGGCCTTGCTCTTGTTTT-3’時,能夠得到較為穩(wěn)定靈敏的擴增效果。我們前期通過ELISA法對比兩組IL-10表達水平,結果顯示DN組IL-10表達水平明顯低于對照組(P<0.01)。該結果與本實驗研究結果是一致的,進一步證實IL-10是參與DN發(fā)病機制的一個重要環(huán)節(jié),其在DN患者中表達下調。
在關于IL-10在T2DM或DN中表達水平的研究中,本研究結果與YUAN等[4-5]一致,但與AL-SHUKAILI等[2-3]相反,考慮有以下原因:與以往研究不同,在關于DN患者的研究中我們首次參考了Mogensen分期,本研究中病例組主要以DNⅢ期、Ⅳ期為研究對象。WONG等[3]的研究未對入組標本進行分期;AL-SHUKAILI等[2]的研究中其研究對象為T2DM患者,尚未發(fā)展至DN階段。因此研究結果不一致可能與入組標準不一致、入組患者結構、年齡及病程存在差異有關。另外,本研究中DNⅢ期、Ⅳ期患者的IL-10RNA表達無統(tǒng)計學意義,考慮可能受樣本量小的影響。綜上,本研究優(yōu)化的實驗條件操作簡單、結果穩(wěn)定,利于臨床推廣應用;該檢測方法可為DN抗炎機制的研究提供技術支持。