李超 李誠(chéng) 李春艷
摘要:擬建立小麥籽粒中脫落酸、生長(zhǎng)素的快速提取方法和高效液相色譜(HPLC)法檢測(cè)2種激素的試驗(yàn)體系。經(jīng)試驗(yàn)對(duì)比,采用異丙醇、水、濃鹽酸體積比=2 ∶ 1 ∶ 0.002的混合溶液作為提取液,以二氯甲烷作為萃取溶劑,簡(jiǎn)化了提取過(guò)程,提高了提取效率。HPLC的分離采用ZORBAXSB-C18(150 mm×4.6 mm,5 μm)反相色譜柱,柱溫為 26 ℃,檢測(cè)器波長(zhǎng)為262 nm,流動(dòng)相為甲醇、乙酸水溶液(乙酸的體積分?jǐn)?shù)為0.2%),其中甲醇、乙酸體積比=38 ∶ 62,流速為1 mL/min。結(jié)果表明,小麥籽粒中2種激素的分離效果較好,加標(biāo)回收率達(dá)95.8%~96.6%,標(biāo)準(zhǔn)偏差在1.14%~1.59%之間。由此可見(jiàn),該提取方法和檢測(cè)體系的建立為快速提取和檢測(cè)小麥籽粒中的脫落酸和生長(zhǎng)素提供了可靠的方法。
關(guān)鍵詞:小麥;脫落酸;生長(zhǎng)素;高效液相色譜
中圖分類號(hào): S512.101 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A ?文章編號(hào):1002-1302(2019)02-0194-03
植物激素在植物生長(zhǎng)發(fā)育及應(yīng)對(duì)生物和非生物脅迫的反應(yīng)中起著關(guān)鍵的作用[1-3]。小麥?zhǔn)俏覈?guó)重要的糧食作物,內(nèi)源性激素對(duì)小麥灌漿期籽粒的發(fā)育影響很大,會(huì)直接影響小麥的產(chǎn)量和品質(zhì)[4-5]。因此,研究小麥內(nèi)源激素的變化,對(duì)于通過(guò)人工干預(yù)措施調(diào)控小麥生產(chǎn)具有重要的實(shí)踐價(jià)值?,F(xiàn)有的檢測(cè)植物內(nèi)源性激素的方法有生物鑒定法[6]、生物傳感器法、酶聯(lián)免疫法、光譜和色譜法,其中色譜法包括氣相色譜法(GC)或與質(zhì)譜聯(lián)用(GC-MS)法、高效液相色譜法(HPLC)或與質(zhì)譜聯(lián)用(HPLC-MS)法、超高效液相色譜法等。生物鑒定法、光譜法和生物傳感器法因其專一性和局限性限制在近年來(lái)鮮有報(bào)道。間接酶聯(lián)免疫法因其使用方便、成本低、速度快而使其使用較為普遍,但靈敏度低,不能較好地滿足實(shí)際檢測(cè)需要[7]。氣相色譜法因大部分植物激素含有極性基團(tuán),不易揮發(fā),需要進(jìn)行衍生化處理才能測(cè)定[8]。高效液相色譜法不需要對(duì)激素進(jìn)行衍生化處理,可直接進(jìn)行測(cè)定,且準(zhǔn)確性、靈敏度和重現(xiàn)性都比較好,是目前最常見(jiàn)的測(cè)定植物內(nèi)源性激素的方法?,F(xiàn)階段分析儀器已達(dá)到了較高的水平,相對(duì)于激素的檢測(cè)來(lái)說(shuō),樣品的前處理是整個(gè)檢測(cè)過(guò)程中的關(guān)鍵,冗長(zhǎng)而復(fù)雜的前處理常常會(huì)造成樣品提取率低、雜質(zhì)干擾太大,從而導(dǎo)致試驗(yàn)失敗。近年來(lái),有較多學(xué)者對(duì)植物內(nèi)源性激素的提取做了研究,目前主要的提取方法是用80%甲醇過(guò)夜浸提[9],但是提取時(shí)間過(guò)長(zhǎng)(需要12 h以上),后續(xù)純化步驟過(guò)于繁瑣且需要大量的溶劑,成本較高。因此,改良前處理方法對(duì)植物內(nèi)源性激素的測(cè)定顯得尤為重要。本研究擬對(duì)比2種提取脫落酸和生長(zhǎng)素的方法,優(yōu)化樣品前處理過(guò)程,以期為小麥籽粒內(nèi)源性激素的提取、測(cè)定提供一種簡(jiǎn)便、高效、可行的前處理方法。
1 材料與方法
1.1 材料
本研究選擇新疆主栽冬小麥品種新冬22號(hào)為試驗(yàn)材料,種子由石河子大學(xué)冬小麥課題組提供。試驗(yàn)于2016—2017年在石河子大學(xué)農(nóng)學(xué)院試驗(yàn)站(44°17N,86°03E,海拔461 m)進(jìn)行。抽穗當(dāng)天掛牌標(biāo)記,開(kāi)花當(dāng)天選取同天開(kāi)花、長(zhǎng)勢(shì)一致的麥穗掛牌標(biāo)記。分別于小麥開(kāi)花后10、20、30 d取穗中上部籽粒,立即置于液氮中速凍5 min,再置于-80 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
主要試驗(yàn)儀器:高效液相色譜儀(Agilent Technologies,Agilent 1260,USA);冷凍離心機(jī)(Eppendorf,Centrifuge 5424,Germany);氮吹儀(Organomation,N-EVAP-45,USA);臺(tái)式恒溫?fù)u床(NEW BRUNSWICK,Innova 40 R,UK);紫外分光光度計(jì)(HITACHI,U-5100,Japan);電子天平(Sartorius,BS 210 s,Germany)。
生長(zhǎng)素(IAA)、脫落酸(ABA)標(biāo)準(zhǔn)品,均購(gòu)于Sigma公司;甲醇(流動(dòng)相)為色譜純,購(gòu)于Fisher公司(美國(guó));色譜純冰乙酸,購(gòu)于天津光復(fù)精細(xì)化工研究所;甲醇(提取液)、石油醚、乙酸乙酯為國(guó)產(chǎn)分析純;超純水為筆者所在實(shí)驗(yàn)室自制。
1.2 激素提取方法的建立
方法1:激素的提取參考Wu等的方法[10]并作適當(dāng)修改后進(jìn)行:準(zhǔn)確稱取4 g用液氮研磨的小麥籽粒粉末,加入 16 mL 提取緩沖液(樣品與提取緩沖液體積比保持1 ∶ 4,以體積比為2 ∶ 1 ∶ 0.002的異丙醇、水、濃鹽酸溶液為提取緩沖液,以0.001 mol/L丁基化羥基甲苯作為抗氧化劑),于4 ℃、200 r/min振蕩30 min。再加入32 mL(提取緩沖液體積的2倍)二氯甲烷,于4 ℃、200 r/min振蕩30 min。之后于4 ℃、 12 000 r/min 離心10 min,取下清液,在避光條件下用氮?dú)獯蹈桑蛹状级ㄈ葜? mL,過(guò)0.45 μm微孔濾膜,上HPLC分析。
方法2:準(zhǔn)確稱取4 g用液氮研磨后的小麥籽粒粉末,加入10 mL預(yù)冷的80%甲醇溶液,振蕩搖勻后置于4 ℃冰箱過(guò)夜;浸提過(guò)夜后于4 ℃、8 000 r/min離心10 min得上清液,將殘?jiān)尤?0 mL 80%甲醇中浸提3 h,該步驟重復(fù)2次后合并上清液。將合并后的上清液用氮吹儀濃縮至原體積的1/3,加入30 mL石油醚萃取脫色3次,棄上清。再用20 mL乙酸乙酯對(duì)水相溶液萃取3次,合并酯相后用氮吹儀吹干。用pH值為3.5的乙酸水溶液溶解,溶液過(guò)預(yù)處理后的Sep-Pak C18小柱純化,用甲醇洗脫(之后發(fā)現(xiàn)二氯甲烷的洗脫效率更高,遂改為二氯甲烷洗脫)。將洗脫液在避光條件下用氮?dú)獯蹈?,用甲醇定容? mL,過(guò)0.45 μm微孔濾膜,上機(jī)分析[9]。
1.3 色譜條件
色譜柱為ZORBAXSB-C18(150 mm×4.6 nm,5 μm,Agilent公司),流動(dòng)相A為甲醇,B為乙酸水溶液。流速為 1 mL/min,柱溫為26 ℃,檢測(cè)器波長(zhǎng)為262 nm,進(jìn)樣量為10 μL。
1.4 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制
用甲醇(色譜純)將生長(zhǎng)素、脫落酸標(biāo)準(zhǔn)品配制成濃度為 1 mg/mL 的母液,根據(jù)出峰情況逐級(jí)稀釋作標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.5 樣品加標(biāo)回收率的測(cè)定
取小麥籽粒(花后20 d)并用液氮研磨,將研磨后的小麥粉分為4份,每份4 g;取2份小麥籽粒樣品,其中1份加入 5 000 ng 標(biāo)準(zhǔn)樣品,同時(shí)用第1.2節(jié)中的方法1進(jìn)行激素的提取;對(duì)于剩余的2份樣品按照第1.2節(jié)中的方法2進(jìn)行樣品的加標(biāo)回收率測(cè)定,試驗(yàn)重復(fù)3次。
2 結(jié)果與分析
2.1 檢測(cè)波長(zhǎng)
用紫外分光光度計(jì)對(duì)激素混合標(biāo)準(zhǔn)品溶液進(jìn)行掃描,同時(shí)兼顧2種激素的分離效果。分析發(fā)現(xiàn),溶液在262 nm處有最大吸收波長(zhǎng),且2種激素在262 nm檢測(cè)波長(zhǎng)下均有較好的峰形,故選擇在262 nm波長(zhǎng)下對(duì)樣品的標(biāo)準(zhǔn)品溶液進(jìn)行測(cè)定。
2.2 流動(dòng)相配比
參考前人以甲醇、水作為流動(dòng)相進(jìn)行的激素分離研究,分別以體積分?jǐn)?shù)為60%、50%、40%、30%、20%的甲醇作為流動(dòng)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn),當(dāng)甲醇含量為40%、30%時(shí),2種激素能夠與雜質(zhì)分離。隨即進(jìn)行微調(diào),發(fā)現(xiàn)當(dāng)甲醇含量為38%時(shí),2種激素的分離效果顯著。
2.3 流動(dòng)相pH值
由于目標(biāo)激素均為弱酸性樣品,因此通過(guò)調(diào)節(jié)流動(dòng)相pH值可以抑制樣品的解離,以增加樣品組分在固定相上的保留時(shí)間,改善峰形。分別在水相(總體積為1 L)中加入0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、5.0 mL冰乙酸,發(fā)現(xiàn)當(dāng)加入2 mL冰乙酸時(shí),2種激素峰形尖銳且各組分的分離效果較好。因此,采用體積分?jǐn)?shù)為0.2%的乙酸水溶液作為流動(dòng)相。
2.4 流速和柱溫
分別檢測(cè)不同流速(0.4、0.7、1.0、1.3、1.5、2.0 mL/min)下2種激素的分離效果,發(fā)現(xiàn)流速過(guò)大時(shí),各激素峰分離差,容易出現(xiàn)肩峰;流速過(guò)小時(shí),整個(gè)分離過(guò)程的時(shí)間大大增加。綜合考慮,選用1.0 mL/min的流速。試驗(yàn)還發(fā)現(xiàn),柱溫對(duì)整個(gè)檢測(cè)過(guò)程的影響較小,故選擇室溫為26 ℃。
選擇最優(yōu)色譜條件,對(duì)2種激素的混合標(biāo)樣進(jìn)行檢測(cè)。從圖1可以看出,2種激素的分離和檢測(cè)結(jié)果良好。
2.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線及其線性范圍
在“1.3”節(jié)的色譜條件下,以峰值面積為縱坐標(biāo)、標(biāo)品質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算各激素的回歸方程、相關(guān)系數(shù)、線性范圍。表1結(jié)果顯示,激素標(biāo)準(zhǔn)品濃度與峰面積的線性相關(guān)性均達(dá)到極顯著水平。
2.6 實(shí)際樣品測(cè)定和樣品加標(biāo)回收率
如表2所示,在樣品加標(biāo)回收率測(cè)定中,使用方法1提取得到的樣品含量極顯著高于方法2得到的樣品含量,方法1的樣品加標(biāo)回收率也顯著高于方法2的樣品加標(biāo)回收率。激素的提取通常使用的是相似相溶原理,現(xiàn)階段常用的激素提取方法是用80%甲醇于4 ℃過(guò)夜浸提[11-13],如簡(jiǎn)利茹等用乙腈和水按一定比例混合后提取菌液中的植物激素[14],劉同祥等用純乙腈提取辣椒幼苗中的植物激素[15],馬宏棋等用一定比例的甲醇、乙酸乙酯和甲酸提取草莓中的脫落酸[16]。這些方法雖然能夠從植物組織中有效地提取出植物激素,但是后續(xù)步驟過(guò)于繁瑣,需要大量的時(shí)間和溶劑,且成本較高。本研究通過(guò)不斷試驗(yàn),以異丙醇、水、濃鹽酸溶液(異丙醇、水、濃鹽酸體積比為 2 ∶ 1 ∶ 0.002)作為提取液并加入丁基化羥基甲苯作為抗氧化劑防止激素氧化分解,經(jīng)過(guò)短時(shí)間的振蕩后用二氯甲烷萃取就可以得到目標(biāo)激素,大大節(jié)省了時(shí)間和成本。通過(guò)2種提取方法的對(duì)比,本研究采用的方法在提取率上優(yōu)于將80%甲醇作為脫落酸和生長(zhǎng)素的提取方法,此方法簡(jiǎn)化了后續(xù)處理步驟,大大減少了目標(biāo)激素的損失。
2.7 小麥籽粒不同發(fā)育時(shí)期的激素含量
如圖2所示,小麥籽粒中的2種激素得到良好的分離,與方法2相比, 用方法1提取的樣品雜質(zhì)峰相對(duì)較少。采用方法1建立的快速提取方法及第1.3節(jié)的色譜條件測(cè)定小麥花后10、20、30 d籽粒中的激素含量。檢測(cè)結(jié)果顯示,花后10、20、30 d籽粒中IAA的鮮質(zhì)量含量分別為1 382、412、267 ng/g,ABA的鮮質(zhì)量含量分別為283、922、475 ng/g。IAA是高等植物體內(nèi)主要的細(xì)胞分裂素之一,花后10 d左右是小麥胚乳細(xì)胞增殖時(shí)期,這個(gè)時(shí)期較高含量的IAA有助于胚乳細(xì)胞快速增殖,以增加籽粒的庫(kù)容量[17];花后20 d是小麥籽粒灌漿的高峰時(shí)期,這個(gè)時(shí)期ABA含量比較高,這是由于籽粒中的ABA能夠控制籽粒的成熟,提高籽粒灌漿速率[4,18]。
3 結(jié)論
通過(guò)2種激素提取方法的比較,本研究建立了1種簡(jiǎn)單、快速、高效提取小麥籽粒中脫落酸、生長(zhǎng)素的方法和HPLC檢測(cè)條件。本研究建立的提取方法,能夠滿足對(duì)小麥籽粒中脫落酸和生長(zhǎng)素定量分析的要求,為進(jìn)一步研究脫落酸和生長(zhǎng)素對(duì)小麥籽粒發(fā)育的影響提供了基礎(chǔ),也為其他植物樣品激素的提取提供了參考。
參考文獻(xiàn):
[1]Davies P J. The plant hormones:their nature,occurrence,and functions[M]//Plant hormones physiology biochemistry & molecular biology. Netherlands:Springer,1995:1-11.
[2]Bari R,Jones J D. Role of plant hormones in plant defence responses[J]. Plant Molecular Biology,2009,69(4):473-488.
[3]Nemhauser J L,Hong F X,Chory J. Different plant hormones regulate similar processes through largely nonoverlapping transcriptional responses[J]. Cell,2006,126(3):467-475.
[4]Yang J,Zhang J,Liu K,et al. Abscisic acid and ethylene interact in wheat grains in response to soil drying during grain filling[J]. New Phytologist,2006,171(2):293-303.
[5]楊衛(wèi)兵,王振林,尹燕枰,等. 外源ABA和GA對(duì)小麥籽粒內(nèi)源激素含量及其灌漿進(jìn)程的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,44(13):2673-2682.
[6]馬建義. 除草劑和植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的幾種生物篩選方法的比較研究[J]. 世界農(nóng)藥,2001,23(1):47-50.
[7]Lai Y,F(xiàn)eldman K L,Clark R S. Enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs)[J]. Critical Care Medicine,2005,33(12):433-434.
[8]金幼菊. 氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)在植物激素分析中的應(yīng)用[J]. 植物生理學(xué)報(bào),1992(1):72-77.
[9]張玉瓊,仲延龍,高翠云,等. 高效液相色譜法分離和測(cè)定小麥中的5種內(nèi)源激素[J]. 色譜,2013,31(8):800-803.
[10]Wu J X,Xu Z L,Zhang Y J,et al. An integrative analysis of the transcriptome and proteome of the pulp of a spontaneous late-ripening sweet orange mutant and its wild type improves our understanding of fruit ripening in citrus[J]. Journal of Experimental Botany,2014,65(6):1651-1671.
[11]王 斌,褚君強(qiáng),史發(fā)猛,等. 橡膠樹(shù)膠乳中幾種植物激素的提取及其高效液相色譜測(cè)定法[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),2012,33(1):148-152.
[12]黃 靖,劉艷芝,劉國(guó)偉,等. 高效液相色譜法測(cè)定植物內(nèi)源激素研究進(jìn)展[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2011(8):101-103.
[13]張占暢,孫志紅,鄭小能,等. 高效液相色譜法測(cè)定庫(kù)爾勒香梨幼果中的4種內(nèi)源激素[J]. 新疆農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,54(5):886-892.
[14]簡(jiǎn)利茹,李哲斐,韓青梅,等. 固相萃取-HPLC測(cè)定外生菌根真菌產(chǎn)生植物激素IAA和GA3[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2011,20(9):165-168.
[15]劉同祥,張艷平. HPLC法測(cè)定辣椒苗中ABA含量研究[J]. 廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,37(8):249-250.
[16]馬宏棋,陳敏氡,朱海生,等. 草莓ABA的快速提取方法及超高效液相色譜分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2014,41(3):577-584.
[17]王瑞英,于振文,潘慶民,等. 小麥籽粒發(fā)育過(guò)程中激素含量變化[J]. 作物學(xué)報(bào),1999,25(2):227-231.
[18]李向陽(yáng),馬溶慧,朱云集,等. 不同冠溫特征小麥的籽粒灌漿特性及內(nèi)源激素的變化[J]. 麥類作物學(xué)報(bào),2005,25(5):32-37.